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猪瘟兔化弱毒疫苗与猪瘟野毒株双重荧光PCR检测试剂盒(HCL

V/wCSFV)促销
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  • ¥4200 - 5800
  • 百奥莱博
  • SYA474-XGO
  • 北京
  • 2025年07月10日
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      北京百奥莱博科技有限公司

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    特别声明:本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品,严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。

    北京百奥莱博致力于最快速、最有效的检测产品,包括猪瘟兔化弱毒疫苗与猪瘟野毒株双重荧光PCR检测试剂盒(HCLV/wCSFV)促销在内的动物疫病PCR检测试剂盒产品是我公司倾力打造的优势产品,欢迎选购。


    名称:猪瘟兔化弱毒疫苗与猪瘟野毒株双重荧光PCR检测试剂盒(HCLV/wCSFV)促销
    等级:科研试剂
    规格:48次/盒
    产地:国产|进口
    品牌:百奥莱博

    我公司的猪瘟兔化弱毒疫苗与猪瘟野毒株双重荧光PCR检测试剂盒(HCLV/wCSFV)促销,性价比高,货期短,送货上门,欢迎您来电咨询购买,另外,我公司还生产供应销*(代"售")下列产品:

    ·禽流感病毒(AIV-M)通用型单重荧光PCR检测试剂盒(定性/定量)
    编号:SYA320
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒|96次/盒
    一、简介:
    禽流感病毒实时荧光qRT-PCR检测试剂是按照美国农业部(USDA)的国际检测标准和我国《禽流感病毒通用荧光RT-PCR检测方法》(GB/T 19438.1-2004)而制备的商业化检测试剂盒。本试剂盒为中的探针报告基团为6-FAM,淬灭基团为MGB。本方法可定性检测所有亚型禽流感病毒。

    二、用途:
    本试剂盒适用于检测各种禽类喉咽棉拭子、泄殖腔棉拭子、各种组织样品、尿囊液及细胞培养液等。可用于禽流感病毒感染的辅助诊断、监测及流行病学调查,其检测结果仅供参考。

    三、试剂盒组成:(48T)
    组份 数量 规格
    荧光qRT-PCR反应液(AIV-qRT-PCR MIX) 1管 672μL/管
    酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
    无核酸酶水(Nuclease-Free Water) 1管 500μL/管
    阴性对照(NTC) 1 管 50μL/管
    阳性对照(AIV-PTC) 1 管 50μL/管

    四、储存条件及有效期:
    本试剂盒于-18℃以下保存,有效期为6个月。

    五、荧光PCR仪器适用范围:
    ABI系列,Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。

    六、样品的采集与RNA提取
    6.1 样品的采集
    按照国家标准《高致病性禽流感诊断技术》(GB/T 18936-2003 )和《禽流感病毒通用荧光RT-PCR检测方法》(GB/T 19438.1-2004 )进行样品的采集。
    6.2 样品RNA提取
    可按常规方法提取,也可采用商品化试剂盒提取病毒RNA。
    (1) 取灭菌的1.5 mL Eppendorf离心管,做好标识。
    (2) 每管加入600 µL裂解液,分别加入被检样本200 µL,再加入200 µL*仿,混匀器上振荡混匀5 s,于4℃ 12000 r 离心15 min。
    (3) 取无RNA酶的1.5 mL Eppendorf离心管,加入-20℃预冷400µL异丙醇,吸取步骤(2)各管中的上清液转移至相应的管中,避免吸出中间层,颠倒混匀。
    (4) 于4℃ 12000 r离心15 min,弃上清,倒置于吸水纸上,沾干液体;加入600µL 75%预冷乙醇,洗涤。
    (5) 于4℃ 12000 r离心10 min,弃上清,倒置于吸水纸上,沾干液体。
    (6) 10000 r离心10 s,用微量加样器将其吸干,室温干燥5 min~10 min。
    (7) 加入10µL 无核酸降解酶的水,溶解管底的RNA,5000 r离心5 s,冰上保存备用。若需长期保存须放置-70℃ 冰箱。
     注:阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高,建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

    七、检测步骤:
    7.1 试剂的准备
    从试剂盒中取出荧光qRT-PCR反应液(AIV-qRT-PCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX),冰上融化并振荡混匀后,10000rpm离心10s。
    设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:
    试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
    荧光PCR反应液 14µL N×14µL
    酶混合物 1 µL N×1 µL
    总量 15 µL N×15µL
    计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000r离心10s,向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL,向每管中加入处理后样品或阴性对照(NTC)和阳性对照(AIV-PTC)5μL,10000rpm瞬时离心10秒。
    7.2 real time RT-PCR反应条件
    将各反应管放入定量PCR仪器的反应槽内。
    推荐循环条件:
    反转录(Reverse Transcription) 1循环 45℃ for 5 min
    预变性 1循环 94℃ for 30 sec
    PCR扩增(PCR amplification ) 40循环 94℃ for 5 sec
    60℃ for 30 sec
    在60℃延伸时收集荧光信号 。报告基团:设置为FAM。

    八、结果分析:
    8.1 结果分析条件设定
    直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
    8.2 试验成立判定
    (1) 阴性对照(NTC):不应产生任何的扩增曲线。
    (2) 阳性对照(AIV -PTC):均产生扩增曲线。
    (3) 以上条件应同时满足 ,否则,此次试验视为无效。
    8.3 结果判定
    (1) 在试验成立的条件下,Ct值≤35的样本为阳性,表明AIV核酸阳性。
    (2) Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明AIV核酸阴性。
    (3) 如果35<Ct值≤40,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
    (4) 对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行AIV qRT-PCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,判为样本阳性,表明AIV核酸阳性;否则判为样本阴性。

    九、注意事项:
    (1) 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
    (2) 所有使用的离心管最好高压灭菌,而且必须不含RNA酶。
    (3) PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等),防止实验室污染。
    (4) 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
    (5) 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。



    猪瘟兔化弱毒疫苗与猪瘟野毒株双重荧光PCR检测试剂盒(HCLV/wCSFV)促销关键词:猪瘟兔化弱毒疫苗与猪瘟野毒株双重荧光PCR检测试剂盒(HCLV/wCSFV),SYA474,百奥莱博

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