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狂犬病荧光PCR检测试剂盒(RV)现货促销

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  • ¥150 - 2490
  • 百奥莱博
  • 北京
  • SYA462-KOT
  • 2025年07月13日
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      -20℃

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      半年

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      877

    • 供应商

      北京百奥莱博科技有限公司

    特别声明:本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品,严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。

    北京百奥莱博生产销*(代"售")的狂犬病荧光PCR检测试剂盒(RV)现货促销,是高品质的动物疫病PCR检测试剂盒产品,欢迎的您垂询订购。


    名称:狂犬病荧光PCR检测试剂盒(RV)现货促销
    产地:国产|进口
    等级:科研试剂
    品牌:百奥莱博
    编号:SYA462

    欲咨询购买狂犬病荧光PCR检测试剂盒(RV)现货促销,请致电北京百奥莱博科技有限公司,为您提供最全面周到的产品服务,除此之外,我公司正在促销以下产品:

    ·转基因植物35S启动子单重荧光PCR检测试剂盒 
    编号:SYA265
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·水稻转基因Cry1Ac单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA273
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·嗜水气单胞菌单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA077
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·肠出血性大肠杆菌(O157)单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA080
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒
    本试剂盒适用于增菌培养物、疑似病料及食品中大肠杆菌O157的检测,其检测结果仅供参考。

    出血性大肠杆菌(EHEC O157)可引起人的出血性腹泻和肠炎的大肠埃希氏菌,引发人类、家畜以及野生禽兽不同形式的疾病。本方法为荧光PCR检测方法,反应在同一管内连续进行,操作简单,并有效防止了污染,能对样品中或预培养液中的大肠杆菌O157进行快速检测,具有特异性高、敏感性强和操作简便的特点。O157的探针报告基团为FAM,淬灭基团为None。

    试剂盒组成:

     
    组份 数量 规格
    大肠杆菌O157荧光qPCR反应液(O157-qPCR MIX) 1管 720μL/管
    DNA抽提液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
    阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
    阳性对照(O157-PTC) 1管 50μL/管


    储存条件:-20℃以下,有效期6个月。

    使用方法:

    一、样品采集:
    ➤食品样品:样品的采集与预培养按照《食品卫生微生物学检验大肠埃希氏菌O157:H7/NM检验 (GB/T 4789.36-2008) 要求进行。
    ➤粪便样品:取粪便置于灭菌的收集管中送检。
    ➤病灶部位样品:取发病部位新鲜渗出物、粘液脓血送检。
     注:上述样品建议经过增菌后,收集培养物用于检测。

    二、DNA提取:
    可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液,按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品,并按照相应试剂盒说明进行操作。
    ➤液体培养物:取液体培养物100μL加到1.5mL无菌离心管中,8000rpm离心3min,尽量吸弃上清,加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min,取上清5μL进行PCR反应。
    ➤固体培养物:挑取单克隆菌落与50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min,取上清5μL进行PCR反应。
    ➤粪便样品:挑取米粒大小粪便于灭菌离心管中,加入0.5mL生理盐水,振荡混匀,13000rpm离心3分钟,弃上清,沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
    ➤其他液体标本:取标本2-3mL,13000rpm离心3min,弃上清,沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
     注:建议采用相关标准方法进行前增菌,并按照液体培养物方法进行提取。阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高,建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

    三、检测步骤:
    1.试剂的准备
    从试剂盒中取出荧光qPCR反应液(O157-qPCR MIX),冰上融化并振荡混匀后,10000rpm离心10s。
    设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:
    试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
    荧光PCR反应液 15µL N×15µL

    向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液,向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(O157-PTC)5μL,10000rpm瞬时离心10秒。
    2.qPCR反应条件
    将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。推荐循环条件:
      1循环 50℃ for 2 min
    预变性 1循环 95℃ for 10 min
    PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
    60℃ for 60 sec

    在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团:设置为FAM,淬灭基团:NONE,请勿选择ROX参比荧光。

    四、结果分析:
    1.结果分析条件设定
    直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
    2.试验成立判定
    ➤阴性对照(NTC):不应产生任何的扩增曲线。
    ➤阳性对照(O157-PTC):均产生扩增曲线。
    ➤以上条件应同时满足,否则,此次试验视为无效。
    3.结果判定
    ➤在试验成立的条件下,Ct值≤35的样本为阳性,表明O157核酸阳性。
    ➤Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明O157核酸阴性。
    ➤如果35<Ct值≤40,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
    ➤对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行O157 qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,判为样本阳性,表明O157核酸阳性;否则判为样本阴性。

    五、注意事项:
    ➤初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
    ➤所有使用的离心管最好高压灭菌,而且必须不含DNA酶。
    ➤PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等),防止实验室污染。
    ➤样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
    ➤试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。


    狂犬病荧光PCR检测试剂盒(RV)现货促销关键词:SYA462,狂犬病荧光PCR检测试剂盒(RV),百奥莱博


    ·恶性疟原虫/间日疟原虫核酸双重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA137
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·玉米转基因MON810单重凝胶PCR检测试剂盒
    编号:SYA281
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·登革热病毒通用单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA224
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·马源性成分单重荧光PCR检测试剂盒(定量)
    编号:SYA305
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·新疆出血热病毒单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA243
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·禽流感病毒H7N9(AIV- H7N9)双重凝胶PCR检测试剂盒
    编号:SYA524
    等级:科研实验专用
    规格:10次/盒|48次/盒

    ·新城疫(NDV)单重凝胶PCR检测试剂盒
    编号:SYA516
    等级:科研实验专用
    规格:10次/盒|48次/盒

    ·鸡白痢沙门氏菌(SPP.P)单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA387
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·羊源性成分单重荧光PCR检测试剂盒(定量)
    编号:SYA301
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·间日疟原虫单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA124
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒
    一、简介:
    本试剂盒用一对间日疟原虫特异性引物,结合一条特异性荧光探针,用荧光PCR 探针技术进行间日疟原虫的检测。

    二、用途:
    本试剂盒可用于间日疟原虫检测鉴定及突发公共卫生事件的处置,还可用于间日疟原虫的环境监测、卫生检疫及感染的辅助诊断,其检测结果仅供临床参考。

    三、试剂盒组成:(48T)
    组份 数量 规格
    间日疟原虫荧光PCR 反应液(qPCR MIX) 1管 672μL/管
    DNA抽提液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
    酶混合物(DNA Polymerase MIX) 1管 48μL/管
    阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
    间日疟原虫阳性对照(PTC) 1管 50μL/管

    四、荧光PCR 仪器适用范围
    ABI 系列,Bio-Rad 系列,Roche 系列等荧光定量PCR 检测仪等。

    五、储存条件及有效期:
    本试剂盒于-20℃保存,避免反复冻融,有效期为6 个月。

    六、实验操作步骤
    6.1 标本采集
    血液:用一次性无菌5ml 注射器抽取疑似人或动物血3-5ml,置于枸橼酸*或EDTA2Na 抗凝管中,摇匀送检。
    肺脏等组织:取上述组织1g左右,置于1.5ml洁净EP管中送检。
    乳液、体液等标本:取相应标本3-5ml,转至1.5ml洁净EP管中送检。
    6.2 DNA提取
    可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液,按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套),并按照相应试剂盒说明进行操作。
    血液样本:直接取200μl 抗凝血,转至一洁净的1.5ml 离心管中,加入1ml 双蒸水,剧烈震荡30s,8000rpm 离心5min,弃上清,至无明显红色沉淀。(若沉淀明显,请再重复上述步骤一次)。加入1ml生理盐水,剧烈震荡15s,13000rpm 离心5min,弃上清。沉淀加入50μl 核酸提取液(使用前请室温溶解并充分混匀)并与沉淀混匀,100℃恒温10min,13000rpm 离心3min,取上清4μl进行PCR反应。
    肺、淋巴结等固体组织:剪取约0.1g 组织,用生理盐水洗去血污,剪碎加入0.5mL TE转移到匀浆器中匀浆。将匀浆液50μl转移到1.5mL 离心管中,加入50μl 核酸提取液(使用前请室温溶解并充分混匀)并与沉淀混匀,100℃恒温10min,13000rpm 离心3min,取上清4μl进行PCR反应。
    乳液等液体标本:取标本2-3mL,13000rpm 离心3min,弃上清,沉淀加入50μl核酸提取液(使用前请室温溶解并充分混匀)并与沉淀混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min,取上清4μl进行PCR反应。
     注:阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5μL 加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高,建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

    七、检测步骤:
    7.1 PCR 扩增
    从试剂盒中取出荧光PCR 反应液(间日疟原虫-qPCR MIX)、酶混合物(DNA Polymerase MIX),室温融化并振荡混匀后,10000rpm 离心10s。
    设所需要的PCR 反应管管数为N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:
    试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
    荧光PCR反应液 14µL N×14µL
    酶混合液 1µL N×1µL
    总量 15µL N×15µL
    计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000rpm 离心10s,向设定的N个PCR 反应管中分别加入15μL,向每管中加入处理后样品或阴性对照(NTC)和阳性对照(PTC)5μL,10000rpm 瞬时离心10 秒。
    7.2 qPCR反应条件
    将各反应管放入定量PCR仪器的反应槽内。
    推荐循环条件:
    1循环 50℃ for 2 min
    预变性 1循环 95℃ for 10 min
    PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
    60℃ for 60 sec
    在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团:设置为FAM。淬灭基团:NONE,请勿选择ROX参比荧光。

    八、结果分析:
    8.1 结果分析条件设定
    直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
    8.2 试验成立判定
    (1)阴性对照(NTC):不应产生任何的扩增曲线。
    (2)阳性对照(PTC):均产生扩增曲线。
    (3)以上条件应同时满足,否则,此次试验视为无效。
    8.3 结果判定
    (1)在试验成立的条件下,Ct值≤35的样本为阳性,表明间日疟原虫核酸阳性。
    (2)Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明间日疟原虫核酸阴性。
    (3)如果35<Ct值≤40,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
    (4)对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行间日疟原虫real time PCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,判为样本阳性,表明间日疟原虫核酸阳性;否则判为样本阴性。

    九、注意事项:
    (1)初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
    (2)所有使用的离心管应高压灭菌,而且必须不含DNA 酶。
    (3)PCR 操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR 扩增区等),防止实验室污染。
    (4)样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
    (5)试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。



    狂犬病荧光PCR检测试剂盒(RV)现货促销关键词:SYA462,狂犬病荧光PCR检测试剂盒(RV),百奥莱博


    ·呼肠孤病毒单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA767
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒
    一、简介:
    本试剂盒用一对呼肠孤病毒特异性引物,结合一条特异性探针,用一步法荧光qRT-PCR 技术对呼肠孤病毒核酸进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

    二、用途:
    该试剂盒适用于检测咽拭子等样本中的呼肠孤病毒(AR)的特异性检测。用于呼肠孤病毒(AR)感染的辅助诊断,其检测结果仅供临床参考。

    三、试剂盒组成:(48T)
    组份 数量 规格
    呼肠孤病毒反应液(AR - qRT-PCR MIX) 1管 672μL/管
    酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
    无核酸酶水(Nuclease-Free Water) 1管 500μL/管
    阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
    阳性对照(JEV-PTC) 1管 50μL/管

    四、荧光PCR 仪器适用范围
    ABI 系列、MJ 系列、Roche 系列,博日系列及其他荧光定量PCR 检测仪。

    五、储存条件及有效期:
    本试剂盒于-20℃以下保存,有效期为6 个月。

    六、样品采集、前处理与RNA 提取
    6.1 样品采集
    采集禽的咽拭子标本,应使用专用采样拭子,适度拭抹咽后壁和扁桃体部位,应避免触及舌部,迅速将拭子放入标本采集管中,旋紧管盖并密封,以防干燥。
    6.2 样本前处理:
    6.2.1 拭子、分泌物等样品:在装有拭子或分泌物的离心管中加入500μL PBS或生理盐水,剧烈振荡30s。
    棉拭子尽量挤出液体转移到无RNA酶污染的离心管中,6000rpm离心20s,取上清备用。
    6.2.2 病灶组织样品:称取组织约0.1g于研磨器或组织匀浆器中研磨(最好置于冰上或加入液氮),再加1mL生理盐水研磨至无块状物,然后将样品转至1.5mL灭菌离心管中,8000rpm离心2min,取上清液于1.5mL灭菌离心管中。
    6.3 RNA提取
    可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的RNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品,并按照相应试剂盒说明进行操作。
     注:阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5μL 加入到反应体系中即可。由于
    阳性对照浓度较高,建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

    七、检测步骤:
    7.1 试剂的准备
    从试剂盒中取出荧光PCR 反应液(AR- qRT-PCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX),冰上融化并振荡混匀后,10000rpm 离心10s。
    设所需要的PCR 反应管管数为N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:

    试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
    荧光PCR反应液 14µL N×14µL
    酶混合液 1µL N×1µL
    总量 15µL N×15µL
    计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000rpm离心10s,向设定的N个PCR 反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液,向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(AR-PTC)5μL,10000rpm瞬时离心10秒。
    7.2 qRT-PCR反应条件
    将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
    推荐循环条件:
    反转录(Reverse Transcription) 1循环 45℃ for 10 min
    预变性 1循环 95℃ for 10 min
    PCR扩增 40循环 94℃ for 15 sec
    60℃ for 45 sec
    在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团:设置为FAM。淬灭基团:NONE,请勿选择ROX参比荧光。

    八、结果分析:
    8.1 结果分析条件设定
    直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
    8.2 试验成立判定
    (1) 阴性对照(NTC):不应产生任何的扩增曲线。
    (2) 阳性对照(AR-PTC):均产生扩增曲线。
    (3) 以上条件应同时满足,否则,此次试验视为无效。
    8.3 结果判定
    (1) 在试验成立的条件下,Ct值≤35的样本为阳性,表明呼肠孤病毒核酸阳性。
    (2) Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明呼肠孤病毒核酸阴性。
    (3) 如果35<Ct值≤40,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
    (4) 对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行呼肠孤病毒qRT-PCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,判为样本阳性,表明呼肠孤病毒核酸阳性;否则判为样本阴性。

    九、注意事项:
    (1) 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
    (2) 所有使用的离心管应高压灭菌,而且必须不含RNA酶。
    (3) PCR 操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR 扩增区等),防止实验室污染。
    (4) 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
    (5) 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。




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