- ￥500 - 1500
- 玉研仪器
- CHINA
- 导管夹持器，螺帽夹持器，电极夹持器，配合定位仪使用
- 2026年04月22日
企业认证
相关产品推荐更多 >
万千商家帮你免费找货
0 人在求购买到急需产品
- 详细信息
- 询价记录
- 文献和实验
- 技术资料
- 国食药监械注册号：
无
- 库存：
100
- 供应商：
玉研仪器公司
- 现货状态：
导管夹持器，螺帽夹持器，电极夹持器，配合定位仪使用
- 保修期：
12个月
脑定位仪夹持器（电极夹持器,套管夹持器）主要用于微量注射器给药实验，可以同时固定注射器针筒和针头，注射器的夹持更稳定；
多种款式可选，请根据实际需求选择合适的型号：
K-5 电极夹持器，适合夹持0.3-1.5mm的电极、探针、导管；
K-5-2 C型电极夹持器，在K-5型号基础上的改良的C字半包围卡扣，适合夹持0.3-2mm的电极、探针、导管；
K-6 二合一夹持器适合夹持3mm-12mm的微量进样器；
K-7 三合一夹持器带电极夹持和注射器两个模块，能夹持微量进样器和进样器针头，头端可夹持0.3-1.5mm的电极或针头；
K-8 套管夹持器，可以夹持范围2.1mm-5.0mm的电极或套管；
K-9 楔形电极夹持器，可以夹持0.9mm-3mm的电极或套管；
K-10 套管夹持器，适合夹持3.5mm的脑注射套管；
K-11 前置放大器夹持器，适合夹持0.1-7mm的脑电记录系统的前置放大器、头套等装置；
K-16 陶瓷针夹持器，适合夹持1.25mm和2.5mm两种规格的电极、光纤、导管、探针：采用锁嘴式螺母旋转锁紧，可有效防止螺丝直顶带来对陶瓷针的损坏；
根据实验需求，还有脑立体定位仪的其他配件可供选择：
玉研仪器自主研发脑立体定位仪十四年，适用于大鼠、小鼠等实验动物，经典十字操作臂实现精准定位，精度可达10微米，特制螺纹精密螺杆，稳固不晃动实现对特定脑区的精确定位，是神经环路研究、神经系统性疾病、神经药理等领域内的重要研究设备，广泛面向全国各大科研院校,医院,高新企业,药企,医疗机构等科研单位。大鼠脑立体定位仪、小鼠脑立体定位仪（双臂脑立体定位仪，单臂脑立体定位仪，数显型脑立体定位仪）（根据需求不同，有多种不同的型号可供选择：单臂型，双臂型，数显型，数控型，敬请来电咨询）
动物脑立体定位仪产品特点：
操作灵活、简便，标配大鼠适配器；
脑立体定位仪标尺是由激光雕刻，清晰易读：手动款式精确度为0.1mm，数字显示型号精度为0.01mm；
脑立体定位仪操作臂移动范围（上下，左右，前后）：三方向移动距离80mm；
垂直方向可90度转动，并随时锁定位置；
扩充能力很强，可增加操作臂，增加注射装置及颅钻等；
可以根据需要增加不同的固定器，用于多种动物；
脑立体定位仪具有以下优势：
- 标尺易读数
- 移动平滑
- 全方位调节
- 电生理操作方便
- 配件多样，可选配各种动物适配器，麻醉罩以及颅钻
大鼠脑立体定位仪的主要构造：
数字显示型脑立体定位仪 Digital Stereotaxic Instrument 是一种可靠的多功能的设备，通过仪器的精准定位，可以确保点击、微管以及其它设备在实验过程中的精确定位。
数显型脑立体定位仪主要特点：
1.适用于小鼠、新生大鼠、鸟类等动物的研究（请根据需求选择合适的配置）；
2.无U型底座设计，操作空间最大化；
3.读数精度采用游标卡尺方式，读数精度为10μm；
4.操作臂上下、前后、左右移动范围可达80mm；垂直方向移动90°可锁住；
5.配有鼻子适配器、三种不同型号的耳棒等；
6.三角形的导轨使之能够进行快速定位。其通用的接点便于实验者横向或纵向移动电极，锁定装置能够将电极以任何角度固定，不会滑脱。
7.扩充能力很强，可增加操作臂、增加注射装置及颅钻等，也可以根据需要增加不同的固定器；
8.目标定位的调零功能：在任意一个位点，每条轴方向上的显示都可以归零，这样就可以使操作简化，阅读方便。实际操作中，如果要定位一个特殊位点，可以先找到参考点，然后归零，再移动数显型脑立体定位仪操作臂到希望到达的点上，调低电极，夹持器或微管到位点上即可。
小鼠及幼大鼠脑立体定位仪适配器
该小鼠适配器耳杆采用树脂材料，对尖端进行适合的锥度处理，能够牢固的夹紧小鼠头部又避免了采用不锈钢作为耳杆对小鼠颅骨的损伤，两侧耳杆的高度和门齿夹的高度均可自由进行调节，并带有刻度，适合不同的角度进行实验。
多种型号可供选择：
标准脑立体定位仪（小鼠）
双臂标准脑立体定位仪（小鼠）
数显标准脑立体定位仪（小鼠）
数显双臂标准脑立体定位仪（小鼠）
标准脑立体定位仪（大鼠）
双臂标准脑立体定位仪（大鼠）
数显标准脑立体定位仪（大鼠）
数显双臂标准脑立体定位仪（大鼠）
电动标准脑立体定位仪（大鼠）
定位仪基座
大鼠头部固定器
小鼠头部固定器
SA-100系列 标准型脑立体定位仪：
SA-150系列 数显型脑立体定位仪（大鼠）
单臂、数显标准脑立体定位仪（小鼠）
双臂、数显双臂标准脑立体定位仪（大鼠、小鼠）
1. Albéri, L., Lintas, A., Kretz, R., Schwaller, B., & Villa, A. E. (2013). The calcium-binding protein parvalbumin modulates the firing 1 properties of the reticular thalamic nucleus bursting neurons. Journal of neurophysiology, 109(11), 2827-2841.
2. Sonati, T., Reimann, R. R., Falsig, J., Baral, P. K., O’Connor, T., Hornemann, S., Aguzzi, A. (2013). The toxicity of antiprion antibodies is mediated by the flexible tail of the prion protein. Nature, 501(7465), 102-106.
3. Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013). Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in Rats: Implications for Limbic Epilepsy. PLOS ONE, 8(6), e66962.
4. Bell, L. A., Bell, K. A., & McQuiston, A. R. (2013). Synaptic Muscarinic Response Types in Hippocampal CA1 Interneurons Depend on Different Levels of Presynaptic Activity and Different Muscarinic Receptor Subtypes. Neuropharmacology.
5. Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
6. Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
7. Babaei, P., Tehrani, B. S., & Alizadeh, A. (2013). Effect of BDNF and adipose derived stem cells transplantation on cognitive deficit in Alzheimer model of rats. Journal of Behavioral and Brain Science, 3, 156-161.
8. Gilmartin, M. R., Miyawaki, H., Helmstetter, F. J., & Diba, K. (2013). Prefrontal Activity Links Nonoverlapping Events in Memory. The Journal of Neuroscience, 33(26), 10910-10914.
9. Feng, L., Sametsky, E. A., Gusev, A. G., & Uteshev, V. V. (2012). Responsiveness to nicotine of neurons of the caudal nucleus of the solitary tract correlates with the neuronal projection target. Journal of Neurophysiology, 108(7), 1884-1894.
10. Clarner, T., Diederichs, F., Berger, K., Denecke, B., Gan, L., Van der Valk, P., Kipp, M. (2012). Myelin debris regulates inflammatory responses in an experimental demyelination animal model and multiple sclerosis lesions. Glia, 60(10), 1468-1480.
11. Girardet, C., Bonnet, M. S., Jdir, R., Sadoud, M., Thirion, S., Tardivel, C., Troadec, J. D. (2011). Central inflammation and sickness-like behavior induced by the food contaminant deoxynivalenol: A PGE2-independent mechanism.Toxicological Sciences, 124(1), 179-191.
12. Hruška-Plocháň, M., Juhas, S., Juhasova, J., Galik, J., Miyanohara, A., Marsala, M., Motlik, J. (2010). A27 Expression of the human mutant huntingtin in minipig striatum induced formation of EM48+ inclusions in the neuronal nuclei, cytoplasm and processes. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
13. Brooks, S., Jones, L., & Dunnett, S. B. (2010). A29 Frontostriatal pathology in the (C57BL/6J) YAC128 mouse uncovered by the operant delayed alternation task. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A10.
14. Yu, L., Metzger, S., Clemens, L. E., Ehrismann, J., Ott, T., Gu, X., Nguyen, H. P. (2010). A28 Accumulation and aggregation of human mutant huntingtin and neuron atrophy in BAC-HD transgenic rat. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
15. Baxa, M., Juhas, S., Pavlok, A., Vodicka, P., Juhasova, J., Hruška-Plocháň, M., Motlik, J. (2010). A26 Transgenic miniature pig as an animal model for Huntington’s disease. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A8-A9.
敬请关注玉研仪器微信号
风险提示：丁香通仅作为第三方平台，为商家信息发布提供平台空间。用户咨询产品时请注意保护个人信息及财产安全，合理判断，谨慎选购商品，商家和用户对交易行为负责。对于医疗器械类产品，请先查证核实企业经营资质和医疗器械产品注册证情况。
- 作者
- 内容
- 询问日期
文献和实验小动物脑立体定位仪部分参考文献：
1. Albéri, L., Lintas, A., Kretz, R., Schwaller, B., & Villa, A. E. (2013). The calcium-binding protein parvalbumin modulates the firing 1 properties of the reticular thalamic nucleus bursting neurons. Journal of neurophysiology, 109(11), 2827-2841.
2. Sonati, T., Reimann, R. R., Falsig, J., Baral, P. K., O’Connor, T., Hornemann, S., Aguzzi, A. (2013). The toxicity of antiprion antibodies is mediated by the flexible tail of the prion protein. Nature, 501(7465), 102-106.
3. Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013). Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in Rats: Implications for Limbic Epilepsy. PLOS ONE, 8(6), e66962.
4. Bell, L. A., Bell, K. A., & McQuiston, A. R. (2013). Synaptic Muscarinic Response Types in Hippocampal CA1 Interneurons Depend on Different Levels of Presynaptic Activity and Different Muscarinic Receptor Subtypes. Neuropharmacology.
5. Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
6. Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
7. Babaei, P., Tehrani, B. S., & Alizadeh, A. (2013). Effect of BDNF and adipose derived stem cells transplantation on cognitive deficit in Alzheimer model of rats. Journal of Behavioral and Brain Science, 3, 156-161.
8. Gilmartin, M. R., Miyawaki, H., Helmstetter, F. J., & Diba, K. (2013). Prefrontal Activity Links Nonoverlapping Events in Memory. The Journal of Neuroscience, 33(26), 10910-10914.
9. Feng, L., Sametsky, E. A., Gusev, A. G., & Uteshev, V. V. (2012). Responsiveness to nicotine of neurons of the caudal nucleus of the solitary tract correlates with the neuronal projection target. Journal of Neurophysiology, 108(7), 1884-1894.
10. Clarner, T., Diederichs, F., Berger, K., Denecke, B., Gan, L., Van der Valk, P., Kipp, M. (2012). Myelin debris regulates inflammatory responses in an experimental demyelination animal model and multiple sclerosis lesions. Glia, 60(10), 1468-1480.
11. Girardet, C., Bonnet, M. S., Jdir, R., Sadoud, M., Thirion, S., Tardivel, C., Troadec, J. D. (2011). Central inflammation and sickness-like behavior induced by the food contaminant deoxynivalenol: A PGE2-independent mechanism.Toxicological Sciences, 124(1), 179-191.
12. Hruška-Plocháň, M., Juhas, S., Juhasova, J., Galik, J., Miyanohara, A., Marsala, M., Motlik, J. (2010). A27 Expression of the human mutant huntingtin in minipig striatum induced formation of EM48+ inclusions in the neuronal nuclei, cytoplasm and processes. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
13. Brooks, S., Jones, L., & Dunnett, S. B. (2010). A29 Frontostriatal pathology in the (C57BL/6J) YAC128 mouse uncovered by the operant delayed alternation task. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A10.
14. Yu, L., Metzger, S., Clemens, L. E., Ehrismann, J., Ott, T., Gu, X., Nguyen, H. P. (2010). A28 Accumulation and aggregation of human mutant huntingtin and neuron atrophy in BAC-HD transgenic rat. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
15. Baxa, M., Juhas, S., Pavlok, A., Vodicka, P., Juhasova, J., Hruška-Plocháň, M., Motlik, J. (2010). A26 Transgenic miniature pig as an animal model for Huntington’s disease. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A8-A9.
螺帽和 PE 管均可以采用高压蒸汽、紫外、环氧乙烷等方式进行消毒灭菌；2. 使用 PE 管前，可以用大头针将 PE 管的一端接头撑大一点或者用酒精泡一小会，便于插入注射内管。插入注射内管时，务必注意的是，PE 管必须套在白色层外层（非金属管外层），否则易脱落、松动，导致漏液，如下图红色箭头所示；3. 因 PE 管、注射内管内部存在死体积，因此在将注射内管、PE 管、锁紧螺帽、注射器组装好以后，插入导管前，应将注射液（比如药物）将 PE 管和注射内管充满，保证注射的准确。操作方法：向前推注射器，直至
手术： 以大小鼠为例，将实验动物麻醉，常用戊巴比妥钠或水合氯醛静脉注射的方法，有条件也可使用气 体麻醉。去除动物头顶处的毛，将动物固定在脑立体定位仪上，然后将头皮剪开，将组织清理干净， 露出头骨，可以比较清晰的看见骨缝。利用骨缝进行定位，确定电极植入的位置。 用颅骨钻在颅骨开天窗，一般方形的窗比较常用。小心取下骨片，再在天窗对侧脑区打下几个螺钉 孔，用来固定颅骨螺钉，一般打 2 至 4 个。用 1 ml 注射器针头小心去除硬脑膜，尽量避免出血。 （2）电极植入
这些不同的工具并给出了使用技巧。这包括针头夹持器，在手术过程中用来固定缝合针的器械。案例研究：持针器当使用棘轮关闭时，针架通常被锁定在适当的位置，棘轮基本上由仪器柄上的锯齿组成，当仪器关闭时，棘轮会一起开槽。针托用于精细的工作，在使用时非常频繁地锁定和解锁，因此使用它们的外科医生发现它们尽可能容易使用是至关重要的。为了打开针架，右手外科医生只需用拇指按下上手柄。这会导致连接到上把手的轴的一部分的牙齿与下把手的牙齿发生偏移。然后仪器解锁并打开（图1）。然而，当保持架放在左手时，同样的推压动作现在从另一
技术资料
