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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
低温运输
- 保质期:
一年
- 英文名:
RIPA Lysis Buffer(Strong)
- 库存:
943
- 供应商:
北京百奥莱博科技有限公司
特别声明:本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品,严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。
强RIPA裂解液特价优惠是高品质的蛋白质研究产品,由北京百奥莱博供应,用于科研实验,本产品质量好,且极具价格优势,深为用户称道,了解更多强RIPA裂解液等蛋白质研究产品请联系我司咨询订购。
名称:强RIPA裂解液特价优惠
规格:250mL
产地:国产|进口
英文名:RIPA Lysis Buffer(Strong)
品牌:百奥莱博
RIPA裂解液是一种传统的细胞组织快速裂解液。RIPA裂解液裂解得到的蛋白样品可以用于常规的Western、IP等实验。本产品裂解强度较强,对膜蛋白、胞浆蛋白、核蛋白、胞浆磷酸化蛋白和各种转录因子均有很好的效果,本产品含有各种蛋白酶和磷酸蛋白酶抑制剂,能有效防止各种蛋白酶对目的蛋白的降解。我公司各种RIPA裂解液产品特点见下表:
| 产品名称 | RIPA裂解液(强) | RIPA裂解液(中) | RIPA裂解液(弱) |
| 有效裂解成分 | 1% Triton X-100,1% deoxycholate,0.1% SDS | 1% NP-40,0.5% deoxycholate,0.1% SDS | 1% NP-40,0.25% deoxycholate |
| 裂解强度 | 强 | 中 | 温和 |
| 对膜蛋白的提取 | 很好 | 较好 | 一般 |
| 对胞浆蛋白的提取 | 很好 | 很好 | 很好 |
| 对核蛋白的提取 | 很好 | 较好 | 较好 |
| 胞浆磷酸化蛋白提取 | 很好 | 很好 | 很好 |
| 细胞核转录因子提取 | 很好 | 很好 | 很好 |
| 含蛋白酶抑制剂 | 是 | 是 | 是 |
| 含磷酸酯酶抑制剂 | 是 | 是 | 是 |
| 主要用途 | WB,IP | WB,IP | WB,IP,co-IP |
储存条件:低温运输,4℃保存,有效期一年。
使用方法:
对于培养细胞样品:
1. 融解RIPA裂解液,混匀。取适当量的裂解液,在使用前数分钟内加入PMSF,使PMSF的最终浓度为1mM。
2. 裂解细胞
2.1 对于贴壁细胞:去除培养液,用PBS、生理盐水或无血清培养液洗一遍(如果血清中的蛋白没有干扰,可以不洗)。按照6孔板每孔加入150-250微升裂解液的比例加入裂解液。用枪吹打数下,使裂解液和细胞充分接触。通常裂解液接触细胞1-2秒后,细胞就会被裂解。
2.2 对于悬浮细胞:离心收集细胞,用手指把细胞用力弹散。按照6孔板每孔细胞加入150-250微升裂解液的比例加入裂解液。再用手指轻弹以充分裂解细胞。充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。如果细胞量较多,必需分装成50-100万细胞/管,然后再裂解。
3. 充分裂解后,10000-14000g离心3~5分钟,取上清,即可进行后续的PAGE、Western和免疫沉淀等操作。
注意:通常6孔板每孔细胞加入150微升裂解液已经足够,但如果细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到200微升或250微升。
对于组织样品:
1. 把组织剪切成细小的碎片。
2. 融解RIPA裂解液,混匀。取适当量的裂解液,在使用前数分钟内加入PMSF,使PMSF的最终浓度为1mM。
3. 按照每20毫克组织加入150-250微升裂解液的比例加入裂解液。(如果裂解不充分可以适当添加更多的裂解液,如果需要高浓度的蛋白样品,可以适当减少裂解液的用量。)
4. 用玻璃匀浆器匀浆,直至充分裂解。
5. 充分裂解后,10000-14000g离心3~5分钟,取上清,即可进行后续的PAGE、Western和免疫沉淀等操作。
6. 如果组织样品本身非常细小,可以适当剪切后直接加入裂解液裂解,通过强烈vortex使样品裂解充分。然后同样离心取上清,用于后续实验。直接裂解的优点是比较方便,不必使用匀浆器,缺点是不如使用匀浆器那样裂解得比较充分。
注意:RIPA裂解液的裂解产物中经常会出现一小团透明胶状物,属正常现象。该透明胶状物为含有基因组DNA等的复合物。在不检测和基因组DNA结合特别紧密的蛋白的情况下,可以直接离心取上清用于后续实验;如果需要检测和基因组结合特别紧密的蛋白,则可以通过超声处理打碎打散该透明胶状物,随后离心取上清用于后续实验。如果检测一些常见的转录因子,例如NF-kappaB、p53等时,通常不必进行超声处理,就可以检测到这些转录因子。
备注:
1.为取得最佳的使用效果,尽量避免过多的反复冻融。可以适当分装后使用。
2.裂解样品的所有步骤都需在冰上或4℃进行。
3.用RIPA裂解液裂解得到的蛋白样品,建议使用BCA蛋白浓度测定试剂盒,不建议使用Bradford法测定由本裂解液裂解得到样品的蛋白浓度。
欲咨询购买强RIPA裂解液特价优惠,请致电北京百奥莱博科技有限公司,为您提供最全面周到的产品服务,除此之外,我公司正在促销以下产品:
·电泳级SDS溶液(10%)
编号:BTN100881
英文名称:SDS Solution,EG
规格:250mL
本产品是电泳级的SDS溶液,专门用于配制SDS-PAGE和Tricine-SDS-PAGE凝胶,也可用于制备变性上样液。当SDS与蛋白质的重量比超过4:1时(一般终浓度为0.1%即可),就能够打开蛋白质的二级结构,并且使蛋白质的在SDS-PAGE胶中的泳动速度只取决于分子大小。如果蛋白质含有二硫键,必须在上样液中补充足够b-巯基乙醇。
储存条件:常温运输及保存,有效期一年。
·Zenker固定液
编号:BTN131223
英文名称:Zenker Fixative Solution
规格:250mL
Zenker固定液是常用的混合型固定液,是细胞学及病理学常用的固定剂之一,由重铬酸*、生汞、乙酸和水混合而成。用该固定液固定的组织,细胞核及细胞浆染色十分清晰,特别是要显示免疫球蛋白、病毒包涵体(如Negri小体)、骨骼肌的横纹等组织时,应用本液可获得良好的结果。
产品特点:
1.Zenker固定液对细胞核固定效果较好,较适合于造血和网状内皮组织等样品的固定。
2.Zenker固定液不能用于保存细胞颗粒,红细胞及含铁血黄素。对含血量较多的组织标本不建议使用Zenker液固定。
3.常作为三色染色的组织固定剂,在三色染色中还作为媒染剂使用。
4.固定时间一般需要12-24小时。
产品组成:
| 成分 | 规格 |
| 溶液A | 250ml |
| 溶液B | 15ml |
| 说明书 | 1份 |
储存条件:常温运输和保存,有效期一年。
使用方法:
1.配制适量体积的Zenker 固定液,按照19:1的比例将溶液A和溶液B混合,搅拌均匀,所得溶液即为Zenker 固定液工作液。注:Zenker 固定液工作液建议即配即用。
2.标本修块,置入Zenker 固定液工作液内固定12~24h(根据样品材料、大小不同,固定时间可能会有较大差异)。
3.固定后,用流水冲洗12h,或者亚硫*(代"酸")*溶液冲洗,也可用1%的*水溶液洗涤。在70%酒精脱水时加入碘(配成0.5%碘酒)脱汞。
4.常规方法脱水、透明。
注意事项:
1.由于Zenker 固定液中含*化汞,固定后必须脱汞。
2.固定后,组织必须用流水冲洗去除重络酸*否则乙醇脱水会引起络显色。
3.本固定液不能用金属容器盛放,组织固定后,也不能用金属镊夹取。
强RIPA裂解液特价优惠关键词:RIPA Lysis Buffer(Strong),BTN131006,强RIPA裂解液
·*苄青霉素溶液
编号:BTN60206
英文名称:Ampicillin Solution
规格:10mL
本产品是浓度为50mg/mL的*苄青霉素溶液,用于分子生物学和组织培养(防止微生物污染和抗性筛选)。
作用原理:能使细菌细胞膜内层的transpeptidase(转肽酶)失活从而抑制细菌细胞壁的合成。
抗性机制:抗性基因bla能特异性表达外周质酶β-lactamase(β-内酰胺酶),该酶可切割*苄青霉素的β-内酰胺环从而使之失活。
储存条件:低温运输,-20℃保存,有效期6个月。
·一站式DNA尿素-PAGE电泳套装
编号:BTN90317
英文名称:One-Stop DNA Urea-PAGE Pack
规格:30次
本品是专门用于DNA 尿素-PAGE电泳的一站式试剂盒。
产品特点:
1.一站式,即开即用,用户不需单独准备各种成分,十分方便。用户不需要单独准备各种成分。
2.可用于DNA 测序、AFLP、DDRT、TGGE和RNase 保护实验等。
3. 安全,免去了实验人员接触粉末状的剧毒物品丙*(代"烯")酰胺。
4.电泳后可直接用于银染、EB染色等实验。
产品组成:
| 成分 | 规格 | 保存 |
| 电泳级尿素 | 210g | 常温 |
| 电泳级丙*(代"烯")酰胺 | 77.34g | 常温 |
| 电泳级甲叉双丙*(代"烯")酰胺 | 2.67g | 常温 |
| 10×TBE电泳液 | 250ml | 常温 |
| 电泳级TEMED | 1.5ml | 4℃,避光 |
| 电泳级过硫*(代"酸")铵 | 1g | 常温 |
| 2×尿素-PAGE上样液 | 1ml | -20℃ |
| 说明书 | 1份 |
储存条件:常温运输,保存条件见上表,有效期一年。
使用方法:
一、PAGE浓度和交联度的选择指南
尿素-PAGE一般推荐用29:1(丙*(代"烯")酰胺:甲叉双丙*(代"烯")酰胺)的交联度,
在此条件下,DNA片段和最适PAGE浓度对应关系如下:
| 单链DNA长度 | 最佳PAGE浓度 | 二甲*青FF迁移率 对应的长度 |
*酚蓝的迁移率 对应的长度 |
| 50-400nt | 8% | 160nt | 45nt |
| 200-1000nt | 5% | 260nt | 65nt |
| 750-2000nt | 3.5% | 460nt | 100nt |
二、制备尿素-PAGE胶
1. 配制尿素-PAGE胶(这是配制100mL胶的用量,配制更大体积的胶则需以此用量为基础按比例增加)
A:新鲜配制10%的APS(过硫*(代"酸")铵):按每0.1 克过硫*(代"酸")铵干粉加1mL超纯水的比例将水加到装有硫*(代"酸")铵干粉的1.5mL EP 管中,摇晃到粉末全部溶解。配制好的10%的APS溶液可以在4℃存放一周。
B:新鲜交联度为29:1的40%的丙*(代"烯")酰胺-甲叉双丙*(代"烯")酰胺溶液(AB溶液,下同):在装有77.34 g电泳级丙*(代"烯")酰胺干粉的瓶中加入约120mL自备的去离子水,然后将全部甲叉双丙*(代"烯")酰胺加入到同一塑料瓶中(可以加少量丙*(代"烯")酰胺溶液冲洗出来以避免粉末有毒粉末飘出。甲叉双丙*(代"烯")酰胺溶解度低,不会溶解在这少量溶液中)。充分摇晃混匀后所得溶液即40%的AB溶液。配制40%而非30%的原因是这样可以在下步留出足够空间加尿素。
C:配尿素-PAGE胶:在一个250mL的三角瓶中,先按下表的用量加入去离子水、40%AB溶液和10×TBE缓冲液。丙*(代"烯")酰胺单体溶液具有神经毒性,一定要戴手套操作。
| PAGE胶浓度 | 各成分用量(尿素为克,其余单位是mL) | 补水到(mL) | ||
| 尿素 | 40%AB溶液 | 10×TBE缓冲液 | ||
| 5% | 42 | 12.5 | 5.0 | 100 |
| 6% | 42 | 15.0 | 5.0 | 100 |
| 7% | 42 | 17.5 | 5.0 | 100 |
| 8% | 42 | 20.0 | 5.0 | 100 |
| 9% | 42 | 22.5 | 5.0 | 100 |
| 10% | 42 | 25.0 | 5.0 | 100 |
| 11% | 42 | 27.5 | 5.0 | 100 |
| 12% | 42 | 30.0 | 5.0 | 100 |
D:搅拌溶解,然后用滤纸过滤。最好能抽真空10-15分钟以去除溶液中的氧气(氧气能抑制丙*(代"烯")酰胺聚合反应),无条件也可以不脱氧。
E:加入500μL 10%APS和100μL TEMED,迅速摇匀后倒胶。
F:在胶的液面距离达到顶部时停止灌胶,插入梳子。
G:室温聚合30-60分钟(低温抑制聚合反应)。
H: 拔出梳子,用0.5×TEB液冲洗加样孔。
三、样品准备
2. 对一般样品、测序样品、微卫星DNA、AFLP样品、DDRT样品、RPA样品:将样品跟上样液1:1 混合,95℃ 3分钟变性,然后放冰上待用。
3. 对TGGE样品:可以直接上样。
四:电泳
4. 将凝胶板固定在电泳装置上,往上槽和下槽中加入足够0.5×TEB电泳液。
5.预电泳5-30分钟将冰上放置的样品上样。
6.连接电源线,打开电源开关。根据胶的大小选择功率(固定功率可以固定产热,这样不容易发生过热而使胶板破裂的现象。如果固定电流或电压,产热都将随电泳时间而变化,不好控制)。对小胶一般用5-6W 固定功率,大胶用15-25W 固定功率。
7. 终止电泳,取出凝胶进行后续的处理(如银染)。注意:如果银染,必须延长固定时间以便让洗出尿素,否则残留尿素会干扰后面的银染。
强RIPA裂解液特价优惠关键词:RIPA Lysis Buffer(Strong),BTN131006,强RIPA裂解液
·DNA甲基化修饰试剂盒
编号:BTN130301
英文名称:Embedded Bisulfite Modification Kit
规格:150次
亚硫*(代"酸")*盐修饰DNA时要求DNA必须在单链状态,反应还必须在低温进行,常规的修饰试剂盒由于是在液相进行,要在低温下让DNA不相互复性而保持单链状态非常棘手,所以常规修饰试剂盒的修饰效率一般都不高。此外,常规方法要切换反应液,有多次沉淀步骤,使得DNA的回收率一般都不超过50%。为克服这些缺点,本公司开发出了此升级产品。
产品特点:
1.用包埋的样品进行所有操作,免去所有沉淀和纯化步骤,极大简化了操作。
2.免去了DNA提取过程,所需实验材料比常规方法更少,最少几个细胞都可以,极大地节约了宝贵材料,尤其适用于珍稀材料。
3.包埋处理后,DNA在整个操作过程中都处于最适于修饰的单链状态,极大提高了修饰效率。
4.DNA包埋于包埋块中,切换反应液非常方便,而且DNA不会丢失,所以最终回收率都在90%以上。
5.适用于实体材料、悬浮细胞和纯化好的DNA样品。
6.本试剂盒足够制备150多个10μL包埋块(如果用纯化好的DNA)或25个10μL包埋块(如果用悬浮细胞)。
试剂盒组成:
| 成分 | 规格 |
| 包埋液 | 1.5ml |
| 分子生物学级石蜡油 | 25ml |
| 包埋块裂解液 | 12.5ml |
| 蛋白酶K溶液(10mg/mL) | 150μl |
| 溶液A | 30ml |
| 溶液B成分一 | 2.3 g×5棕色瓶 |
| 溶液B成分二 | 110mg×5棕色管 |
| TE缓冲液,pH8.0 | 125ml |
| 说明书 | 1份 |
注: 包埋液用1.5mL旋盖离心管包装,溶液B成分一用5mL棕色瓶包装,溶液B成分二用1.5mL旋盖棕色管包装。
储存条件:低温运输、4℃保存、避免反复冻融,有效期一年。
使用方法:
一、准备试剂
1.在装有2.3g溶液B成分一干粉的瓶中加入3.9mL水和0.9mL溶液A,摇晃溶解得到4.8mL溶液B成分一。在装有110mg溶液B成分二干粉的离心管中加入1mL 50℃预热的超纯水,摇晃溶解,得到溶液B成分二。将0.6mL溶液B成分二加入到4.8mL溶液B成分一中,得到5.4mL溶液B,冰上放置待用。未用完的溶液B下次不得再使用。
2.每次实验前,将装有1.5mL包埋液离心管在沸水浴上放置数分钟直到变成溶液,然后放80℃待用。
二、对微量组织材料(如果材料足够,可先纯化DNA,再按第三方案进行)
1.用常规的胰酶消化法处理动物实体组织或培养细胞,得到浓度不超过60细胞/μL的单细胞PBS悬液。如果实验材料已经是单细胞悬浮液(如卵细胞),则PBS洗涤后直接离心沉淀,再重悬在PBS中(浓度不超过60细胞/μL)。注:本试剂盒不含本步所需相关试剂。
2.在一个2mL离心管中加入3μL细胞悬液,再迅速滴加7μL在 80℃预热的包埋液。注:不需要吹打混匀以免混合液在抢头里面凝固。
3.加入500μL分子生物学级石蜡油,将离心管在沸冰浴中放置20分钟。
4.将离心管转移到冰上放置30分钟,低温下包埋液和细胞混合液将凝固成10μL的包埋块。
5.加入500μL包埋块裂解液和5μL Proteinase K溶液,37℃保温过夜。加入的溶液比重都比石蜡油大,将会自动沉降到石蜡油下层,不需离心。
6.吸弃包埋块之外的所有溶液(包括石蜡油),用1mL TE缓冲液室温浸泡包埋块2次,每次15分钟。此步可去除残留包埋块裂解液。
7.酶切包埋块中的DNA:选定不识别PCR靶片段的内切酶(本试剂不提供该相关试剂),再用100μL选定内切酶的1×缓冲室温液浸泡包埋块15分钟,吸弃缓冲液后再加入100μL选定内切酶的1×缓冲液和50U选定的内切酶,37℃保温2小时。
8.吸弃酶切反应液,再加入500μL新鲜配制的处理液A(配制方法:100μL溶液A+400μL超纯水)室温放置15分钟,重复此步一次。此时DNA将呈单链。
9.吸弃处理液A后,用1mL新鲜配制的处理液B(注:不是溶液B,配制方法:50μL溶液A+950μL超纯水)室温浸泡包埋块5分钟。
10.吸弃处理液B,加入750μL石蜡油,然后沸水浴20-30秒,使DNA单链彻底彼此分开。
11.奖离心管转移到冰上放置30分钟使包埋块重新凝固。
12.在离心管中加入1mL预冷的溶液B,溶液B将自动沉降到石蜡油下层。继续在冰上放置30分钟。此步用于修饰单链的DNA。
13.将离心管转移到50℃放置3.5小时。
14.吸弃溶液B,用1mL TE缓冲液常温洗涤包埋块2次,每次15分钟。
15.吸弃TE缓冲液,用500μL新鲜配制的处理液C(50μL溶液A+450μL超纯水)常温洗涤包埋块2次,每次15分钟。
16.吸弃处理液C,用1mL TE缓冲液常温洗涤包埋块3次,每次10分钟.
17.吸弃TE缓冲液,所得包埋块可以在4℃保存数月待用,也可以用超纯水洗涤两次(每次15分钟)后直接用做100μL体系甲基化PCR的模板。
三、对纯化好的DNA
18.选用不识别PCR靶片段的合适内切酶酶切纯化的基因组DNA(本试剂不提供所需试剂),总体积不超过20μL,基因组DNA不超过700 ng。
19.酶切结束后,沸水浴5-10分钟灭活内切酶并变性DNA。
20.冰上放置并短暂离心数秒后,再加入4μL溶液A,50℃保温15分钟。
21.迅速加入50μL在80℃预热的包埋液,用手指快速弹击管底混匀溶液并继续放80℃待用。不要吹打混匀以避免包埋液在移液枪头中凝固。
22.在一个新的2mL离心管中,加入1mL预冷的溶液B,再加上750μL石蜡油,并将离心管放冰上预冷。
23.迅速取80℃保温的混合液10μL,用在空中滴加的方式加到上步准备的预冷的离心管中,滴加的混合液遇冷将迅速在石蜡油中形成包埋块并自动沉入管底,得到1个包埋块。注意:不要将枪头浸入到预冷的溶液中,否则包埋液将迅速在枪头内凝固。如果包埋块没有沉到管底,可以用枪头将其拨到石蜡层下面的液相中。
24.再重复上步操作6次(步骤23),共可以得到7个包埋块(约含100ng DNA)。
25.将离心管(含7个包埋块)继续放冰上30分钟进行修饰。
26.后续操作同第13-17步。
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文献和实验2,左条带为使用普通强裂解液提取的蛋白样品,右条带为柱式法提取的蛋白样品,可见使用柱式法法提取的样品胶孔中可明显改善样品滞留、拖带的情况发生。 图 2:同种样品分别使用裂解液法和柱式法进行 WB 样品制备,SDS-PAGE 电泳后考染图 图片来源:英文特 WB 蛋白样品制备过程中出现样品粘稠的情况并不代表样品提取失败,而是样品裂解较为充分的表现,但是如果放任不管则会引发一系列连锁效应,最终导致 WB 实验失败。选择合适的方法进行处理。成功获得高质量的蛋白样品,是 WB 实验成功必不可少
细胞凋亡是一种在基因控制下的细胞主动死亡过程,通常表现为核浓缩,起皱,膜发泡以及 DNA 片段化。WB 是研究细胞凋亡机理的基本方法之一,但是 WB 也不是谁都能做成功的,因为有可能你的第一步就做错了!用 WB 做细胞凋亡研究样品制备是第一步,样品制备方法至关重要否则会得到错误的结果和结论。样品制备,看你是不是这样做的:自配裂解液或者购买 RIPA,加上样品研磨啊研磨,孵育啊孵育,然后离心扔掉沉淀(RIPA 不可溶组分),取上清(RIPA 可溶组分)进行下游实验。对对对!都是这么做啊,扔
。大家目前最常用的方法是利用溶液法进行蛋白提取(如 RIPA 裂解液),但是往往会在蛋白质提取中产生两个不同的组分,即 RIPA 可溶性和 RIPA 不可溶性组分。通常 RIPA 不可溶性组分被我们直接丢弃忽略。但是已经有文章证实许多蛋白质存在于被丢弃的 RIPA 不可溶性组分中[1,2] 。也就是说利用溶液法提取的并非是完整的总蛋白,而仅仅是一些可溶性蛋白。那使用 RIPA 等溶液法提取的不完整总蛋白做实验,到底会不会影响我们磷酸化蛋白检测和定量研究呢?我们来一起讨论下。Brady 等人中
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