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Tris-甘氨酸转膜缓冲液(pH8.3,10×)促销

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  • 百奥莱博
  • 北京
  • WE0311-KPN
  • 2025年07月12日
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    • 英文名

      Tris-Glycine Transfer Buffer(pH8.3, 10×)

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      517

    • 供应商

      北京百奥莱博科技有限公司

    特别声明:本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品,严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。

    Tris-甘*酸转膜缓冲液(pH8.3,10×)促销的品牌:百奥莱博,是优质的蛋白质研究产品,用于科研目的生化试验项目,本产品质量好,且极具价格优势,深为用户称道,了解更多Tris-甘*酸转膜缓冲液(pH8.3,10×)等蛋白质研究产品请联系我司咨询订购。


    名称:Tris-甘*酸转膜缓冲液(pH8.3,10×)促销
    编号:WE0311
    英文名:Tris-Glycine Transfer Buffer(pH8.3, 10×)
    产地:国产|进口
    规格:500ml

    Tris-甘*酸转膜缓冲液(pH8.3,10×)促销外,我公司正在打折促销以下产品:
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    Tris-甘*酸转膜缓冲液(pH8.3,10×)促销关键词:WE0311,Tris-Glycine Transfer Buffer(pH8.3, 10×),Tris-甘*酸转膜缓冲液(pH8.3,10×)

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    Tris-甘*酸转膜缓冲液(pH8.3,10×)促销关键词:WE0311,Tris-Glycine Transfer Buffer(pH8.3, 10×),Tris-甘*酸转膜缓冲液(pH8.3,10×)


    ·口腔拭子基因组DNA提取试剂盒
    编号:WE0179
    英文名称:Swab Genomic DNA Extraction Kit
    规格:50次|200次
      本试剂盒提供一种简单快速分离纯化口腔拭子样本总DNA的方法。该试剂盒采用可特异性结合DNA的硅基质膜和独特的缓冲系统,高效专一吸附DNA,每个拭子可得到0.5-3.5μg基因组DNA,提取的DNA片段大、纯度高、质量稳定可靠。适用于酶切、PCR、文库构建、Southern杂交等实验。

    试剂盒组成

     
    组份 50次 200次
    Buffer GR 25ml 120ml
    Buffer GL 25ml 120ml
    Buffer GW1(浓缩液) 13ml 52ml
    Buffer GW2(浓缩液) 15ml 75ml
    Buffer GE 15ml 60ml
    蛋白酶K 25mg 90mg
    蛋白酶K 储存液 1.25ml 5ml
    吸附柱DS及收集管 50套 200套
    离心管(1.5ml) 50个 200个


    产品特点
    1、采用硅基质膜原理,简单、快速从口腔拭子中提取基因组DNA。
    2、提取的基因组DNA片段大、纯度高。
    3、单个拭子样本得率达到0.5-3.5μg。

    自备试剂:无水乙醇。

    实验前准备及重要注意事项/strong>:
    1、向蛋白酶K 中加入指定用量(1.25ml/5ml)的蛋白酶K 储存液使其溶解,-20℃保存。配制好的蛋白酶K 勿长时间室温放置,避免反复冻融,以免影响其活性。
    2、第一次使用前应按照试剂瓶标签说明在Buffer GW1和Buffer GW2中加入无水乙醇。
    3、使用前若发现Buffer GL有沉淀,请将Buffer GL于56℃水浴溶解。
    4、全部离心步骤可在室温下进行。
    5、取样:使用口腔拭子在口腔内壁擦拭6次,晾干2小时保存,为确保样本不被食物或饮料污染,取样前30分钟内请勿进食和饮水。

    操作步骤

    1.将口腔拭子的棉签用剪刀从杆上剪下,置于2ml的离心管(自备)中,加入400μl Buffer GR。
    注意:如需无RNA污染的基因组DNA,可加入4μl浓度为100 mg/ml 的RNase A溶液(货号:WE0225S),震荡混匀。
    2.加入20μl 蛋白酶K 和 400μl Buffer GL,立即涡旋震荡15秒,充分混匀。
    注意:加入Buffer GL后立即充分混匀;不可将蛋白酶K 直接加入Buffer GL中使用。
    3.56℃放置10分钟,短暂离心,使管壁上的溶液收集到管底。
    4.加入400μl无水乙醇,涡旋震荡充分混匀,短暂离心,使管壁上的溶液收集到管底。
    注意:加入无水乙醇后可能会产生白色沉淀,不会影响后续实验。
    5.将上步所得溶液和沉淀分两次加入到已装入收集管的吸附柱中,一次最多不超过700μl 。12000rpm(~~13400×g)离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
    6.向吸附柱中加入500μl Buffer GW1(使用前检查是否已加入无水乙醇),12000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
    7.向吸附柱中加入500μl Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇),12000rpm离心3分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
    注意:如需进一步提高DNA纯度,可重复步骤7。
    8.12000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液。将吸附柱置于室温数分钟,以彻底晾干。
    注意:这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。
    9.将吸附柱置于一个新的1.5ml离心管中,向吸附柱的中间部位悬空加入50μl Buffer GE或灭菌水,室温放置2-5分钟,12000rpm离心1分钟,收集DNA溶液,-20℃保存。
    注意:
    1)如果下游实验对pH值或EDTA敏感,可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响,若用水做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围),pH值低于7.0时洗脱效率不高。
    2)若需长期保存,推荐用Buffer GE洗脱并于-20℃保存。

    储存条件:室温(15~30℃)。




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