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长期
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406
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北京百奥莱博科技有限公司
特别声明:本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品,严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。
北京百奥莱博专注于生命科学和生物技术领域,致力于为客户提供包括6×RNA loading buffer厂家在内的一系列分子生物学试剂产品,并提供一系列相关的技术服务。
名称:6×RNA loading buffer厂家
编号:XH021
品牌:百奥莱博
产地:国产|进口
规格:1ml
试剂组成:0.5M EDTA pH8.0,甘油,*酚蓝
此产品是将6×DNA loading buffer经过DEPC处理高压后而成。
使用时,可以在PE手套上,取1ul 6×RNA loading buffer再加入5ul RNA混匀即可上样。
此RNA loading buffer只适合于常规的RNA琼脂糖,高电压(250V),快速电泳,在RNA来不及降解时就电泳结束了。如果要做RNA甲醛变性胶电泳的话,可选用4×甲醛变性胶上样缓冲液。
除6×RNA loading buffer厂家外,我公司正在打折促销以下产品:
·载体两性电解质PH5-7
编号:XH071
规格:12ml
别名:两性电解质两性电解质载体(PH5-7):Ampholyte solution、Ampholine。
性状;近无色至浅黄色透明液体,有粘性,为一中相对分子质量300-1000的人工合成的多*基多羧酸系列两性化合物的复杂混合物。
溶度:为40%的溶液
用途:用于生物大分子蛋白质和酶的等电聚焦电泳
储存:充氮密封4℃保存。保持期,两年。开启后请尽快用完。
·线粒体提取试剂盒
编号:XH058
规格:50T/100T
二,说明
线粒体提取试剂盒用于从动物细胞或组织中分离出完整而纯化的线粒体。适合于动物软组织(肝或脑组织)和硬组织(肌肉)以及培养细胞的线粒体的制备。其制备物产量高,可以被用于细胞凋亡、信号传递、代谢和蛋白组学等的研究。
三,操作步骤
1. 样本处理
a. 组织匀浆:称取100~200 mg新鲜组织如肝脏、脑、心肌等,PBS或生理盐水冲洗,洗净血水,滤纸吸干,用剪刀剪为碎块放入小容量玻璃匀浆器内。加入1.0 mL冰预冷的Lysis Buffer,0℃冰浴上下研磨组织20次;
b. 培养细胞匀浆:消化细胞,PBS洗涤,800 × g 5~10 min离心收集细胞。计数。每次提取需要5 × 107个细胞,加入1.0 mL冰预冷的Lysis Buffer重悬细胞,将细胞悬液转移到小容量玻璃匀浆器内,0℃冰浴研磨30~40次;
2. 将组织或细胞匀浆物转移到离心管,4℃,1000× g 离心5 min;
3. 取上清,加入一新的离心管中,4℃,1000× g 再次离心5 min。
4.取上清,加入一新的离心管中,4℃, 12,000 × g 离心10 min。离心后的上清含胞浆成分,可从中提取胞浆蛋白。将上清转移到新离心管,线粒体沉淀在管底;
5. 在线粒体沉淀中加入0.5 mL Wash Buffer重悬线粒体沉淀,4℃,1000× g 离心5 min;
6.取上清,加入一新的离心管中,4℃, 12,000 × g 离心10 min。弃上清,高纯度的线粒体沉淀在管底;
6. 用50 -100μL Store Buffer 或合适的反应缓冲液重悬线粒体沉淀,立即使用或-70℃保存。
四 注意事项:
1. 为保证获得完整的线粒体,第一是全程低温操作。第二是快速。第三,在不破坏亚细胞器的情况下破碎细胞是制备线粒体的最关键环节。与组织块相比,培养细胞特别是贴壁培养细胞在用玻璃匀浆器匀浆时较难破壁,因而要选用小容量玻璃匀浆器、间隙严密的研杵上下研磨培养细胞。
2. 以离心力g计算正确的离心速度,不同的离心机可据此精确计算离心速度。
3. 进行Western Blot和2D-胶电泳,可直接加入上样缓冲液裂解线粒体。
五 储存:四周内使用可4℃储存,长期置-20℃
转速与离心力换算
G=1.11×(10-5)×R×[rpm]2
G为离心力,一般以g(重力加速度)的倍数来表示;
[rpm] 2即:转速的平方; R为半径,单位为厘米。
6×RNA loading buffer厂家关键词:百奥莱博,XH021,6×RNA loading buffer
聚蔗糖70 Decyl-β-D-1-thioglucopyranoside 26873-85-8
ARB11685 人葡萄糖转运蛋白1(GLUT1)elisa检测操作说明书 Human glucose transporter 1,glut1 ELISA KIT
BTN70102 蛋白质电泳分子量标准 Protein Marker
ARB14058 蓖麻凝集素(RCA)elisa检测 Ricinus communis agglutinin,rca ELISA KIT
11089-65-9 衣霉素 Tunicamycin
PY08-077 LB琼脂平板 9CM 10皿/盒,用于细菌培养
5"-二磷酸葡萄糖腺苷二*盐 2-dT 102129-65-7
2′-脱氧鸟苷-5′-单磷酸二*盐 DMTMM 33430-61-4
醋酸去氧皮质酮 IAA 56-47-3
ARB13024 小鼠肝细胞生长因子(HGF)免费代测 Mouse hepatocyte growth factor,hgf ELISA KIT
ARB11754 人蜗牛同源物2(SNAI2)Elisa分析 Human snail homolog 2,snai2 ELISA KIT
黑色素(醇溶) 12-Aminolauric acid 8005-02-5
ARB12289 大鼠抗内皮细胞抗体(AECA)酶联免疫定量检测 Rat anti-endothelial cell antibody,aeca ELISA KIT
6×RNA loading buffer厂家关键词:百奥莱博,XH021,6×RNA loading buffer
·真菌基因组DNA提取试剂盒(非柱式)
编号:XH007
规格:50T/200T
原理简介
真菌是具有真核和细胞壁的异养生物。种属很多,已报道的属达1万以上,种超过10万个。真菌通常又分为三类,即酵母菌、霉菌和蕈菌(大型真菌)。对于酵母菌和霉菌,可以用玻璃珠处理,而对于大型真菌,可直接用液液氮研磨。经过前期处理的菌液,再经过裂解液及蛋白酶处理后,玻璃奶吸附DNA,去掉其他杂质,,可得到高纯度的基因组。提取纯化后的DNA,可以直接用于 PCR/Real time-PCR,sequencing,Southern blot,mutant analysis,SNP 等下游应用实验。
注意事项
1.由于真菌种类万千,对于一些特别难处理的真菌,可用液氮研磨,再用玻璃珠振荡,蛋白酶K处理,一般都可以得到一定量的基因组DNA,如电泳检测很弱,一般PCR都会有较好结果。
2.如果DNA提取量很少,可加长玻璃珠处理时间,如果提取DNA片段很短,成弥散条带,可减少玻璃珠处理时间。
操作步骤
1.样品的处理:
1)对于酵母菌,取1-2ml培养好的菌液,离心收集,弃上清。加入300ul 裂解液,加入10ul RNase A,再加入100mg玻璃珠,在高速振荡器上振荡,约5-10min。
2)霉素(孢子也可相同处理):取50-100mg菌丝,加300ul裂解液,用玻璃研磨器适当研磨分散菌丝,加入10ul RNase A,再加入100mg玻璃珠,在高速振荡器上振荡,约30min。
3)大型真菌(如蘑菇等):称取50-100mg样品,倒入适量的液氮,立即研磨重复3 次,使样品研成粉末(如无液氮,可加300ul裂解液后用玻璃研磨器适当研磨),加300ul裂解液,加入10ul RNase A,再加入100mg玻璃珠,在高速振荡器上振荡,约5min。
2.加入10ul 10mg/ml的蛋白酶K,充分混匀,55℃水浴消化,15-30min。消化期间可颠倒离心管混匀数次。
3.12000转离心2min。将上清转移到一个新的离心管中。如有沉淀,可再次离心。
4.在上清中加入三倍体积无水乙醇,充分混匀。
5.12000rpm离心5分钟,去上清,核酸在沉淀中。
6.沉淀中加入500ul结合液,55℃水浴1-2分钟,核酸沉淀可溶解。
6.玻璃奶摇匀。加入50ul摇匀的玻璃奶,混匀,室温放置2分钟,10000转/分钟离心1分钟,去上清;沉淀加入1ml 70%乙醇,振荡混匀,10000转/分钟离心1分钟,去上清,70%乙醇重复洗一次,再用无水乙醇洗一次。去上清,再次离心2分钟,用小吸头吸去上清。
7.室温放置10分钟(如果玻璃奶加量,请适当延长放置时间,此步为去除残余酒精,以免影响下游实验),加入50-100ul TE缓冲液混匀溶解,55℃水浴5分钟。离心,取上清为所提基因组。
8.电泳或者其他方法检测,进入下游实验。
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文献和实验【求助】提质粒后,跑电泳,用10乘Loading Buffer 还是6乘Loading Buffer?
ilovelc999 请问各位,提质粒后,用20微升TE溶解,然后进行电泳,应该用10乘Loading Buffer 还是用6乘Loading Buffer?另外Buffer与质粒溶液一般应以什么比例混合好呢?多谢各位啦! 纯属菜鸟 10乘 5:1的比例 质粒5 肥宝 我是用6X的,1:5,质粒5,不过也没那么严格,一般也就点个小点估计1ul lihuijin017
Electrotransfection with Intracellular Buffer
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Radiolabeled sequencing gel preparation, loading, and electrophoresis
to the buffer chambers. The wells are cleaned by circulating buffer into the wells with a syringe and, immediately prior to the loading of each sample, the urea in each well is suctioned out with a mouth pipette. Each base-specific sequencing reaction
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