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北京普凯瑞生物科技有限公司
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50反应
KAPA HiFi高保真甲基化文库扩增试剂

甲基化研究时,亚硫酸盐处理将未被甲基化的C转变成U,导致基因片段中存在U。高保真酶因为有修复错配的功能,所以扩增过程中遇到U时会将其认作错误碱基进行切断,导致反应无法继续进行。KAPA HiFi Uracil+是在KAPA HiFi的基础上进行了改造,使其在PCR反应过程中遇到U不会终止反应,保证反应的正常进行。
1、主要应用
(1)二代测序中甲基化文库扩增; (2)其他甲基化研究。
2、技术优势
(1)可扩增含U的基因片段;(2)快速、高效; (3)产物Bias少;
(4)可扩增高AT/GC模板; (5)文库覆盖度高。
3、产品特点
(1)dUTP的存在对扩增无影响


上图:实时荧光PCR扩增含Uracil体系,显示dUTP对KAPA Uracil+无抑制作用。用SYBR Green荧光定量PCR监测452bp基因的扩增情况,模板10倍梯度稀释(80pM-0.8fM),一组含有0.2mM的dUTP,另一组不含dUTP。扩增用的试剂分别为KAPA HiFi、KAPA HiFi Uracil+。结果显示KAPA HiFi在dUTP存在的情况下显著被抑制,而KAPA HiFi Uracil+则不受影响制。
(2)高效扩增经过亚硫酸盐处理的人类全基因组文库
亚硫酸盐处理容易造成DNA损伤和降低DNA产物量。所以扩增时,因为抑制剂的存在、高A/T含量、DNA受损伤等因素叠加,导致了PCR产物量偏低、片段尺寸不合适、GC Bias等负面情况的发生。为了对比KAPA HiFi Uracil+与安捷伦的Pfu Turbo Cx,我们对比扩增亚硫酸盐处理之后的人类基因组文库,验证文库扩增产量和扩增Bias。

用KAPA文库制备试剂盒制备片段长度为200-400bp的人类基因组文库,模板为5μg人类基因组DNA。亚硫酸盐处理之后,用KAPA文库定量试剂盒进行定量,发现约2.7%未转化基因组DNA残留。分别用KAPA HiFi Uracil+和安捷伦Pfu Turbo Cx扩增未稀释的亚硫酸盐处理后基因组DNA,然后再Bioanalyzer2100上进行分析扩增产物,结果如下图所示。

上面3幅图所示:与安捷伦Pfu Turbo Cx相比,KAPA HiFi Uracil+扩增的文苦苦产量更高(图B),扩增批次间Bias更少(图C)。扩增循环数分别为12、14或16个,产物的分析采用Bioanalyzer2100(图A)。
(3)扩增高A/T真菌全基因组文库

上图:与安捷伦Pfu Turbo Cx相比,KAPA HiFi Uracil+扩增产物量较高,片段尺寸相对较大。(Bioanalyzer2100分析)。

如上两图所示:与安捷伦Pfu Turbo Cx相比,KAPA HiFi Uracil+扩增甲基化文库优势明显,主要体现在覆盖深度以及扩增高AT/GC模板上。以上两图的结果为寄生虫基因组DNA经亚硫酸盐处理后,分别用安捷伦Pfu Turbo Cx和KAPA HiFi Uracil+扩增后经lllumina GAllx测序后的结果。
(4)人类甲基化测序:USC Epigenome中心用KAPA HiFi Uracil+评价人类基因组甲基化文库测序

4、产品信息
| 货号 | 产品 | 规格 |
| KK2801 | HiFi高保真甲基化文库扩增试剂 | 50次×50μl |
| KK2802 | HiFi高保真甲基化文库扩增试剂 | 250次×50μl |
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文献和实验含有这两种酶切位点序列。 已经开始进行ta克隆 如楼上战友所述,TA克隆的确是长片段亚克隆的好的手段。我最初开始学习构建质粒的时候也是先上TA,不过我们实验室一直使用一种KAPA HIFI readymix的酶,效果很好,保真性也非常非常高,就是做TA的时候比较麻烦,需要把PCR产物纯化回收后再加一次A tail,而就是这一步我感觉一直没有摸索到最优化稳定的条件,所以每次加A后连pCR2.1 转化的结果都不稳定,有时候长的多有时候长得少,之前曾经就这个问题发帖
还是老板亲自动手演示了一遍,学到正宗的克隆技术,才得以成功。关于你的这个克隆,我的意见如下: 1)选用好一点的聚合酶,保证序列的保真性。我们一直使用一种叫做KAPA HIFI READYMIX的酶,很方便,扩增能力和保真度都超级好。普通的taq酶扩增长片段容易出错,反而浪费时间和试剂。 2) 如果直接酶切PCR产物,请确保你的上下游引物5'端已经引入合适的酶切位点和保护碱基(非常重要),我当时选用的是XhoI和HindIII这两个位点。 3)凡是用来做克隆的DNA产物,跑胶一定
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