AcroPrep 24孔 GHP过滤板，0.2 µm

人肠道类器官制备及微生物共培养实验流程（一）

汇合时，根据实验需求更换为分化培养基。 10.细胞达到汇合状态后，在适宜的暴露培养基中将微生物加入顶端或基底侧。计算 MOI时，可收集代表性孔的细胞进行计数，方法同前。 11.参照三维共培养的方法开展后续检测。   细菌与类器官的制备 显微注射用类器官制备 1.注射前约10天：取一孔长满的24孔板类器官（约300000个细胞或150个直径约300µm的类器官），按照机械剪切类器官。通过窄口玻璃巴氏吸管反复吹打，保证类器官片段大小均一。将类器官低密度接种（每个约20μL的BME穹窿

MSCs成骨诱导全流程操作规范与质控要点

培养基（用于诱导前扩增）、MSCs（建议原代或低代次，≤P4）、24孔板（或其他规格，按面积折算接种密度）。 储存条件：成骨诱导培养基：避光，4℃，有效期1个月；明胶包被后培养器皿：无菌+明胶不蒸干条件下，4℃可保存2周。 二、明胶包被 1.在每个培养瓶或皿中吸取每孔500 µL（24孔板）或按孔底面积0.1 mL/cm²计算的0.1%明胶溶液，倾斜以确保均匀覆盖，37℃孵育1-2小时，或者4℃过夜； 2.在加入培养基和细胞之前，在无菌环境中抽吸明胶溶液，并用PBS溶液涮洗一到两次，吸干残留PBS，避免

植物蛋白芯片的构建和抗原抗体相互作用的研究

压下尽快进行（要快速建立真空且持续时间不要过长，否则，过滤板就会过于渗漏）。 ( 6 ) 另一个高通量纯化蛋白质的方法就是应用 Qiagen  BioRobot 8000 和 Ni-NTA Superflow 96 BioRobotKit  (Qiagen) 系统 [14]，使用与手工纯化相同的缓冲液来裂解、冲洗和洗脱 （见 28.2.1)。与手工纯化方法相比，机器自动纯化方法的劣势就是实验药品消耗较大，以及洗脱体积无法调节到低于 350 μl。用手工纯化方法，洗脱体积可从 30~80 μl