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Mitophagy Detection Kit
研卉生物
MD01
1set
常见问题Q&A
Q1: 本试剂盒和现存传统方法相比有何优势? |
A1: 与PH敏感并基于Keima荧光蛋白检测方法相比,本试剂为小分子荧光试剂,因此无需表达荧光蛋白。 另外,可以通过与用于普通活细胞成像的荧光试剂用相同的操作方法对其进行染色和共同观察。 |
Q2: 使用DMSO配置后的储存液稳定性如何? |
A2:Mtphagy Dye、Lyso Dye均在制备后需保存在-20℃情况下可以稳定保存1个月。建议按照实验用量, 提前分装保存。 |
Q3: 工作液稳定性如何 |
A3: 无法保存,建议现配现用。 |
Q4: 培养基中有酚红会影响检测吗? |
A4:观察的时候,如果使用共聚焦激光显微镜的话,几乎不会受到酚红的影响,但是使用落射型荧光显微 镜的话,会观察到酚红色的背景。(参照以下观察数据)因此使用落射型荧光显微镜时,请在Working solution进行染色时使用不含酚红的培养基或HBSS。 |
Q5: 荧光显微镜推荐的滤镜是什么? |
A5:根据各种试剂推荐以下波长。 Mtphagy Dye:激发(500~560 nm)、发射(670~730 nm) Lyso Dye:激发(350~450 nm)、发射(500~560 nm) |
Q6:与其他深红色染料共同染色时的注意事项。 |
A6:Mtphagy Dye比一般的红色系荧光染料相比波长更长,所以和Deep Red的荧光染料一起染色的时候 需要特别注意。即Mtphagy Dye在500–560 nm处激发,可在670-730 nm处检测到荧光,这时与 MitoBright Deep Red的荧光检测波长重叠。因此,有必要在不激发深红色染料的波长下激发Mtphagy 染料,同时在不激发Mtphagy染料的波长下激发深红色染料。 [泄漏的情况] ① 制备仅添加了MitoBright Deep Red(没有添加Mtphagy Dye)的细胞。 ② 通过观察MitoBright Deep Red的激发/发射波长,确认是否观察到荧光(右下图)。 ③ 用Mtphagy Dye的激发/发射波长观察,确认是否观察到荧光(左下图)。 和③中,观察到来自MitoBright Deep Red的荧光(左下图)。 *如果如上所述确认荧光泄漏,请参阅以下内容。 ○调整激发/发射波长 如以上确认如图所示,MitoBright Deep Red也在Ex 561 nm处激发,因此可以将Mtphagy Dye的激发 波长更改为接近激光器或滤光片的500 nm,以使MitoBright深红色不被激发。
调整荧光强度和荧光检测灵敏度 如果MitoBright Deep Red的荧光泄漏到Mtphagy染料的观察波长中,请将观察过程中的激发强度或 灵敏度降低到未观察到荧光的水平。 然后,再确认改变后的观察条件下可以检测Mtphagy Dye的荧光。 [如何检查泄漏] 使用Mtphagy Dye,Lyso dye(溶酶体染色剂),MitoBrightLT Deep Red(线粒体染色剂) 进行三重染色时进行确认 1.在3个培养皿或孔中制备细胞。 (Mtphagy Dye、Lyso Dye、MitoBright Deep Red分别在在不同的皿或孔中进行染色) 2.向每个孔中添加Mtphagy Dye和MitoBright Deep Red。 (在无血清培养基中) 3.在37°C下孵育30分钟。 4.进行自噬诱导条件下(如饥饿培养等)进行培养。 5.向上述2.中未使用的细胞添加Lyso Dye。(在无血清培养基中) 6.在37°C下孵育30分钟。 7.观察每种试剂的激发波长和荧光波长以及荧光强度。 8.检查所用试剂以外的观察波长处的荧光是否没有泄漏。 [观察条件] Lyso Dye:Ex:350-450 nm,Em:500-560 nm Mtphagy Dye:Ex : 500-560 nm,Em :670-730 nm MitoBright Deep Red:Ex :640 nm,Em :656-700 nm |
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