CLIP-tag

对比 Strep-tag 与 His-tag 系统异同点？

质，小分子或是金属。当融合有亲和标签的蛋白通过标签-配体作用结合再层析基质上时，通过洗杂步骤，即可去除掉其他的细胞成分。 为了洗脱所需要的蛋白质，通过改变缓冲液的条件，如pH，或通过竞争亲和标签和配体连接的方法来进行。 但怎样的纯化是较为成功的呢？仅达到所需的质量量级，如毫克级（或克级）即可满足吗？ 这些并不简单。质在蛋白纯化中同样尤为重要，比如，就蛋白的生物活性和纯度而言，通常会有所要求。   以下我们来讨论并且比较2种技术： His-tag系统和Strep-tag®系统，都使用了亲和层析法来纯化

Strep-tag 0 基础如何入门？

Strep-tag®技术是亲和纯化重组蛋白的常用工具，它基于自然界中最强的非共价相互作用之一，即生物素与链霉亲和素的相互作用。该纯化系统的突出特点是纯化过程温和、目的蛋白纯度高、特异性强、兼容多种表达系统，对于有挑战性蛋白的纯化十分有帮助，因此近些年来脱颖而出。   本文将从以下方面介绍Strep-tag®技术： 标签介绍 纯化原理 标签-配体 纯化步骤 系统特点 标签介绍 目前有2种广泛使用的Strep标签： 它们分别是： Strep-tag®II 8 aa小标签(Trp-Ser

分层刈取法 stratifying clip method

为明确植物群落的生产结构，由门司正三等（1953）新提出的方法。首先在大致一样的群落内部测量对生产最有关系的深层照度的垂直分布，然后在地上画出一定的面积（例如50×50平方厘米），在此规定的面积上，将其中所包含的全部植物刈分为一定厚度的层（按照群落的高度而分5厘米、10厘米、20厘米等），按照需要还有各种区分，即区别为同化组织的叶和其他非同化组织，测量各自的生产量。得到的数值一般可用下图表示。即：纵轴为高度，中轴的左侧是同化部分的量，右侧为非同化部分的量，是取区画面积的比例。另外，照度