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HC-A人关节软骨细胞

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  • ATCC,ECACC,ScienCell, DSMZ, RIKEN 等
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  • JNO17-128
  • 2025年12月18日
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    • 细胞类型

      科研

    • 物种来源

      鼠/人/其它

    • 细胞形态

      上皮样/成纤维样/其它

    • 运输方式

      常温运输/干冰运输

    • 生长状态

      贴壁/悬浮

    • 规格

      25T

    吉奥蓝图是一家专注于生物医药的科研产品研究、开发、生产和销售的高科技企业。公司自成立以来便一直秉承“精品、专业、诚信、便捷”的宗旨和理念,不断的开拓进取,务实创新,收录与典藏了近千种各类细胞株/系,公司细胞主要来源ATCC,ECACC,ScienCell, DSMZ, RIKEN 等,以及少数国内外科研机构建系。其中自主研发建系各类示踪细胞、耐药株细胞、基因敲除细胞等百余种,客户遍及全国各地的医院、高校、药厂、科研机构等,产品质量与技术支持/服务体系深受广大客户信任和青眯。目前公司以细胞生物学产品为主体,陆续建立与开发了:细胞STR检测试剂盒、PDX人源肿瘤细胞异体移植技术、荷瘤动物/特殊疾病动物模型、原代细胞系构建、耐药株筛选、Cas9基因敲除株、示踪细胞筛选等新产品和技术体系,以期为广大客户提供更多更好的科研产品和服务。诚为基质为本协为赢,吉奥蓝图期待与您的合作……


    细胞常规说明:
    培养条件:89%基础培养基+10%FBS+1%双抗
    冻存液成分:10%DMSO+40%FBS+50%基础培养液
    细胞质检情况:不含细菌、真菌、支原体等微生物污染
    传代建议:1:2~1:3传代,2~3天换液1次
    特别提醒:签收细胞后,如细胞状态不佳,或培养中遇到问题,烦请当天尽快联系,以便处理。当天及时反馈细胞情况和细胞照片是售后跟踪处理重要的参考依据,请务必重视。

    悬浮细胞接收后的操作流程与注意事项
    1.如签收时出现培养瓶壁破裂,漏液等情况请及时做好照片记录并联系实验室
    2.拧松瓶盖,细胞瓶竖立培养8h(或过夜)
    3.待细胞沉底后吸除上层液体(含碎片残渣,请小心操作),然后吸取沉底的细胞层(2ML左右转移到新的培养瓶,加入新鲜的完全培养基(如细胞状态较差可将血清浓度调高到15%)继续培养

    悬浮细胞常规培养传代流程(请严格遵照无菌操作
    1.将培养瓶/皿中的细胞重悬混匀
    2.吸取2/3或者一半混匀后的细胞悬液到新的培养瓶/皿
    3.分别在原瓶/皿和新分瓶的培养瓶/皿加入等量或者2倍的新鲜培养基,使细胞密度保持在5 X10(5) /ml左右
    4.注意培养基PH值变化情况和细胞密度,定期半量换液(每周2-3次),待细胞密度大于2 X 10(6) /ml以后重复1项操作或者冻存

    贴壁细胞接收后的操作流程与注意事项
    1.收到细胞当天尽快更换新鲜完全培养基,第二天再进行消化处理
    2.如果细胞收到时呈悬浮或者部分悬浮的状态,请将悬浮的细胞即时离心,加15%血清的完全培养基到新的培养皿/瓶继续培养观察。同时原培养瓶中剩下的贴壁细胞更换为15%血清的完全培养基,培养观察
    3.若出现生长不均:贴壁细胞若出现分布不均,成岛状生长,可将细胞进行消化,重悬打散细胞,加入新鲜培养基进行培养

    贴壁细胞常规培养传代流程(请严格遵照无菌操作
    1.吸出原培养瓶中的培养基,PBS缓冲液润洗细胞两次,加适量0.25%胰酶进行消化细胞(注意把握消化时间)
    2.镜下观察消化情况,在细胞边缘缩小,贴壁松动时(不建议消化到细胞漂浮)去掉胰酶,加6~8ml 完全培养基,轻轻吹打细胞层,尽量把细胞层吹落,吹散
    3.取部分细胞悬液转移到新的培养皿/瓶中,添加适当的完全培养基,把细胞悬液打匀,于培养箱中培养
    4.注意培养基PH值变化情况,定期换液(每周2-3次),待细胞密度达到80%以后重复1项作或者冻存

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    图标文献和实验
    相关实验
    • 正常关节软骨细胞的短期培养

            实验材料:       1.软骨细胞来源:动物材料可选用未成年兔的膝关节、鸡胚胸软骨。人体材料可取自引产胎儿或成年人手术切除的软骨标本;         2.清洗液:不含Ca2+ 和Mg2+ 的1×PBS,添加100IU/ml青霉素、100μg/ml链霉素,pH7.2;       3.消化液:0.2%胶原酶Ⅱ溶液,用PBS液配制,过滤除菌;       4.培养液:RPMI1640或Ham F12、DMEM培养基,一般在培养液中加20%—30

    • PriCells: 从人关节软骨中分离软骨祖细胞

      . 尼龙膜,40μm筛网; 11. 普通器皿,30ml,或离心管50ml,带圆锥底部便于细胞离心; 12. 解剖刀片,10号; 13. 解剖刀柄,3号; 14. 镊子,2对(1大1小); 15. 矿油凝胶(凡士林); 16. 克隆杯,6mm; 17. 分离软骨用的锁子甲手套; 实验方法: 1. 组织收集和细胞分离; (1) 无菌条件下,用10号解剖刀片小心从软骨下骨下面解剖软骨。将软骨薄片置于含PBSA的9cm Petri培养皿中; (2) 用镊子和刀片仔细将软骨切成1mm3小块

    • 正常人关节软骨细胞的长期培养

      实验材料: 1. 软骨细胞来源:20—24周自然流产胎儿的股骨和胫骨; 2. 清洗液:不含Ca2+ 和Mg2+ 的1×PBS,添加100IU/ml青霉素、100μg/ml链霉素,pH7.2; 3. 消化液Ⅰ:2mg/ml胰蛋白酶和2mg/ml胶原酶混合消化液,用PBS液配制; 4. 消化液Ⅱ:0.5mg/ml胶原酶,用培养液Ⅰ配制; 5. 培养液Ⅰ:DMEM培养液,补充10%胎牛血清;

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