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文献和实验核蛋白提取 实验准备: 1 4℃离心机 2 根据标本数计算所需I,II,III,IV总体积,取出液体,并加入蛋白酶抑制剂,(III由加蛋白酶抑制剂I与加蛋白酶抑制剂II混合物) 实验操作: 1 收集细胞。10ml 对照细胞(1-2*105/ml )培养48h后,15ml 离心管收集,300g(1370 rpm)* 5min。弃上清,加1ml 1*PBS轻轻涡旋混匀后转移至1.5ml EP管。 2 4℃,300g * 5min,弃上清。 3 重悬
A珠子 8. (Bradford 法)做蛋白标准曲线,测定蛋白浓度,测前将总蛋白至少稀释1:10倍以上,以减少细胞裂解液中去垢剂的影响(定量,分装后,可以在-20℃保存一个月) 9. 用PBS将总蛋白稀释到约1 μg/μl,以降低裂解液中去垢剂的浓度,如果兴趣蛋白在细胞中含量较低,则总蛋白浓度应该稍高(如10 μg/μl) 10. 加入一定体积的兔抗到500μl总蛋白中,抗体的稀释比例因兴趣蛋白在不同细胞系中的多少而异 11. 4℃缓慢摇动抗原抗体混合物过夜或室温2h,激酶或磷酸酯酶活性分析建议
它的蛋白溶液可以冻存)与Zwittergent 等双性离子去垢剂; ③还原剂:DTT、DTE、TBP、Tris-base 等;④蛋白酶抑制剂及核酸酶:EDTA、PMSF、蛋白酶抑制剂混合物(Protease inhibitor cocktails)等,如为了去除缓冲液中存在的痕量重金属离子,可在其中加入0.1~5mmol/LEDTA,同时使金属蛋白酶失活。 三、 仪器和试剂 仪器 离心机、移液器、研钵、离心管、冰箱。 试剂 1. 20mL 样品提取缓冲液:2.5mL
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