零背景pTOPO-Blunt Simple平末端克隆试剂盒/不含多克隆酶切位点MCS
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零背景pTOPO-Blunt Simple平末端克隆试剂盒/

不含多克隆酶切位点MCS
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  • ¥1780
  • 艾德莱/Aidlab
  • 国产
  • CV1702
  • 2025年12月05日
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      Zero Background pTOPO-Blunt Simple Cloning Kit

    • 库存

      充足

    • 供应商

      Aidlab

    • 规格

      80次×10μl

     

    产品介绍:  

     本制品和传统的T4连接酶原理不同,它利用了Topoisomerase可以在瞬间(几秒钟-几分钟)、高效(接近100%)连接DNA片段的原理采用本公司独创的工艺制成。 
    1. 平末端PCR产物不需要先加A,在瞬间(几秒钟-几分钟)完成平末端PCR产物连接。 
    2. 特制的新型载体质粒大小仅仅不到2kb,充分发挥了TOPO载体越小,可容纳片段越大的优势,最大限度提高了大片段连接效率;连接后质粒大小比传统载体小2kb以上,质粒越小,转化效率越高,极大的提高了各种片段连接后的转化子数量。 
    3. 采用氨苄抗性载体只需0-10分钟复苏时间,比卡那抗性载体1小时复苏时间缩短6倍。 
    4. 最快可以省略1小时复苏步骤,热休克冰浴后,不用加LB复苏,直接将感受态涂板即可。从连接到涂板全程只需15分钟。
    5. 自杀基因零背景原理,无自连假阳性,无需繁琐蓝白斑筛选和菌落PCR筛选。大部分情况下随机挑一个克隆便是有插入的(接近100%)。
    6. 连接长片段能力远超传统Blunt克隆载体,可连接长达10kb片段(例如连接5kb片段,也可能达到挑10个菌落,至少8个是有插入的效果),是新一代世界领先的简单、快速、零背景免筛选的TOPO Blunt平末端克隆载体。
    本制品在克隆插入位点两侧不含多克隆酶切位点(Simple),需要时可在PCR扩增引物上导入合适的酶切位点。此时如果使用PCR扩增引物导入的酶切位点进行酶切时,酶切反应将不会受到载体上其它多克隆酶切位点影响,可大大提高酶切效率,增加亚克隆成功率。
     试剂盒组成、储存、稳定性:

    试剂盒组成 20/40 次(CV1701)  80/160 次(CV1702)
    pTOPO-Blunt Simple Vector(30 ng/ul)  20ul 80ul
    1 kb Control(40 ng/ull) 5ul 5ul
    10 × Enhancer 20ul 80ul

    ▲ 本 TOPO 载体连接体系按照 10 μl 一次计算可以用 20 次,如果按照其它公司产品5 μl 一次计算,使用次数可以增加一倍,20 次可用 40 次。
    ▲ -20°C 储存,至少 12 个月。冰袋运输,1-2 天置于室外常温不影响质量。

    零背景pTOPO-Blunt Simple平末端克隆试剂盒/ 

     操作步骤:
    1. 连接反应的准备:
    PCR引物使用正常设计的引物即可,不需做任何改变(不能用磷酸化引物)。使用扩增产物是平末端的高保真聚合酶系列扩增(如Pfu、Phusion、A8 Mix、A9 Mix)PCR产物一般建议胶回收纯化(货号:DR01),这样可以避免后续可能的问题。如果PCR产物仅有目的条带、无非特异条带和引物二聚体,也可尝试直接进行连接反应。如果是以质粒为模板的PCR产物则最好进行纯化,因为模板质粒也可能长出菌落(但不是想构建的目的载体)。
    2. 连接反应:
    1) 室温设立 10 μl 连接体系(建议用 0.2 ml PCR 管,PCR 仪器控温):纯化后的 PCR 产物/或者 1 μl 1 kb Control 0.5-5 μlpTOPO-Blunt Simple Vector 1 μl10 × Enhancer 1 μl
    灭菌水 X μl总体积 10 μl加完试剂后,用移液器轻轻吹打混匀或者轻弹管底混匀,低速瞬时离心收集所有液体在离心管底,注意此步骤不能在冰上进行,只能在室温(25°C-37°C)进行。
    如果使用 5 μl 体系连接,各成分按照比例减半使用,使用次数可以加倍。不同大小插入片段的推荐用量(注意过量太多了,反而导致转化子减少):插入片段大小(bp) 推荐用量(ng)100-1000 10-401000-2000 40-802000-5000 80-180
    2) 37°C 连接 5 分钟(建议置 PCR 仪器上控温)。▲ 本载体推荐室温(25°C-37°C)5 分钟完成连接。长片段或者连接困难片段可以延长连接时间到 10-15 分钟,温度可选 37°C,可显著增加转化子数量。
    3) 连接产物置于冰上备用。立即接标准的感受态转化步骤或快速转化步骤。
    3. 快速转化:
    1) 感受态细胞从-80°C 拿出,迅速插入冰浴中,解冻融化(约 1-3 分钟)。
    2) 立刻加入 5 μl 连接液(最多可 10 μl 连接液全加入,只要体积不超过感受态细胞体积的 1/10),手指拨打(Flick)离心管底轻轻混匀(避免用枪吸打),冰浴放置 5 分钟。
    3) 热休克:42°C 水浴热休克 60 秒,迅速放回冰浴静置 2-3 分钟,该过程不要摇动离心管。
    本公司技术连接效率比竞争对手高 10-100 倍,所以如果后续发现转化子很多,甚至长糊板子,做完热休克步骤后,可以省略步骤 4(复苏),直接将热休克冰浴后的感受态细胞涂板,培养过夜即可。这样从连接到涂板全过程仅需要 15分钟,超快速流程极大的简化了操作,缩短了时间。
    4) 复苏(可选步骤):加 500 μl LB 或者 SOC 培养基(不含抗生素),37°C 200 rpm 振荡培养 10-20 分钟。
    根据我们的经验,一般可以直接将培养基(如从冰箱取出温度低,应事先置37°C 温箱回温至 22°C-37°C) 加入到感受态细胞的 1.5 ml 离心管,盖上离心管盖,水平固定在振荡培养箱中振荡培养复苏即可,不需要转移到试管培养复苏。
    一般商品化的感受态细胞不超过 2 kb 插入片段情况下,热休克后 10-15 分钟复苏可以得到足够多转化子,如果使用实验室自制的感受态效率低、或者转化子少、插入片段长的情况下可以提高复苏时间到 30-60 分钟以得到更多的转化子。
    本公司技术连接效率比竞争对手高 10-100 倍,追求最简单最快速的用户可以尝试省略步骤 4(复苏), 直接将热休克冰浴后的感受态细胞涂板,培养过夜即可。熟悉超快速流程后,以后这样从连接到涂板全过程仅需要 15 分钟,超快速流程极大的简化了操作,缩短了时间。
    5) 取 100-200 μl 菌液涂板(培养板含氨苄西林 100 μg/ml),培养过夜。
    4. 转化子的筛选鉴定:
     本制品采用自杀基因零背景原理,无插入自连的细菌会自杀无法生长,因此几乎没有假阳性,一般情况下,可以达到所见即所得,只要是长出来的菌落正常(不是污染的杂菌,转化子数量也不算太少),基本就 100%包含插入。因此插入片段不超过 2-3kb 的情况下强烈建议不做菌落 PCR 鉴定,直接挑 1-2 个菌去测序。
    1). 一般本公司 TOPO 载体阳性率非常高,所以菌落生长正常,数量也不是太少的情况下建议直接去测序(强烈建议不做菌落 PCR 筛选)。注意测序引物不能采用 M13(-47)/M13(-48)通用引物测序。
    2). TOPO 载体的菌落 PCR 结果容易出现假阴性(就是菌 P 失败显示没有插入或者扩增大小不对,实际却是有插入的)。因此在使用菌 P 鉴定的情况下,如菌 P 结果阳性,一般可以相信此结果。如结果是阴性,或者显示扩增出大小和预期不符合,一般不可相信,要考虑到菌 P 结果假阴性的可能,需要直接去测序鉴定,测序成功的完成实验;测序不成功的可以进一步提取质粒跑电泳看大小,或者酶切鉴定来确认。
    3). 用上述培养的白色菌落的菌液抽提质粒,插入片段较大的情况下,直接跑电泳看质粒大小就直接能鉴定出有插入的质粒,还可用载体骨架上酶切位点如 ApaI/BglI/BsaHI,或者插入片段上引入的酶切位点酶切鉴定,琼脂糖凝胶电泳检查片段大小,确定是否含有目的片段。

     pTOPO-Blunt Simple 载体图谱:                                                                 

    零背景pTOPO-Blunt Simple平末端克隆试剂盒/

     pTOPO-BLUNT Simple 载体克隆位点序列:

    零背景pTOPO-Blunt Simple平末端克隆试剂盒/

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    图标文献和实验
    该产品被引用文献

    Interspecific Recombination Between Zucchini Tigre Mosaic Virus and Papaya Ringspot Virus Infecting Cucurbits in China(中国感染葫芦科植物的西葫芦虎斑花叶病毒与番木瓜环斑病毒之间的种间重组)

    零背景pTOPO-Blunt Simple平末端克隆试剂盒/

    使用该产品发表的部分文章:
    1. Development and Application of a Quantitative RT-PCR Approach for Quantification of Grapevine fanleaf virus. Acta Horticulturae Sinica 2016, 43 (3): 538-548.
    2. An adenine nucleotide translocase (ANT) gene from Apostichopus japonicus; molecular cloning and expression analysis in response to lipopolysaccharide (LPS) challenge and thermal stress. Fish & Shellfish Immunology 2016, 49: 16–23
    3. Cloning and ExpressionAnalysis of AcLOX1 Gene in Onion (Allium cepa). Journal of Agricultural Biotechnology 2016, 24(4): 548-556
    4. Diversity of bacteriome associated with Phlebotomus chinensis (Diptera: Psychodidae) sand flies in two wild populations from China. Scientific Reports 2016, 6:36406, DOI: 10.1038/srep36406
    5. Occurrence and Genetic Diversity of Grapevine berry inner necrosis virus from Grapevines in China. Plant Disease 2017, 101(1): 144-149
    6. The complete mitochondrial genome of Euproctis similis (Lepidoptera: Noctuoidea: Erebidae) and phylogenetic analysis. International Journal of Biological Macromolecules 2017, 105: 219-227
    7. Isolation and Characterization of Bacillus Amyloliquefaciens L-1 for Biocontrol of Pear Ring Rot. Horticultural Plant Journal 2017, Available online 6 October 2017
    8. A new host plant of Cucumber mosaic virus in China-Zinnia elegans. ACTA PHYTOPATHOLOGICA SINICA 2017, 47(3):428-432
    9. Analysis of the Complete Genome of Apple stem grooving virus Isolate Jilin-shaguo. Acta Horticulturae Sinica 2018, 45 (4): 641-649.
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