培养基、尿液Exosome分离纯化产品

发酵技术从繁到简，简单点

考虑到培养基中的C、N源的合适比例，这也关系到pH的工艺优化。菌种在不同培养基的培养条件下生长也不同。其次是有些微生物培养必须添加微量元素，不同的天然培养基组分中含有这些必须的微量元素不尽相同。最后在后续的产物分离纯化中，培养基中难以吸收消化的部分必须容易去除，并且不会对分离纯化产生较大影响。 4 溶氧工艺的优化 控制好的溶氧要从各个方面分析入手，在菌体不同的生长周期要调整各种影响溶氧的条件，前期主要是调整通气量，罐压，温度，搅拌速率等。但是在发酵后期则要根据发酵产物对哪种条件敏感

食品中肉毒杆菌检测

两管庖肉培养基，置 35 ℃±1 ℃，同时接种两管 TPYG 培养基，置 28 ℃±1 ℃，厌氧培养 5 d。检查培养物的浊度、产气、肉粒的消化和产生的气味。若有生长，按步骤 2 分离纯化培养物。若未见生长，则继续培养 10 d。2. 分离纯培养物 取 1 ~ 2 ml 培养液置于无菌试管中，加入等量无菌无水乙醇，混匀，放置室温 1 h。用接种环取 1 ~ 2 环经处理过的培养物在厌氧卵黄琼脂上划线接种，35 ± 1 ℃ 下厌氧培养 48 h。接种可疑菌落到 TPGY 培养基，35 ± 1℃

深度解读：外泌体作为药物递送载体的研究进展

；按照批准的细胞产品质量控制标准对每批次细胞产品进行严格检测，包括细菌、真菌、支原体和内毒素的检测。在外泌体的分离纯化过程中，相对宽泛的尺寸范围导致外泌体与其他细胞外囊泡混合，从而削弱了外泌体的靶向能力，最终会对外泌体制剂的产品质量产生影响。因此，在外泌体的分离纯化过程中，应选择适当的纯化方法，以获得尺寸均匀的外泌体亚群。此外，在小规模实验室应用中，可以使用传统技术来实现外泌体的分离，而在临床试验和药物开发的上游和下游操作中，则需要快速且可扩展的技术。传统的外泌体制备方法在大规模生产上存在产量低、质量