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全血DNA小量试剂盒
| 规格 | 价格 |
| 50次制备 | 520 |
| 250次制备 | 2350 |
适合在15~20分钟内从全血中快速分离纯化基因组DNA
全血标本用量:200~400μl
无需事先分离去除红细胞
无需蛋白酶K消化步骤
适用于从全血中分离纯化最多达15 μg总DNA。
·15分钟内即可完成血液总DNA的制备。
·无须事先分离去除红细胞及蛋白酶K消化步骤。
·可从新鲜或者是冷冻的全血、溶血的全血、唾液、 细胞悬浮液等标本中分离纯化总DNA。
·核酸纯化柱可最大吸附15μg 总DNA。
·起始样品体积:200 μl- 400 μl全血。
·彻底清除血样中的PCR抑制物,可使用多至1/2反应体系体积的模板进行扩增。
·所需仪器:可适合2 ml离心管使用的离心机。
产品原理
全血样品经裂解液溶解后,用沉淀液沉淀血红蛋白。柱纯化核酸技术过滤除去残留的血红蛋白,吸附在纯化柱上的总DNA经Buffer WA和Buffer WB洗涤后,可彻底清除残留在纯化柱上的杂质及PCR抑制物。纯化柱上的总DNA可直接用BufferTE或水洗脱,并可立即用于各种分子生物学实验。
操作步骤
在400 μl全血中加入300 μl Buffer L1溶解全血释放DNA,再加入300μl Buffer L2沉淀血红蛋白,离心取上清加入纯化柱中,经过结合、清洗步骤去除残留的杂质后,DNA即可被TE溶液洗脱下来。
可适用的分子生物学实验
1.PCR
2.RFLP分析
3.Southern blotting
4. 基因分型,包括指纹印迹和亲子鉴定
常见问题分析
1、回收不到DNA或者DNA的回收效率低
可能的原因:
1)Buffer WA 或Buffer WB中未加入无水乙醇,应按比例补加无水乙醇。如果是错误地加入了其他试剂,请向我公司技术部寻求帮助。
2)Buffer WA 或Buffer WB中错误地加入了70%乙醇。请向我公司技术部寻求帮助。
3)错误地使用了Buffer WA 和Buffer WB的洗涤顺序。确保按正确的顺序洗涤纯化柱。
4)全血样品保存不当,导致全血中的DNA降解。在2-8℃冰箱放置超过两个星期的全血标本开始出现溶血现象,如果需要继续使用血样,则应转入-20℃或-70℃冻存。否则获得的DNA将开始出现凋亡细胞的DNA带型,并且此时全血中的DNA随着时间的延长会持续分解,直至分离不到电泳可见的DNA。
5)DNA的洗脱效率差。参考第4页柱纯化技术中的第4点“洗脱DNA“内容优化DNA的洗脱方案。
6)错误地使用了Buffer L1 和Buffer L2的溶解顺序。确保按正确的顺序操作。
2. 纯化柱膜上残留有血色素
可能的原因:
Buffer WA 或Buffer WB中未加入无水乙醇,应按比例补加无水乙醇。
3. 样品间交叉污染
避免样品间交叉污染的方法:
1) 选用含有滤芯的移液器吸头用于实验的操作。
2) 实验操作时勿使吸头触碰到纯化柱。
3) 丢弃滤液后将2ml离心管在纸巾上倒扣拍击一次,以避免粘附在离心管管口的滤液对离心机的污染。
4) 如果手套接触到标本,应及时更换手套。
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文献和实验本操作步骤是为从400 µl全血中提取DNA而设计,如果血液体积小于400 µl但大于200 µl,可按比例减少Buffer L1和Buffer L2的用量(注意必须严格按Buffer L1:抗凝全血:Buffer L2=3:4:3的体积比进行操作,否则将导致后续步骤不能进行),其他试剂用量不变;如果血液体积小于200 µl,建议在血液中补充生理盐水使血液体积至少至200 µl。
【基本原理】此试剂盒用于质粒DNA小量纯化。该试剂盒采用了传统的SDS碱裂解法,结合DNA制备膜技术,具有高效、快速、方便之特点,全套操作只需1小时便可完成。使用本试剂盒可从1-4ml 的过夜培养的菌液中纯化得到1~20μg的高纯度质粒DNA,此质粒DNA可直接用于DNA序列分析以及各种酶促反应等。【器材】1.离心机2. Spin Column3. Collection Tube (2ml)*1初次使用试剂盒时,请将RNase A1全部加入到SolutionI中,混合均匀后4℃保存。*2若出现
/RealTime PCR扩增的技术进步,很多样品的需求量大大减少,几百个纳克到几个微克足够,而最常见的离心柱型小量提取,正好可以提取几个微克到十几微克的样品。完全可以满足下游试验的需要。 2. 离心柱操作不使用苯酚,氯仿有毒害物质。方便快捷,裂解后配合蛋白酶K消化,过柱子,漂洗,洗脱,几个简单步骤就可以完成全部过程。适合于标准化高通量操作,对操作技巧要求低,即使初学者提取也可以得到稳定的结果。 3. 联合的蛋白酶K消化,和漂洗,可以确保了高纯度的可能性。是目前所有方法中,纯度最高的一种全血DNA
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