- ¥1850 - 3980
- 美国ATCC
- YB-ATCC-4140
- 美国
- 2025年07月14日
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存：
大量
- 供应商：
钰博生物
- 细胞类型：
复苏
- ATCC Number：
详见官方网站
- 组织来源：
见说明书
- 物种来源：
人、大鼠、小鼠、、、、
- 免疫类型：
请咨询销售人员
- 细胞形态：
上皮样；多角形
- 是否是肿瘤细胞：
见说明书
- 器官来源：
见说明书
- 运输方式：
干冰运输or活细胞运输
- 年限：
见说明书
- 生长状态：
贴壁生长
- 规格：
1ml/株
细胞种类：N/N1003A(RLE)细胞,ATCC细胞
培养的天数：传代后3d
放大倍速：倒置显微镜 放大倍数：X10、X25
培养基种类：Grace+10%胎牛血清；
N/N1003A(RLE)细胞,ATCC细胞状态与特征简述:细胞悬浮生长，呈梭形，生长速度快，2d～3d又可传 代
N/N1003A(RLE)细胞,ATCC细胞软琼脂集落形成试验
本法适用于非锚着依赖性生长的细胞，如骨髓造血干细胞、肿瘤细胞株、转化细胞系。利用琼脂液无粘着性又可凝固的特性，将肿瘤细胞混入琼脂液中，琼脂液凝固使肿瘤细胞置于一定位置，琼脂中肿瘤细胞可能向周围作全方位的移动，因此可以用来检测肿瘤细胞的主动移动能力。肿瘤细胞在适宜培养基中又可以增殖，从而可以测定肿瘤细胞克隆形成率。造血系统软琼脂集落形成试验方法相同，主要用于有关细胞分化的研究，但使用培养基不同。
（1）同上（1）~（3）步骤。
（2）调整细胞悬液密度为1×103个/ml细胞。
（3）N/N1003A(RLE)细胞,ATCC细胞制备底层琼脂，完全溶化的5%琼脂和 37℃ 左右预温的新鲜完全培养液以1：9比例在 40℃ 均匀混合，加入培养皿（直径 60mm ）中，每皿含0.5%琼脂培养基2ml，室温下琼脂完全凝固。
（4）制备上层琼脂,取 37℃ 不同密度梯度(按照每皿含50、100、200个)的细胞悬液1.5ml移入小烧杯中，加入 40℃ 、5%琼脂等体积混匀，即成0.25%半固体琼脂培养基。配好的半固体琼脂培养基立即加入铺有底层琼脂的培养皿中，室温下琼脂凝固。 37℃ 、5%CO2静置培养2-3周。
N/N1003A(RLE)细胞,ATCC细胞相关细胞如下：
YB-ATCC-2679 SRSV/3T3(SRSV转化的3T3细胞) 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-2680 3T6-Swiss albino(胚胎成纤维细胞) 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-2681 PA317(成纤维细胞) 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-2682 3T3-Swiss albino(胚胎成纤维细胞) 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-2683 Mo-MuLv/3T3(Mo-MuLv感染的3T3细胞) 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-2684 MRC-5(胚肺细胞) 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-2685 WI-38(胚肺细胞) 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-2686 FRhK-4(恒河猴胚肾细胞) 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-2687 VERO C1008 (E6)(非洲绿猴肾细胞) 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-2688 Pt K1 (NBL-3)(长鼻袋鼠肾细胞) 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
YB-ATCC-2689 L1210(白血病细胞) 进口美国ATCC细胞株，1ml/株
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文献和实验与方法用于单细胞打印或有限稀释的细胞制备对于单细胞打印和有限稀释，均使用CHO-K1细胞（ATCC），使用的其他细胞系，包括HEK和L929，均以类似方式制备。为了准备单细胞打印，将细胞重悬于PBS中，密度为1 x 10 6细胞/ mL。为了消除细胞团块，在将样品装入打印机芯片之前，通过40 µm过滤器过滤细胞。通过Cytena单细胞打印系统进行单细胞分选x.sight可从液体样品中温和而精确地分离单个活细胞，该系统使用一次性芯片，可在打印不同类型的细胞时减少了交叉污染。每个芯片可用于一次打印多个
53INP2 Protein Is Required for Autophagy in Mammalian Cells.pdf http://www.namipan.com/d/40e5d3a2f6a0ec5fce4dc91c32880ae293201a582cf33500 （由于不断有新的ATG蛋白被鉴定出来，本帖将不定期更新） 三、自噬过程的调控 从上面总结的自噬特点中可以看出，自噬这一过程一旦启动，必须在度过危机后适时停止，否则，其非特异性捕获胞浆成分的特性将导致细胞
, this method for preparing competent E. coli from Inoue et al. (1990) can challenge the efficiencies achieved by Hanahan (1983). However, under standard laboratory conditions, efficiencies of 1 x 108 to 3 x 108 transformed colonies/mg of plasmid DNA
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