阳离子脂质体转染试剂（包慢病毒神器）-HilyMax

应用：基因转染
特点：
各细胞系GFP转染实例

基本操作：转染步骤（24孔板）^a)
1．细胞准备
贴壁细胞：转染前一天，调整细胞浓度在0.5 ml的培养基中预先接种40%-90%的汇合细胞^b），转染前将细胞悬液接种至24孔板。
悬浮细胞：转染前一天，调整细胞浓度至每0.5 ml的培养基中0.1-1.6×10⁶的细胞，细胞悬液接种至24孔板。

2．形成DNA-HilyMax转染复合物^c）
添加不含血清的培养基至消毒离心管。^d)
添加质粒DNA（0.5-1，5μg）至离心管，使用移液器充分混合。
添加HilyMax至离心管，使用移液器充分混合，推荐的DNA（μg）与HilyMax的使用比率为1:2-1:6。
在室温下培养15分钟 ^e)

3．添加转染复合物至细胞：在步骤1准备好的培养板上，每孔中添加DNA-HilyMax转染复合物。

4．培养：在37℃下放置于CO₂培养箱培养。^f)

5．检测：确保转染后24至72小时，基因的活性
a)实验用量需要根据培养板大小而改变，请参考说明书“不同培养板转染状况”部分。
b)培养基中血清成分不会影响转染效果。
c)DNA及HilyMax的参考密度见表1。
d)培养基中的血清及抗生素会影响DNA-HilyMax转染复合物的形成。Opti-MEM, DMEM和MEM不会影响转染效果，请使用其他培养基来检验转染效率。
e)培养时间超过30分钟会造成转染效率偏低。
f)转染后更换培养基可以有效地提高转染效率，降低某些细胞系的毒性。

转染复合物中DNA与HilyMax的使用量：
表1：表明了不同细胞密度下推荐的DNA和HilyMax量。如果转染效率较低，请适当提高HilyMax的量；
如果毒性过高，请适当降低HilyMax的使用量。


表2：表明了不同大小培养板的系数。这些系数是在24孔板下计算得出的，表1中DNA和HilyMax的数据可以乘上这些系数。


不同培养板转染状况：
表3：不同培养板适合的培养基、DNA的使用量以及DNA和HilyMax混合比率列。


NIH3T3, HEK293, CHO, HeLa及COS-7推荐转染条件：
NIH3T3, HEK293, CHO, HeLa及COS-7在24孔板培养的最适转染条件显示在表4中，每种细胞系DNA和HilyMax溶液最适量及其密度以及转染实验的基本操作。
若使用其他培养板请参考表3。

转染后培养基的更换：
转染后更换培养基可以有效地提高NIH3T3, HEK293, CHO, HeLa及COS-7的转染效率（请见表图）。
这五种细胞系转染后2到4小时更换培养基可以获得更高的转染率。

表4：五种细胞的实例


24孔板上转染发生于80%汇合细胞中， DNA和 HilyMax 分别为 1μg和3-7μl。转染1至8小时后,更换新的培养基

有详细操作方案的细胞种类：（欢迎来电或邮箱索取各细胞系操作优化条件）
・A549 Cell ・HepG2 Cell ・MDCK Cell ・U937 Cell ・Caco2 Cell ・K562 Cell
・Neuro2a Cell ・Vero Cell ・CHO Cell ・L6 Cell ・NIH3T3 Cell
・HEK293 Cell ・LNCap Cell ・PC3 Cell ・HeLa Cell ・MCF7 Cell ・PC12 Cell

使用HilyMax及I社产品转染率对比

使用HilyMax及R社产品Luciferase表达比较