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- 2025年09月11日
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4℃
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6个月
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大量
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上海哈灵生物科技有限公司
用途：平衡盐溶液。
硼酸标记缓冲液操作体会：
1. 控制好染色步骤；
2. 组织固定起着很重要的作用，根据不同的固定溶液可延长或缩短染色时间； 3. 0.2%冰醋酸水溶溶液洗，可使色调清晰鲜艳；
3. 磷钼酸水溶溶液对丽春红、酸性复红有分化作用，分化时镜下控制， 肌纤维和纤维素呈红色，胶原纤维呈淡粉红色即可。
硼酸标记缓冲液产品优势：
哈灵生物供应的提供该产品最新报价及使用说明书、原理、资料下载，同时我们承诺质量保证，提供实验技术支持。如产品有任何产品质量问题，无条件退换（非人为因素造成）。且我司提供的产品实验效果好，节省经费，更有上海客户免费提供送货服务，我司有完整的营销体系，保证了售前、售后问题，让您实验轻松完成。、
硼酸标记缓冲液相关产品：
| HLNE0057 | 乙酸钠溶液(3mol/L,pH5.6,RHLNAse free) | 500ml | 核酸提取 |
| HLNE0058 | 乙酸钠溶液(3mol/L,pH6.0,RHLNAse free) | 500ml | 核酸提取 |
| HLNE0059 | 乙酸钠溶液(3mol/L,pH7.0,RHLNAse free) | 500ml | 核酸提取 |
| HLNE0065 | 异硫氰酸胍溶液(5mol/L,RHLNAse free) | 100ml | 核酸提取 |
| HLNE0068 | 原生质体缓冲液 | 100ml | 核酸提取 |
| HLNE0072 | 组织胍溶液(5mol/L,RHLNAse free) | 100ml | 核酸提取 |
| HLNE0085 | TLE溶液(PH8.2) | 500ml | 核酸提取 |
| HLNE0092 | 水饱和酚(Phenol Water) | 100ml | 核酸提取 |
| HLNE0095 | Tris饱和酚(PH＞7.8) | 100ml | 核酸提取 |
| HLNE0096 | Tris平衡酚(PH＞7.8) | 100ml | 核酸提取 |
| HLNE0110 | 革兰阳性菌裂解缓冲液 | 100ml | 核酸提取 |
| HLNE0111 | 革兰阴性菌裂解缓冲液 | 100ml | 核酸提取 |
| HLNE0115 | 核酸沉淀溶液(TCA法) | 100ml | 核酸提取 |
| HLNE0116 | 核酸沉淀溶液(焦磷酸钠法) | 100ml | 核酸提取 |
| HLNE0120 | 溶菌酶(Lysozyme,10mg/ml) | 5ml | 核酸提取 |
| HLNE0130 | 葡萄糖-Tris-EDTA溶液(GTE) | 100ml | 核酸提取 |
| HLNH0001 | BLOTTO溶液 | 100ml | 核酸杂交 |
| HLNH0008 | DeHLNHardt's溶液(50×) | 50ml | 核酸杂交 |
| HLNH0014 | DEPC-PBS溶液(活跃) | 500ml | 核酸杂交 |
| HLNH0019 | HLDHLNA碱性转移缓冲液 | 100ml | 核酸杂交 |
| HLNH0024 | DTT-PBS溶液(10mmol/L) | 100ml | 核酸杂交 |
| HLNH0030 | KoHLDAk F-5定影粉剂 | 1L | 核酸杂交 |
| HLNH0031 | KoHLDAk F-5定影液 | 500ml | 核酸杂交 |
| HLNH0034 | KoHLDAk D-19显影粉剂 | 1L | 核酸杂交 |
| HLNH0035 | KoHLDAk D-19显影液 | 500ml | 核酸杂交 |
| HLNH0038 | 原位杂交A-B显影液 | 2×500ml | 核酸杂交 |
| HLNH0041 | SSC缓冲粉剂(20×) | 1L | 核酸杂交 |
| HLNH0041 | SSC缓冲粉剂(20×) | 10×1L | 核酸杂交 |
| HLNH0043 | SSC缓冲液(20×,pH7.0) | 100ml | 核酸杂交 |
| HLNH0043 | SSC缓冲液(20×,pH7.0) | 500ml | 核酸杂交 |
| HLNH0044 | SSC缓冲液(20×,pH7.0,RHLNAse free) | 500ml | 核酸杂交 |
| HLNH0046 | SSC缓冲液(20×,pH7.4) | 500ml | 核酸杂交 |
| HLNH0046 | SSC缓冲液(20×,pH5.3) | 500ml | 核酸杂交 |
| HLNH0048 | SSPE缓冲粉剂(20×) | 1L | 核酸杂交 |
| HLNH0049 | SSPE缓冲液(20×,pH7.4) | 500ml | 核酸杂交 |
| HLNH0053 | 变性鲑鱼精HLDHLNA(10mg/ml) | 1ml | 核酸杂交 |
| HLNH0053 | 变性鲑鱼精HLDHLNA(10mg/ml) | 5ml | 核酸杂交 |
| HLNH0058 | 蛋白酶K溶液(ProteiHLNAse K,20mg/ml) | 1ml | 核酸杂交 |
| HLNH0064 | 核酸预杂交液 | 50ml | 核酸杂交 |
| HLNH0065 | 核酸杂交液 | 50ml | 核酸杂交 |
| HLNH0066 | 核酸杂交漂洗液(低张力) | 500ml | 核酸杂交 |
| HLNH0067 | 核酸杂交漂洗液(高张力) | 500ml | 核酸杂交 |
| HLNH0068 | 磷酸钠缓冲液(0.5mol/L,pH6.8) | 500ml | 核酸杂交 |
| HLNH0073 | 碳酸氢钠缓冲液(0.5mol/L) | 500ml | 核酸杂交 |
| HLNH0079 | 双链HLDHLNA变性缓冲液 | 100ml | 核酸杂交 |
| HLNP0001 | HLDMSO(PCR级) | 10ml | PCR相关 |
| HLNP0020 | AMV/MMuLV反应缓冲液(10×,pH8.3) | 100ml | PCR相关 |
| HLNP0024 | PCR扩增缓冲液(10×,pH8.3) | 100ml | PCR相关 |
| HLNP0034 | Taq稀释缓冲液 | 100ml | PCR相关 |
| HLNP0040 | 明胶水溶液(2%,PCR级) | 50ml | PCR相关 |
| HLNP0050 | 二磷酸腺苷溶液(AHLDP,1mmol/L) | 10ml | PCR相关 |
| HLNP0053 | 三磷酸腺苷溶液(ATP,10mmol/L) | 10ml | PCR相关 |
| HLNP0059 | 甜菜碱溶液(10mol/L,PCR级) | 10ml | PCR相关 |
| HLNP0063 | 无菌去离子水(For PCR) | 50ml | PCR相关 |
| HLNP0068 | 乙酸盐缓冲液(0.05mol/L,pH5.0) | 500ml | PCR相关 |
| HLNR0001 | DEPC处理水(0.1%) | 100ml | RHLNA溶液 |
| HLNR0001 | DEPC处理水(0.1%) | 500ml | RHLNA溶液 |
| HLNR0005 | DTT溶液(二硫苏糖醇,1mol/L,RHLNAse free) | 10ml | RHLNA溶液 |
| HLNR0009 | EDTA溶液(0.5mol/L,pH8.0,RHLNAse free) | 100ml | RHLNA溶液 |
| HLNR0009 | EDTA溶液(0.5mol/L,pH8.0,RHLNAse free) | 500ml | RHLNA溶液 |
| HLNR0017 | HBS缓冲液 | 500ml | RHLNA溶液 |
| HLNR0040 | RHLNAse A(10mg/ml) | 1ml | RHLNA溶液 |
| HLNR0040 | RHLNAse A(10mg/ml) | 5ml | RHLNA溶液 |
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文献和实验。按厂家说明准备滤柱，用 20 双柱床体积 PBS 注入滤柱，直到缓冲液水平刚刚降低到柱床顶部，关闭滤纸底部的阀门或使用塑料粘土(或 parafilm ）封闭底部，使滤柱不再流动。 2.用0.1mol/L 硼酸钠或碳酸钠的制备浓度至少为 2mg/ml 的抗体溶液（pH9.0）。含一级胺的外来分子应避免引入。 3.用无水DMSO 溶解(优级纯) FITC或TRITC至1mg/ml。每次标记反应时需即时配置。 4.每 1ml 蛋白溶液加50ul染液，每次都要5ul 慢慢加入，加入时应轻轻连续搅拌
1ml/管，蛋白质在1-3ml之间洗下； ９．最后，样品加入叠氮钠（终浓度0.5g/L）及1.0g/L BSA。将结合产物置4℃，避光保存，亦可加入50%重蒸甘油，置―20℃保存。 要点： １． 如在反应混合液中有叠氮钠或游离氨基存在，会抑制标记反应。因此，蛋白质在反应前要对0.1 mol/L碳酸氢钠缓冲液或0.5 mol/L硼酸缓冲液充分透析； ２． 所用的NHSB及待生物素化蛋白质之间的分子比按蛋白质表面的ε-氨基的密度会有所不同，选择不当则影响标记的效率，应先用几个
。 9. 最后，样品加入叠氮钠（终浓度0.5 g/L）及1.0 g/L BSA。将结合产物置4℃，避光保存，亦可加入50%重蒸甘油，置-20℃保存。 要点： 1. 如在反应混合液中有叠氮钠或游离氨基存在，会抑制标记反应。因此，蛋白质在反应前要对0.1 mol/L 碳酸氢钠缓冲液或0.5 mol/L 硼酸缓冲液 2. 所用的NHSB及待生物素化蛋白质之间的分子比按蛋白质表面的ε-氨基的密度会有所不同，选择不当则影响标记的效率，应先用几个不同的分子比来筛选最适条件。
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