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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 免疫原:
KLH conjugated synthetic peptide derived from hu MEK6
- 亚型:
1gG
- 形态:
Lyophilized or Liquid
- 保存条件:
-20 °C,一年
- 克隆性:
多克隆
- 标记物:
电询
- 适应物种:
人,大鼠,小鼠,兔
- 宿主:
Goat,Rabbit,Mouse
- 应用范围:
IHC/WB/ELISA
- 浓度:
1mg/ml
- 靶点:
电询
- 抗体名:
BTB/POZ结构域蛋白7抗体
- 规格:
0.2ml/200μg
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文献和实验位点为5 bp、E2F的结合位点为8 bp, NF-κB的结合位点为10 bp, p53的结合位点为20 bp; 同一家族的转录因子其DNA结合位点在序列和长度上都比较保守, 因此一般能用共同基序(Consensus)或模体(Motif)反映转录因子的DNA结合位点。DNA结合转录因子都含有DNA结合结构域(DNA-binding domain, DBD), 该结构域负责转录因子与DNA位点的识别和结合。同一家族的转录因子一般拥有结构非常相似的DBD, 并且在与DNA结合时, 一般以同二聚体或异二聚体的形式
。那么,如何对这个问题进行研究呢?这里狗哥就带大家简单梳理一下常用的蛋白质相互作用的研究方法。图 1【一】酵母双杂交,Yeasttwo hybrid(Y2H), 这是一个古老的技术,Stanley Fields 和 Ok-KyuSong 在 1989 年的时候利用大肠杆菌中 GAL4 乳糖操纵子的原理,开发出这个方法用于检测蛋白质之间的相互作用 。GAL4 操纵子有两个结构域,BD(binding domain)结构域和 AD(activation domain),其中 BD 结构域可以结合在 UAS
(3)同上。两个磷酸化位点都要做,但是可能在不同的病理条件下,侧重点有所不同,这主要体现在你的论文的讨论中。因此建议实验前多做论文研究,查阅一下别人的发表文章,看看与你的病理模型更相关的是哪个位点。 真爱满行囊 非常感谢你 的回复,现在我遇到的问题是我做出来蛋白总量还有216位点是有变化的,9位因为买的是santa curz的抗体,现在死活做不出来,很头痛,我要说明的问题是他的活性降低,我也看到216位点磷酸化水平降低了,可是现在没有第九位的结果(就是没有办法得到第九
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