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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 形态:
液态/粉状
- 保存条件:
-20℃
- 克隆性:
单克隆
- 适应物种:
人,大鼠,小鼠,兔
- 宿主:
Goat,Rabbit,Mouse
- 应用范围:
科研使用
- 浓度:
1mg/ml
- 抗体名:
TDP-43/TARDBP (tar DNA binding protein) Tar DNA 结合蛋白43抗体
- 规格:
0.1ml/0.2ml
●>25,000种抗体 靶向覆盖多个通路的关键人源蛋白质
●>9000 种TrueMABTM 抗体,免疫原为人细胞表达的蛋白,能更好地识别天然表位
●标签抗体 用于检测重组蛋白
●经过多种免疫分析实验验证,无效退款
●>900种干细胞抗体
一抗种属的来源
二抗应选用与使用的一抗相同的物种来源,例如:如果你的一抗是小鼠源的单克隆抗体,二抗则选抗小鼠的二抗(山羊抗小鼠或者兔抗小鼠等均可);如果一抗是从兔血清里制备的兔源多克隆抗体,则相应的二抗需要选择抗兔的二抗。即根据一抗的物种来源选择相应的抗该物种的二抗。纽邦能为您提供最全的抗不同种属的原装进口二抗,包括抗小鼠、大鼠、兔、山羊、绵羊、人、豚鼠、猪、马、牛、鸡、鸭等二抗。
一抗的类别亚型
二抗需与一抗的类别或亚类相匹配。这通常是针对单克隆抗体而言。多克隆抗体主要是IgG类免疫球蛋白,因此相应的二抗就是抗IgG抗体。其中单克隆抗体的类别及亚类通常会在产品说明书中都会有描述,如果你的一抗是小鼠IgM,那么相应的二抗就应当是抗小鼠IgM。如果单克隆一抗是小鼠IgG的某一亚类(IgG1,IgG2a,IgG2b,IgG3),那么几乎所有的抗小鼠IgG都可以与之结合,或者你也可以选择专门针对这一亚类的二抗,例如,如果你的一抗是小鼠IgG1,那么你可以选择抗IgG1的二抗,此种抗体在双标记实验中尤其适合。在不清楚一抗为何种类/亚类的情况下,可以选用抗相应物种IgG。YBio能为您提供通用的IgG(H+L)二抗,或者特异性只结合IgM的Anti IgM (mu) Antibody、IgA的Anti IgA (alpha-Antibody、IgE的Anti IgE (epsilon) Antibody等。
二抗的种属来源
一般来说,不同的种属来源与二抗的质量没有必然的联系,来源于山羊的二抗与来源于驴的二抗在一般的实验里没有太多的差别。然而在一些特殊的实验里, 如双标实验里,如果其中一个一抗是山羊来源的,一个是小鼠来源的,则相应的二抗分别要抗山羊和抗小鼠的二抗,这时候,二抗就不能选择山羊或者小鼠来源的。 YBio有相应的驴来源的二抗,非常适合做类似双标的免疫实验。
二抗的耦联标记
一般来讲,耦联到二抗上的探针主要有酶(辣根过氧化酶HRP和碱性磷酸酶AP或其衍生物APAAP,PAP),荧光基团(FITC、 Rhodamine、Texas Red、PE、Rhodamine、Dylight等)、生物素、金颗粒。选用哪种探针的二抗主要取决于具体的实验。对于Western Blot和ELISA,最常用的二抗是酶标二抗;而细胞或组织标记实验(细胞免疫化学,组织免疫化学,流式细胞术)中通常使用荧光基团标记的二抗,免疫组化中也可以使用辣根过氧化酶或碱性磷酸酶标记的二抗。如果想要更大程度的放大检测信号,可以使用Biotin/Avidin检测系统。在一些荧光检测方案中,则需要选择不同的荧光标记;而金颗粒标记的二抗则更多的应用于免疫电镜中
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文献和实验免疫沉淀技术(MeDIP)与甲基化 CpG 结合蛋白亲和捕获技术(MBDCap):MeDIP 方法在将基因组 DNA 超声波打断并变性后,使用 5-甲基胞嘧啶特异性抗体富集甲基化片段,再分离纯化得到甲基化 DNA 片段,然后再用测序等方法分析;MBDCap 技术与 MeDIP 方法类似,利用甲基化 DNA 结合蛋白来对甲基化的 DNA 进行免疫沉淀,因为采用的富集蛋白不同,MeDIP 普遍富集 CpG 低密度的甲基化区域,而 MBDCap 则普遍富集 CpG 高密度的甲基化区域。 图
性多位点甲基化CpG位点相结合,另一种是MeCP2,不同于MeCP1的是它能够与单甲基化CpG位点特异结合,且不与半甲基化位点结合。而且报道的MBD1、MBD2、MBD3、MBD4蛋白都与MeCP2有着相同的特性[54,55]。 这种方法是:MBD柱中含有甲基化位点特异性结合蛋白的功能区(Methylation Binding Domain, MBD),能够与甲基化位点特异性结合。该蛋白一端通过连接多个组蛋白与凝胶结合,其另一端的多肽功能区暴露,这样当待测DNA片段通过时,含有甲基化位点的DNA
条带分别从凝胶中切出,并用六氢吡啶进行切割,结果为: (1)甲基化的 G 残基被切割:因为转录因子蛋白质只能够同未发生甲基化的正常的结合位点结合,所以在转录因子 DNA 结合位点序列中的 G残基如果被 DMS 甲。 (2)不具有甲基化 G 残基的靶 DNA 序列则不会被切割将结合蛋白质的DNA条带和不结合蛋白质的 DNA 条带,经六氢吡啶切割作用之后,再进行凝胶电泳。作放射自显影,读片并分析结果 3. 结果判断: (1)同转录因子蛋白质结合的靶 DNA 序列,经六氢吡啶切割之后,电泳分离呈现两条带,有一个
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