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等电聚焦蛋白电泳(IEF)2倍上样缓冲液

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      杰美基因

    • 规格

      10毫升

    供应试剂主要类别:细胞技术、分子技术、蛋白化学、免疫抗体、医学技术、生物化学、模式生物、微生物、植物、载体、毒理、营养、平台等等相关技术的各种大量试剂。

    其中蛋白化学技术相关试剂类别如下:

    蛋白制备试剂专题
    蛋白定量试剂专题
    蛋白处理试剂专题
    核酸-蛋白结合凝胶电泳定量分析(McKay)试剂专题
    核酸-蛋白结合凝胶迁移电泳分析(EMSA)试剂专题
    核酸-蛋白结合足迹法(FOOTPRINTING)分析试剂专题
    核酸-蛋白结合免疫沉淀分析(CHIP)试剂专题
    蛋白-蛋白结合分析试剂专题
    融合蛋白处理试剂专题
    蛋白/抗体标记试剂专题
    蛋白电泳试剂专题
    蛋白电泳染色试剂专题
    蛋白杂交试剂专题
    糖蛋白试剂专题

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    • 电泳迁移实验(EMSA)方法

      前先混匀,并且室温(20-25℃)放置10分钟,从而消除可能发生的探针和蛋白的非特异性结合,或者让冷探针优先反应。然后加入标记好的探针,混匀,室温(20-25℃)放置20分钟。 (3) 加入1微升EMSA/Gel-Shift上样缓冲液(无色,10X),混匀后立即上样。注意:有些时候溴酚蓝会影响蛋白和DNA的结合,建 议尽量使用无色的EMSA/Gel-Shift上样缓冲液。如果对于使用无色上样缓冲液在上样时感觉到无法上样,可以在无色上样缓冲液里面添加极少量的蓝色的上样缓冲液,至能观察到蓝颜色即可

    • 【资源】植物总蛋白提取方法

      nitrogen中研磨成粉末,加入Tris-HCL缓冲液(50mm,8.8,Tris-HCL, 5mmEDTA,20mmDTT,100mmKCL,2mmPMSF),在融化后,混合液在4度放30min, 25000g离心20min,收集上清,对沉淀重新提取一次,将收集到的上清混合,用5倍体积的100%丙酮沉淀蛋白质,-20度孵育2h,离心后,用80%的丙酮洗剂沉淀2次,IEF buffer重悬沉淀,方法如1 利用Bradford试剂法估测提取的总蛋白浓度,并调整浓度行蛋白电泳,-80度保存。 个人

    • 【资源】双向电泳操作手册(中文译本)

      目 录 概述... 1 手册的概述... 1 双向(2-D)电泳概述... 1 手册中使用的标记符号... 2 第一向等电聚焦IEF)的仪器选择... 3 第二向SDS-PAGE电泳设备的选择... 4 仪器的选择... 6 等电聚焦系统的选择... 6 第二向电泳的设备选择... 8 MultiphorII平板型设备... 8 垂直系统... 9 实验室技术... 9 第一章... 11 样品制备... 11 1.0 样品制备——一般策略... 11

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