
游离核酸(血清血浆尿液等核酸)提取试剂盒
- ¥550
- DORUN
- 北京
- DY6016
- 2025年07月15日
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- 详细信息
- 询价记录
- 文献和实验
- 技术资料
- 保质期:
一年
- 库存:
大量
- 供应商:
德元国际
| 游离核酸(血清血浆尿液等核酸)提取试剂盒 | ||||||||
| BloodGen Midi Kit | ||||||||
| 离心柱式 | ||||||||
| Cat No:DY6016 | ||||||||
| Kit Size:50T | ||||||||
| 产品组分 | ||||||||
| 组分 Contents | 50preps | |||||||
| Buffer 1# | 15ml | |||||||
| Buffer 2# | 50ml | |||||||
| Buffer 3#(concentrate) | 13ml | |||||||
| Buffer 4#(concentrate) | 15ml | |||||||
| Buffer 5# | 15ml | |||||||
| Buffer 6# | 1ml | |||||||
| 吸附柱 | 50 | |||||||
| 收集管(2ml) | 50 | |||||||
| 储运条件 | ||||||||
| 本试剂盒中Buffer 6#保存在-20℃,可保存12个月。其它组分室温(15-25℃)条件下可保存12个月,更长时间保存可置于2-8℃。 | ||||||||
| 说 明 | ||||||||
| 本产品仅供科研使用,请勿用于临床诊断及其他用途。 | ||||||||
| 产品简介 | ||||||||
| 本试剂盒适用于从新鲜或冷冻的血浆、血清、血沉棕黄层、淋巴细胞、无细胞体液等样本中提取总DNA,包括基因组DNA,线粒体DNA及病毒DNA。本品可以处理0.1-1 ml的血清或者血浆,纯化的DNA产量高、质量好,最大限度去除蛋白、色素、脂类及其他抑制性杂质污染,可直接用于PCR、RT-PCR、荧光定量PCR、酶切和Southern Blot等实验。 | ||||||||
| 实验前准备及注意事项 | ||||||||
| 1. 本实验需要无水乙醇,请自备。 | ||||||||
| 2.本试剂盒最多可以提取0.1-1 ml血清血浆样品或1×107个白细胞。 | ||||||||
| 3. 样品应避免反复冻融,否则会导致提取的DNA片段较小且提取量也下降。 | ||||||||
| 4. 第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明先在Buffer 3#和Buffer 4#中加入无水乙醇。 | ||||||||
| 5. 使用前请检查Buffer 2#是否出现结晶或者沉淀,如有结晶或者沉淀,请将Buffer 2# 于56℃水浴孵育重新溶解。 | ||||||||
| 6. Buffer 6#勿长时间室温放置,避免反复冻融,以免影响其活性。 | ||||||||
| 8.如果下游实验对RNA污染比较敏感,可以在加入4 μlDNase-Free的RNaseA(100mg/ml),RNaseA本试剂盒并未提供,如需要可单独向本公司订购,Cat No:LY5012。 | ||||||||
| 操作步骤 | ||||||||
| 1. 样品处理:向离心管(自备)中加入0.1-1 ml样本。当血清/血浆样本量小于200 μl 时,加入Buffer 1#,补足至200μl。 | ||||||||
| 注意:1)本品适用于0.1-1ml的血清/血浆样本基因组提取。 | ||||||||
| 2)当样品量超过200 μl时,无需再补加Buffer 1#。 | ||||||||
| 2. 向以上溶液中加入20 μl Buffer 6#,混匀。 | ||||||||
| 注意:当血清/血浆样本量大于500μl时,Buffer 6#可适当加倍 | ||||||||
| 3.加入1倍样本体积的Buffer 2#,颠倒混匀15次,剧烈震荡至少1min。 | ||||||||
| 注意:1)如果下游试验对RNA敏感,可加入4 μl RNaseA(100mg/ml)溶液(Cat No:LY5012),震荡15s,室温放置5min。 | ||||||||
| 2)不要直接将Buffer 6#直接加入到Buffer 2#。 | ||||||||
| 4.56℃孵育10min,其间颠倒混匀数次。 | ||||||||
| 注意:孵育10minDNA的产量已经达到最大,继续延长孵育时间对DNA产量和纯度没有影响。 | ||||||||
| 5.加入1倍样本体积的无水乙醇,颠倒混匀10次,剧烈震荡。短暂离心,使管壁和壁 盖上的液体集中到管底。 | ||||||||
| 6. 将步骤 5 所得溶液全部加入吸附柱中(吸附柱应预先装入收集管中),若一次不能加完溶液,可分多次转入。10,000rpm(~11,500×g)离心 1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。 | ||||||||
| 7. 向吸附柱中加入500 μlBuffer 3#(使用前检查是否已加入无水乙醇),10,000rpm 离心 1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。 | ||||||||
| 注意:如果提取样品是小鼠或猴子等血红素难以除去的种属的血液基因组,建议重复步骤7。 | ||||||||
| 8. 向吸附柱中加入500 μlBuffer 4#(使用前检查是否已加入无水乙醇),10,000rpm离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。 | ||||||||
| 注意:如需进一步提高DNA纯度,可重复步骤8. | ||||||||
| 9. 10,000rpm离心2min,倒掉收集管中的废液。将吸附柱置于室温数分钟,以彻底晾干。 | ||||||||
| 注意:这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。 | ||||||||
| 10. 将吸附柱置于一个新的离心管中,向吸附柱的中间部位悬空加入50-200 μlBuffer 5#,室温放置2-5min,10,000rpm离心1min,收集DNA溶液,-20℃保存DNA。 | ||||||||
| 注意:1)如果下游实验对pH值或EDTA敏感,可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响,若用水做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围),pH值低于7.0时洗脱效率不高。 | ||||||||
| 2)离心之前室温孵育5min可以增加产量。 | ||||||||
| 3)如果要增加产量可以加入50-200 μlBuffer5#或灭菌水再次洗脱。 | ||||||||
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文献和实验的效率大幅度提升。但是也出现了另一个问题,那就是在有限的样本量的前提下,我们如何能够抓取到痕量的核酸呢?以提取血清血浆样本中的游离核酸为例,常规的试剂盒很难处理这样的情况,需要试剂盒中配备一些特殊组份来捕捉这些游离核酸,并帮助其结合在柱膜上,所以大家在购买试剂盒的时候需要做好选择。 接下来就是洗脱或者溶解了,目前市面上所售的各种试剂盒大多采用硅基质膜,这种膜的特点是在高 pH 值条件下与核酸分离,所以我们如果不选择试剂盒中的洗脱液的话,我们可以用 pH 7.5-8.0 的水来代替
过滤孔,导致膜的寿命减短,分离效率较低。同时,外泌体会粘附在膜上,导致产量降低。 免疫磁珠法:用包被抗标记物抗体的磁珠与外泌体囊泡孵育后结合,即可将外泌体吸附并分离出来。该方法分离得到的外泌体的生物活性易受 pH 和盐浓度影响,不利于下游实验。 试剂盒分离法:目前商业化的外泌体提取试剂盒多种多样,提取效果良莠不齐。同时试剂盒本身的价格比较高,且外泌体的得率和纯度一般,不是性价比高的一种分离方法。此方法得到的外泌体对于后续的鉴定实验、细胞实验和动物实验等可能有影响。 五、如何鉴定外泌
病毒核酸提取试剂盒提供一种快速方便的病毒RNA/DNA提取系统,无需酚仿抽提,可迅速从血清、血浆、尿液、脑脊液或其他无细胞体液、病毒培养上清液和鼻咽拭子等样本中进行病毒RNA/DNA纯化,纯化后的核酸可用于病毒基因分型研究、病毒流行病学研究和传染病研究等。 实验操作: 1、试剂耗材的准备: (1) 试剂:无水乙醇 (2) RNase 去除的耗材:用0.01% (v/v) DEPC 溶液完全浸泡过夜,高压灭菌后烘干。 2、实验步骤: 1. 取
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