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游离核酸(血清血浆尿液等核酸)提取试剂盒

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  • ¥550
  • DORUN
  • 北京
  • DY6016
  • 2025年07月15日
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    • 保质期

      一年

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    • 供应商

      德元国际

    游离核酸(血清血浆尿液等核酸)提取试剂盒
    BloodGen Midi Kit
    离心柱式
    Cat No:DY6016
    Kit Size:50T
    产品组分
    组分 Contents     50preps
    Buffer 1#     15ml
    Buffer 2#     50ml
    Buffer 3#(concentrate)   13ml
    Buffer 4#(concentrate)   15ml
    Buffer 5#     15ml
    Buffer 6#     1ml
    吸附柱       50
    收集管(2ml)     50
    储运条件
    本试剂盒中Buffer 6#保存在-20℃,可保存12个月。其它组分室温(15-25℃)条件下可保存12个月,更长时间保存可置于2-8℃。
    说 明
    本产品仅供科研使用,请勿用于临床诊断及其他用途。
    产品简介
    本试剂盒适用于从新鲜或冷冻的血浆、血清、血沉棕黄层、淋巴细胞、无细胞体液等样本中提取总DNA,包括基因组DNA,线粒体DNA及病毒DNA。本品可以处理0.1-1 ml的血清或者血浆,纯化的DNA产量高、质量好,最大限度去除蛋白、色素、脂类及其他抑制性杂质污染,可直接用于PCR、RT-PCR、荧光定量PCR、酶切和Southern Blot等实验。
    实验前准备及注意事项
    1. 本实验需要无水乙醇,请自备。
    2.本试剂盒最多可以提取0.1-1 ml血清血浆样品或1×107个白细胞。
    3. 样品应避免反复冻融,否则会导致提取的DNA片段较小且提取量也下降。
    4. 第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明先在Buffer 3#和Buffer 4#中加入无水乙醇。
    5. 使用前请检查Buffer 2#是否出现结晶或者沉淀,如有结晶或者沉淀,请将Buffer 2# 于56℃水浴孵育重新溶解。
    6. Buffer 6#勿长时间室温放置,避免反复冻融,以免影响其活性。
    8.如果下游实验对RNA污染比较敏感,可以在加入4 μlDNase-Free的RNaseA(100mg/ml),RNaseA本试剂盒并未提供,如需要可单独向本公司订购,Cat No:LY5012。
    操作步骤
    1. 样品处理:向离心管(自备)中加入0.1-1 ml样本。当血清/血浆样本量小于200 μl 时,加入Buffer 1#,补足至200μl。
    注意:1)本品适用于0.1-1ml的血清/血浆样本基因组提取。
    2)当样品量超过200 μl时,无需再补加Buffer 1#。
    2. 向以上溶液中加入20 μl Buffer 6#,混匀。
    注意:当血清/血浆样本量大于500μl时,Buffer 6#可适当加倍
    3.加入1倍样本体积的Buffer 2#,颠倒混匀15次,剧烈震荡至少1min。
    注意:1)如果下游试验对RNA敏感,可加入4 μl RNaseA(100mg/ml)溶液(Cat No:LY5012),震荡15s,室温放置5min。
    2)不要直接将Buffer 6#直接加入到Buffer 2#。
    4.56℃孵育10min,其间颠倒混匀数次。
    注意:孵育10minDNA的产量已经达到最大,继续延长孵育时间对DNA产量和纯度没有影响。
    5.加入1倍样本体积的无水乙醇,颠倒混匀10次,剧烈震荡。短暂离心,使管壁和壁 盖上的液体集中到管底。
    6. 将步骤 5 所得溶液全部加入吸附柱中(吸附柱应预先装入收集管中),若一次不能加完溶液,可分多次转入。10,000rpm(~11,500×g)离心 1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
    7. 向吸附柱中加入500 μlBuffer 3#(使用前检查是否已加入无水乙醇),10,000rpm 离心 1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。
    注意:如果提取样品是小鼠或猴子等血红素难以除去的种属的血液基因组,建议重复步骤7。
    8. 向吸附柱中加入500 μlBuffer 4#(使用前检查是否已加入无水乙醇),10,000rpm离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。
    注意:如需进一步提高DNA纯度,可重复步骤8.
    9. 10,000rpm离心2min,倒掉收集管中的废液。将吸附柱置于室温数分钟,以彻底晾干。
    注意:这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。
    10. 将吸附柱置于一个新的离心管中,向吸附柱的中间部位悬空加入50-200 μlBuffer 5#,室温放置2-5min,10,000rpm离心1min,收集DNA溶液,-20℃保存DNA。
    注意:1)如果下游实验对pH值或EDTA敏感,可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响,若用水做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围),pH值低于7.0时洗脱效率不高。
    2)离心之前室温孵育5min可以增加产量。
    3)如果要增加产量可以加入50-200 μlBuffer5#或灭菌水再次洗脱。

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