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- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
999
- 英文名:
Ready-to-use DRAQ7 Dead Cell DNA Dye(0.3mM in Water)
- 供应商:
北京诺博莱德科技有限公司
Ready-to-use DRAQ7 Dead Cell DNA Dye(0.3mM in Water)
即用型 DRAQ7 死细胞 DNA 染料(0.3mM)
目录号:C88868
规格:50μL/0.5mL/1mL
保存:4℃避光保存,冰袋运输。
产品简介:
DRAQ7是一款明亮的远红外亲脂性非膜透性蒽醌类DNA染料,其核心作用原理为通过特异性结合死细胞或透化细胞的细胞核DNA实现靶向标记,无法穿透完整活细胞的细胞膜,可以精准区分膜完整活细胞与膜受损死亡细胞。相较于死细胞标记染料PI与7-AAD,DRAQ7具备性能优势在于:激发波段覆盖广,发射光位于远红区域,不被紫外线激发、与PE及PE同系物无发射光谱重叠,可直接替代PI与7-AAD并规避其光谱交叉干扰的弊端;染色过程无需RNase处理以排除RNA干扰,也无需额外洗涤步骤,大幅简化实验流程;染料在细胞长期培养中无毒性,可保障实验样本的活性与后续研究的可行性。
DRAQ7凭借独特的标记特性与光谱优势,成为细胞凋亡、细胞活力及膜完整性研究的关键工具,因无长期毒性,DRAQ7还可作为药物筛选、细胞培养等实验的终点检测指标,用于评估不同处理条件下的细胞健康水平,为药物毒性、环境因子影响等研究提供可靠的细胞活力数据,其低干扰、高适配的特性有效突破了传统染料的应用局限,推动细胞死亡相关研究的精准化与高效化。
注:效能等同于ThermoFisherDRAQ7™染料(D15106)。
注:本文中DRAQ5、DRAQ7均是BiostatusLimited的商标及注册商标。
产品组成:
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产品名称 |
目录号 |
规格 |
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Ready-to-useDRAQ7DeadCellDNADye(0.3mM in Water) |
C88868 |
50μL(50T) |
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Ready-to-useDRAQ7DeadCellDNADye(0.3mM in Water) |
C88868 |
0.5mL(500T) |
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Ready-to-useDRAQ7DeadCellDNADye(0.3mM in Water) |
C88868 |
1mL(1000T) |
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使用手册 |
C88868sc |
1份 |
注:规格是按照DRAQ7母液1︰100稀释,工作浓度3μM,稀释后96孔板检测单次用量100μL来计算。
应用范围:
死细胞核酸检测,细胞凋亡,死细胞区分,多色共染分析等。
产品特点:
极速染色:室温最快10min快速染色,大幅缩短实验时间;
免洗涤:染色后无需洗涤,方便使用,省时间省步骤;
方便使用:以易用的水溶性形式提供,按需稀释后即用,使用方便;
适合多色搭配:无紫外激发且发射光谱与PE无重叠,和PE搭配做凋亡检测时,无须设置单染管调节补偿;
超稳定:在室温下稳定,具有高度的热稳定性和光稳定性。
产品参数:
Ex:599/644nm;
Em:678/697nm;
光谱图:
使用方法(仅供参考):
一、实验前准备
试剂准备:
将试剂从储存条件(如4°C)取出,平衡至室温(15-25°C)。
准备细胞培养基、缓冲液(如PBS)。
对照设置
阴性对照:活细胞,新鲜完全培养基培养正常培养的细胞,作为标定“DRAQ7-活细胞”的荧光基线。
阳性对照:死细胞,55-60℃无菌蒸馏水孵育10min(诱导完全细胞死亡),标定“DRAQ7+死细胞”。
仪器准备:
荧光显微镜:配备633nm或647nm光源的荧光显微镜。
流式细胞仪:可用633nm波长激发的流式细胞仪。
二、操作步骤
方案一:荧光显微镜检测(适用于悬浮细胞)
收集与洗涤细胞:
(1)收集待测悬浮细胞悬液至离心管中。
(2)1000rpm,室温离心5min,小心吸弃上清液。
细胞重悬与计数:
使用PBS或细胞培养基重悬并细胞计数。
取5×10⁴-10⁵个细胞,1000rpm低速离心5min,去除PBS或细胞培养基。
配制DRAQ7工作液:
将DRAQ7按照1∶100的比例添加至细胞培养基中(DRAQ7添加至培养基稀释比例在1︰15至1︰200之间)。
注:不同细胞种类所需DRAQ7的染色浓度可能不同,初期最好进行细胞染色的预实验工作,设置不同DRAQ7稀释倍数梯度确定最佳稀释比例。
细胞染色:
将DRAQ7染色工作液添加至沉淀中,重悬细胞,室温(20~25℃)孵育10min;
孵育结束后,1000rpm低速离心5min,去除染色工作液;
加细胞培养基重悬细胞。
注:DRAQ7孵育时间建议在10min上下摸索。
荧光显微镜检测:
(1)96孔板法:将100μL细胞悬液加入96孔板中,静置片刻,待细胞自然沉降贴底后,置于荧光显微镜下观察。
(2)载玻片法:取20-30μL细胞悬液滴加于洁净载玻片上,轻轻盖上盖玻片,避免产生气泡,置于荧光显微镜下观察。
(3)滤光片选择:Ex/Em:645/666nm。
方案二:荧光显微镜检测(适用于贴壁细胞)
1.细胞准备:
(1)提前一天在孔板中接种细胞,使得细胞汇合度达到70%-85%。
2.配制DRAQ7工作液:
(1)将DRAQ7按照1∶100的比例添加至细胞培养基中(DRAQ7添加至培养基稀释比例在1︰15至1︰200之间)。
注:不同细胞种类所需DRAQ7的染色浓度可能不同,初期最好进行细胞染色的预实验工作,设置不同DRAQ7稀释倍数梯度确定最佳稀释比例。
3.细胞染色:
(1)吸弃微孔板中的旧培养基;
(2)稀释后的DRAQ7添加至细胞中(染色工作液体积按建议添加:96孔板加100μL/孔,48孔板加150μL/孔,24孔板加250μL/孔,12孔板加500μL/孔,6孔板加1mL/孔),室温(20~25℃)孵育10min。
注:DRAQ7孵育时间建议在10min上下摸索。
4.荧光显微镜检测:
(1)直接将培养板置于显微镜下检测,光片选择,Ex/Em:645/666nm。
方案三:流式细胞仪检测(适用于悬浮细胞和贴壁细胞)
1.收集与制备单细胞悬液:
l悬浮细胞:同“方案一”中的“步骤1”和“步骤2”。
l贴壁细胞:以6孔板培养的细胞为例。
a.将细胞培养基吸出至适合的离心管内备用。贴壁细胞用少量PBS清洗一遍,清洗后的PBS吸出后同样转移到盛装培养基的离心管内,1000rpm,室温离心5min。
b.加入适量胰酶消化液(覆盖细胞即可),室温下置于显微镜下观察,待细胞变圆、间隙增大时,用移液器轻轻吹打,使细胞完全脱落。
注:胰酶使用量、消化时间、消化温度根据各自实验室的经验操作。
c.关键:加入“a步骤”离心管内备用的细胞培养基,终止消化。
d.将细胞悬液转移至离心管,1000rpm,室温离心5min,吸弃上清。
e.收集a步骤与d步骤中的细胞。
f.用PBS或细胞培养基重悬细胞并进行细胞计数。
g.取5×10⁴-10⁵个细胞,1000rpm,室温离心5min,吸弃上清。
2.配制DRAQ7染色工作液:
(1)将DRAQ7按照1∶100的比例添加至细胞培养基中(DRAQ7添加至培养基稀释比例在1︰15至1︰200之间)。
注:不同细胞种类所需DRAQ7的染色浓度可能不同,初期最好进行细胞染色的预实验工作,设置不同DRAQ7稀释倍数梯度确定最佳稀释比例。
3.细胞染色:
使用1mLDRAQ7染色工作液重悬细胞,室温(20~25℃)孵育10min。
注:Draq7孵育时间建议在10min上下摸索。
4.流式细胞仪检测:
(1)选用633nm波长激发,660nm检测荧光信号。
三、结果判读
定性分析(显微镜):
图1.DRAQ7染料用于Hela细胞DNA染色的荧光显微成像
死细胞:细胞核区域出现明亮的远红外(红色)荧光,信号集中且轮廓清晰,核区边界清晰;
活细胞:无核荧光,活细胞的细胞核区域无DRAQ7远红外(红色)荧光信号(因膜完整,染料无法进入)。
注:图片引自参考文献《Real-timecellviabilityassaysusinganewanthracyclinederivativeDRAQ7®》(doi:10.1002/cyto.a.22228)
定性分析(流式细胞仪):

图2.DRAQ7染料用于胶质瘤细胞的流式细胞图
第一步:根据阴性对照和阳性对照信号值确定“DRAQ7活细胞群”的基准和“DRAQ7⁺死细胞群”的基准;
第二步:FSC-A/SSC-A散点图,圈选细胞群,排除碎片与大聚集物;
活死细胞分群
FSC-A/DRAQ7散点图:辅助确认细胞大小与DRAQ7信号的关联,排除碎片干扰,x轴:FSC-A(线性轴,反映细胞大小),y轴:DRAQ7荧光强度(双指数轴)
设定活/死阈值并圈门
定阈值:以“阴性对照(活细胞)的DRAQ7信号”为基准,找到其荧光强度的第99百分位值(即99%的活细胞信号低于该值),此值即为“活/死阈值”;
活细胞门(DRAQ7⁻):圈选“DRAQ7荧光强度低于阈值”的群体(对应阴性对照的主要群体,信号弱);
死细胞门(DRAQ7⁺):圈选“DRAQ7荧光强度高于阈值”的群体(对应阳性对照的主要群体,信号强)。
注:图片引自参考文献《DRAQ7asanAlternativetoMTTAssayforMeasuringViabilityofGliomaCellsTreatedWithPolyphenols》(doi:10.21873/anticanres.14553.
常见疑问与解答:
问:DRAQ7储液是否含DMSO?
答:该产品为水溶液形式,不含DMSO。
问:染色时间在37℃和室温下为什么有差异?
答:37℃时细胞的活性和分子运动相对室温更活跃,DRAQ7与细胞核结合的速度更快,所以可能需要更短的染色时间。
问:在使用DRAQ5和DRAQ7的时候,这两者有什么区别,该如何选择?
答:对活细胞进行DNA分析、长期监测细胞状态或进行组织深层成像时选DRAQ5;评估细胞活力、检测凋亡或区分样本中的死活细胞群体时选DRAQ7。两者的区别如下:
|
对比 |
DRAQ5 |
DRAQ7 |
|
细胞膜渗透性 |
可透过 |
不可透过 |
|
染色对象 |
活细胞和固定细胞的所有细胞核 |
仅死亡细胞、凋亡细胞或透化细胞的细胞核 |
|
结合方式 |
与DNA化学计量结合,荧光强度反映DNA含量 |
特异性结合双链DNA,染色快速 |
|
适用场景 |
活细胞DNA含量分析、细胞周期研究、长期活细 胞成像实验、深层组织/肿瘤组织成像 |
细胞活力评估、细胞凋亡检测、药物/化合物体外 毒性测试、区分死活细胞的流式细胞术实验 |
注意事项:
DRAQ7属于远红外荧光,肉眼不可见,需要CCD相机或激光共聚焦观察。
由于DRAQ7发射和激发波长范围很宽,不建议将Draq7与其他可被488nm或633nm激光激发的远红光荧光染料联用。
荧光染料存在淬灭问题,请尽量注意避光,以减缓淬灭。
使用前请将产品瞬时离心,再进行后续操作。
本产品仅限于科研用途并且不得存放于普通住宅内。
为了您的安全和健康,请遵循您所在常规实验室安全规定。
备注:产品信息可能会有优化升级。请以实际标签信息和纸板说明书为准。(版本V0.5)
风险提示:丁香通仅作为第三方平台,为商家信息发布提供平台空间。用户咨询产品时请注意保护个人信息及财产安全,合理判断,谨慎选购商品,商家和用户对交易行为负责。对于医疗器械类产品,请先查证核实企业经营资质和医疗器械产品注册证情况。
文献和实验DNA指纹图谱分析[DNA Fingerprinting ](图)
重复的小卫星DNA 等)或者完整的基因组DNA ,然后将扩增出的DNA 酶切成DNA 片断,经琼脂糖凝胶电泳,按分子量大小分离后,转移至尼龙滤膜上,然后将已标记的小卫星DNA 探针与膜上具有互补碱基序列的DNA 片段杂交,用放射自显影便可获得DNA 指纹图谱。琼脂糖凝胶电泳是分离,鉴定和纯化DNA 片段的常规方法。利用低浓度的荧光嵌入染料- 溴化乙锭进行染色,可确定DNA 在凝胶中的位置。如有必要,还可以从凝胶中回收DNA 条带,用于各种克隆 操作。琼脂糖凝胶的分辨能力要比聚丙烯酰胺凝胶低,但其分离
2 -3mm 。 4 .取 4ul 质粒,加 2ul lodaing buffer , 6ulddH 2 O ,混匀,用加样器吸取样品。加入点样孔中,注意加样器吸头应恰好置于凝胶点样孔中,不可刺穿凝胶,也要防止将样品溢出孔外。 5 .接通电源, 1-5V/cm 电压,开始电泳。 6 .当溴酚兰染料移动到距离胶前沿 1 -2cm 处,停止电泳。 7. 切断电源后,取出凝胶,在紫外灯( 360nm 、 312nm 或 254nm )下或经凝胶成像系统观察或拍照。 附注: 影响 DNA 片段琼脂糖电泳的几个因素
,经琼脂糖凝胶电泳,按分子量大小分离后,转移至尼龙滤膜上,然后将已标记的小卫星DNA探针与膜上具有互补碱基序列的DNA片段杂交,用放射自显影便可获得DNA指纹图谱。 琼脂糖凝胶电泳是分离,鉴定和纯化DNA片段的常规方法。利用低浓度的荧光嵌入染料-溴化乙锭进行染色,可确定DNA在凝胶中的位置。如有必要,还可以从凝胶中回收DNA条带,用于各种克隆操作。琼脂糖凝胶的分辨能力要比聚丙烯酰胺凝胶低,但其分离范围较广。用各种浓度的琼脂糖凝胶可以分离长度为200bp至近50kbp的DNA。长度100kb或更
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