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种属 | 大鼠 |
组织来源 | 正常心脏组织 |
传代比例 | 1:2传代 |
完全培养基配置 | 基础培养基500ml;生长添加剂5ml;胎牛血清10ml;双抗5ml |
简介 | 心脏微血管周细胞分布于心脏组织的微血管系统中,调节血管形成、稳定和功能的关键因素。周细胞典型的特征是有一个突出的核,核周围胞浆较少,有许多平行于微血管长轴的突起,这些突起逐渐变细并包绕微血管腔,起到对管腔的支持作用。同时,一个周细胞可以通过伸展的突起与微循环中的多个毛细血管接触。此外,周细胞和内皮细胞间的相互作用在血管新生中具有极为重要的作用。 |
形态 | 梭形 |
生长特征 | 贴壁生长 |
细胞检测 | PDGFR-β与NG2免疫荧光鉴定,细胞纯度可达90%以上,不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。 |
倍增时间 | 每周 2 至 3 次 |
换液频率 | 2-3天换液一次 |
培养条件 | 气相:空气,95%;二氧化碳,5%。 温度:37摄氏度,培养箱湿度为70%-80%。 |
冻存条件 | 冻存液:90%FBS,DMSO 10%, 或使用非程序冻存液: |
产品使用 | 仅限于科学研究,不可作为动物或人类疾病的治疗产品使用。 |







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文献和实验的[5],但细胞得率均较低,而近些年来国外大多数方法采用以大脑皮质为材料、酶消化及梯度离心分离脑微血管段并进行原代培养[6~9,11,12]。由于原代培养中无法避免地混杂成纤维细胞、周细胞、平滑肌细胞、星型胶质细胞等其他细胞的生长,而且工作量大、过程繁琐且费用高[1],进行较纯的大鼠脑微血管内皮细胞原代培养一直是国内外的一个难点。 本人参照文献[6]、[7]、[8]的方法,成功地摸索出大鼠脑微血管内皮细胞分离和原代培养的方法,并获得纯度较高的脑微血管内皮细胞。 1.材料与方法 1.1 实验动物 每次
。 选用80克SD大鼠(雌雄不限,购自复旦大学实验动物部),1%戊巴比妥钠(1ml/100g)腹腔注射麻醉,75%酒精浸泡5min消毒,将大鼠移至超净台进行操作,止血钳固定四肢,逐层打开胸腔,暴露心脏,剪开心包,由升主动脉处剪下心脏,放入D-Hanks平衡盐缓冲液中.冲净心腔中的血液,辨清心脏解剖结构,去除大血管、左右心房以及右心室和室间隔,保留左心室,小心去除心内膜及心外膜,用眼科剪剪碎余下的心室肌约2mm见方,滴加1ml进口胎牛血清.均匀接种于处理过的50ml培养瓶中,放入37℃、5%CO2
敏感性2. 标题的加减法3. 标题的转换法3 步曲(学术模仿、理清关键词、拆分关键词)+ 3 技巧(一中心多基本点、标题加减法、标题转换法)= 好标题二、结构式摘要背景目的如何写出漂亮的摘要背景目的?第一步:关键词配对间充质干细胞外泌体传递 SDF1 保护缺血心肌细胞凋亡及心脏内皮微血管再生第二步:学术搜索间充质干细胞外泌体传递 SDF1 保护缺血心肌细胞凋亡及心脏内皮微血管再生第三步:模仿降重间充质干细胞外泌体传递 SDF1 保护缺血心肌细胞凋亡及心脏内皮微血管再生背景 + 研究空白点1、研究的范围、目前
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