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酸酶的实验室器具和试剂以及对实验区域进行去污处理。 根据来源材料(如血液、组织、细胞、植物)的类型和实验目标,有多种 RNA 分离和纯化方法可供选择。分离纯化过程的主要目标是稳定 RNA 分子、抑制 RNA 酶,并通过适当的储存和提取方法最大程度提高产量。最佳的纯化方法可以去除干扰酶活性的内源性化合物,如植物组织中的复合多糖和腐殖酸,以及反转录酶的常见抑制剂,如盐、金属离子、乙醇和苯酚。纯化的 RNA 应保存在 -80°C,尽量减少反复冻融。 纯化后评估 RNA 质量和数量的方法有许多种。常用
高效液相色谱―电喷雾串联质谱法测定蔬菜中虫酰肼和甲氧虫酰肼残留
检测水果蔬菜中的甲氧虫酰肼残留,但该方法采用液液分配净化样品,消耗有机溶剂量多,且操作麻烦。相比之下,固相萃取法快速高效,适用于日常的样品检测。 本实验通过碱性乙腈提取,固相萃取净化,反相高效液相色谱柱分离后, 利用串联质谱选择反应监测(SRM)模式的选择性和特异性,建立了蔬菜中虫酰肼和甲氧虫酰肼的定性定量液相色谱�串联质谱检测方法,讨论了质谱解离的可能机理。 2 实验部分 2.1 仪器与试剂 Surveyor液相色谱系统(Thermor 公司
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