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500 mL
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文献和实验。 4、培养细胞时,如何去除血清来源的外泌体? 多数情况下,细胞在体外培养时需要血清,而血清中一般都含有外泌体,为避免血清对细胞外泌体的污染,可采用以下两种方法: 将细胞培养用的血清通过 1×105g 超速离心 >10 h 以去除血清外泌体; 选择无血清完全替代培养基进行细胞培养。 5、无外泌体血清(或者外泌体专用培养基)在什么时候使用? 使用无外泌体血清培养基:细胞在正常含血清的培养基中培养一定的时间后,细胞汇合度在60% - 70% 时,移去原有含血清的培养基,换成新鲜的无外泌体血清培养基,继续
C 孵育 20 分钟,期间进行连续搅拌,如果是在静置条件下孵育中间进行几次吹打混匀,该孵育时间可适当延长。孵育结束制备得到 CD3/CD28 Streptamer® 混合物; 2. 用培养基(成分:RPMI1640 + 10% 血清 + 50U/ml IL-2 )调整细胞浓度至 5×10^5/ml,将步骤(1)中制备好的 CD3/CD28 Streptamer® complexes 与细胞悬液进行混合,轻轻吹匀后,将细胞加入到细胞培养板中,放置于 37°C 含 5% CO2 细胞培养箱中培养
人外周血PBMC的制备流程 收集抗凝人外周血,用 1640 无血清培养基或 PBS 按照 1:1 的比例稀释,上下颠倒混匀或者用移液枪吹打混匀。 在 15 mL 离心管中,先加入 3 mL 充分混匀的 Ficoll 液(1.077 g/mL),再沿着管壁缓慢加入2 mL稀释后的血液,血液和 Ficoll 液分层明显为成功。 注:Ficoll 提前半小时从 4℃ 冰箱取出恢复到室温,温度过高会导致分离不明显,温度过低会导致密度过大,同样分离效果不好, 20~25℃ 最佳。。 将样本小心转移
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