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北京泽平是Cytiva Pall一级代理商,具备20年销售服务经验,提供各类试剂、耗材、仪器、软件、服务等一站式解决方案。gd}$c!BH.WtFnaKU-!yoBf*84\3ISwKwd3{@V[gHhrxiN<}q"7l2>BjA0fIkH^@bM{(:dU~@dqG0/kv)^Nn0Kx9cU`f[/{Ao1VVQKOMq8wZm_:RP;gq_weR5dp5i@IHhq8}3Pf7,A{]3YWhk*QGrvF]XE6=!z+0zp\`c<4Au%"^zm3hHHU4&C5&qjy*0#$S~EBNFVxKXBovLq)8TXSxpgl1%mJL.q1h2vkMLb[k[1q*dh4A6@zdtP)98qo8Mlc-pG^5G6w]h.6?[7Yg/Jv\\Y>m)'t!=YYuY9dWn}^Aj6`"y?)ASI;C[l@RTx>fM>}ts+nV4>*MC[K4?x1=LnZv#QP~>
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文献和实验hcy_sypu wrote: 888wym 老师您好! 关注您的帖子很久了,有个问题想请教您。 我们在做一个毕赤酵母分泌表达的重组蛋白,分子量在6000Da,高密度发酵得到的,发酵液40%左右是菌体,在上柱前以前是用离心的方法来澄清,效率很低,而且上清液并不很澄清。如果要产业化是否最好用TFF来澄清呢?板框过滤是否对菌丝体效果好而对类似酵母的菌体不适用呢? 我看您介绍的陶瓷膜切向流过滤技术,是否原理也象超滤膜包
或ABS平衡时你们一般用多少柱床体积? 3、我们用5KD超滤浓缩后蛋白的损失很大,能否帮忙分析一下原因(PALL 的超滤器)? 那也许是因为有气泡,累积到一定地步后就穿过介质所以裂缝,你流速不能太快,而且缓冲液脱气,这样就应该好了. 2.一般离子交换没有必要算什么高/直径比,一般用的短粗柱子,亲和和疏水也都是这样的就可以,没有刻意要求,5/7应该影响也不大,当然如果你走线形梯度洗脱,也适当把这个比值增加点,如果走阶段洗脱就没有关系。 3。超滤膜本身的面积不小,这样也会吸附蛋白,特别是处理
,这样就好了,你也可以超滤浓缩。丙酮沉淀要在低温搅拌情况下缓慢加冷丙酮,避免局部浓度过高,此外沉淀后马上离心,这样也可以避免变性而不溶解。 44)三氟乙醇我的看法是降低了极性,这样你的蛋白不会因为(环境极性大)疏水相互作用太强和聚集,至于活性那你多查文献看有没有别的测法了。 关于TFE对于a-helix的形成,现在有两种观点。 1。TFE能稳定a-helix的形成,及这个蛋白本来就是a-helix的结构,但是由于dynamic太严重了,或其他的因素,造成表观上看不见。加入TFE能够稳定之,使之表观可见,用CD
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