小反刍兽疫病毒（PPRV）核酸检测试剂盒（探针法荧光PCR）

小反刍兽疫病毒（PPRV）核酸检测试剂盒（探针法荧光PCR）
英文名称：Peste des Petits Ruminants Virus Detection Kit
小反刍兽疫是由麻疹病毒属的小反刍兽疫病毒（Peste des petits ruminants virus，PPRV）引起的一种高度接触性传染病，主要感染绵羊、山羊，野生小反刍动物也可被感染，是危害养羊业最重要的疫病之一。OIE 曾将该病列为发病必须报告的 A 类动物传染病，我国将其列为 I 类动物疫病，一旦发现必须采取紧急严厉的措施进行控制和扑灭。 本试剂盒适用于检测的羊的肠系膜和支气管淋巴结、脾、肺、大肠等组织、眼睫膜拭子、口鼻拭子、血清   等标本中小反刍兽疫病毒 RNA，适用于小反刍兽疫病毒感染的辅助诊断。

本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术，设计一对小反刍兽疫病毒特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光 PCR 技术对小反刍兽疫病毒的 RNA 进行体外扩增检测，用于对可疑感染病料的病原学检测。

小反刍兽疫病毒（PPRV）核酸检测试剂盒（探针法荧光PCR）试剂组成：

包装规格	50T/盒
PPRV 反应液	500μL×2 管
酶液	50μL×1 管
PPRV 阳性质控品	50μL ×1 管
阴性质控品	250μL ×1 管

说明：不同批号的试剂盒组分不可交互使用

储存条件及有效期：-20℃±5℃，避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次，有效期 12 个月。

适用仪器：ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。

标本采集：选择处于发热期（体温 40℃~41℃），排出水样眼分泌物、出现口腔溃疡、无腹泻症状的活畜采集样品。采集结膜棉拭子 2 个，鼻粘膜棉拭子 2 个，颊部粘膜棉拭子 1 个，分别放在 300μL 灭菌的 0.01mol/L pH7.4 磷酸盐缓冲液(PBS)中。无菌采集血液 10mL，用常规方法分离血清。 选择刚被扑杀或者死亡时间不超过 24h 的病畜采集组织样品。无菌采集肠系膜和支气管淋巴结各 3 个~4 个， 脾、胸腺﹑肠粘膜和肺等组织各约 25g~50g，分别置于 50mL 离心管中。肉制品取 25 g~50 g，置于 50 mL 离心管中。

保存和运输：采集或处理好的样品在 2℃~8℃条件下保存应不超过 24 h；若需长期保存，应放置-70℃以下保存，冻融不超过 3 次。

使用方法：
1.    样品处理（样本处理区） 1.1    样本前处理 将棉拭子充分捻动，挤干后弃去拭子，取 100μL 样品液至一新的离心管中；取少量样品（2~3 g）于研钵或匀浆器中研磨，加 10 mLPBS 混匀，然后将研磨匀浆转入无菌离心管中，4℃，3000 r/min 离心 10 min 取上清液转入无菌的 1.5 mL 离心管中，编号待检；血液样品静置后取上清于 1.5mL 灭菌离心管中待检。 1.2    核酸提取 推荐采用公司生产的核酸提取试剂（离心柱法）进行核酸提取，请按照试剂说明书进    行操作。 2.    试剂配制（试剂准备区） 根据待检测样本总数，设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照；样品每满 10 份，多配制 1 份)，每测试反应体系配制如下表： 试剂    PPRV 反应液    酶液 用量（样本数为 N）    19μL    1μL   将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中，20μL /管。 3.    加样（样本处理区） 将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL，分别加入相应的反应管中，盖好管盖，混匀， 短暂离心。 4.    PCR 扩增（核酸扩增区） 4.1    将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内； 4.2    设置好通道、样品信息，反应体系设置为 25μL；荧光通道选择： 检测通道（Reporter Dye）FAM， 淬灭通道（Quencher Dye）NONE，ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光，选择 None 即可。 4.3    推荐循环参数设置： 步骤    循环数    温度    时间    收集荧光信号 1    1 cycle    50℃    10min    否 2    1 cycle    95℃    2min    否 3    45 cycles    95℃    15sec    否         60℃    30sec    是 5.    结果分析判定 5.1    结果分析条件设定（请参照各仪器使用说明书进行设置，以分析 ABI7500 仪器为例） 反应结束后自动保存结果，根据分析后图像调节 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值（用户可根据实际情况自行调整，Start 值可设在 3～15、End 值可设在 5～20，使阈值线位于扩增曲线指数期，阴性质控品的扩增曲线平直或低于阈值线），点击 Analyze 自动获得分析结果。 5.2    结果判断 阳性：检测通道 Ct 值≤40，且曲线有明显的指数增长曲线； 阴性：样本检测结果 Ct 值>40 或无 Ct 值。 5.3    质控标准 阴性质控品：无特异性扩增曲线或无 Ct 值显示； 阳性质控品：扩增曲线有明显指数增长期，且Ct 值≤32； 以上条件应同时满足，否则实验视为无效。 6.    检测方法的局限性 1.    样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关； 2.    样本提取过程中没有控制好交叉污染，会出现假阳性结果； 3.    阳性对照、扩增产物泄漏，会导致假阳性结果； 4.    病原体在流行过程中基因突变、重组，会导致假阴性结果； 5.    不同的提取方法存在提取效率差异，会导致假阴性结果； 6.    试剂运输，保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降，出现假阴性或定量检测不准确的结果； 7.    本检测结果仅供参考，如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。

注意事项
1.    所有操作严格按照说明书进行；
2.    试剂盒内各种组分使用前应自然融化，完全混匀并短暂离心；
3.    反应液应避光保存；
4.    反应中尽量避免气泡存在，管盖需盖紧；
5.    使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服；
6.    样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行，以免交叉污染；
7.    实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器；
8.    试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

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