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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 服务名称:
大鼠炎症10因子Panel
- 提供商:
LabEx
- 规格:
96孔板
产品介绍
大鼠炎症因子多指标同步检测是一种高效、精准的检测方案,适用于科研、药物开发及疾病模型研究。通过一次实验即可同步分析多种炎症相关指标,显著节省实验时间和样本消耗,提升数据可比性。本产品采用高灵敏度检测技术,可精准量化低丰度炎症因子,适用于血清、血浆、组织匀浆等多种样本类型。
技术平台优势
基于先进的Luminex xMAP® 多重检测技术,本方案可在单孔中同时检测多达10种大鼠炎症因子,包括IL-1β、IL-6、TNF-α、IFN-γ等核心指标。该平台结合微球悬浮阵列与荧光编码技术,兼具高通量、高特异性和宽动态范围的特点,尤其适合复杂样本中低浓度炎症因子的检测。
服务周期与交付
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标准周期:收到样本后 5-7个工作日 出具检测报告(具体时间视指标数量而定)。
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加急服务:可选择 3个工作日内 完成(需额外沟通)。
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数据交付:提供原始数据(荧光值/浓度)、标准化分析图表及质控报告。
样本要求与准备指南
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样本类型:血清、血浆(EDTA/肝素抗凝)、组织匀浆、细胞培养上清等。
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样本量:每指标需 50-100 μL,建议提供 200 μL 以上以备复测。
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保存与运输:
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短期储存:-20℃(避免反复冻融)。
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长期储存:-80℃(分装保存更佳)。
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运输条件:干冰或冰袋(避免高温震荡)。
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核心检测指标(示例)
| 指标名称 | 检测范围(pg/mL) | 灵敏度 |
|---|---|---|
| IL-1β | 5-2000 | 1.2 |
| IL-6 | 10-5000 | 3.0 |
| TNF-α | 5-3000 | 2.1 |
| IFN-γ | 10-4000 | 4.5 |
| MCP-1 | 15-6000 | 5.0 |
实验流程概述
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样本预处理:离心去除颗粒物,避免脂血或溶血干扰。
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微球孵育:样本与抗体标记微球混合,特异性结合目标因子。
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信号放大:加入荧光标记二抗,通过激光检测微球荧光信号。
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数据分析:基于标准曲线计算各因子浓度,质控剔除异常值。
常见问题与注意事项
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样本反复冻融可能导致某些细胞因子降解,建议分装保存并标注冻融次数。
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高浓度样本需提前稀释,避免超出检测线性范围。
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不同批次间实验条件(如室温、操作时间)需保持一致,以减少变异。
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部分指标间可能存在交叉反应,建议结合预实验验证特异性。
应用场景扩展
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疾病机制研究:脓毒症、关节炎、神经炎症等模型中的动态监测。
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药物筛选:评估抗炎药物或生物制剂的疗效与毒性。
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生物标志物挖掘:联合其他组学数据筛选潜在诊断标记物。
储存与稳定性
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试剂盒储存:未开封试剂盒需 4℃避光保存(有效期12个月),启用后按说明书分装冻存。
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工作液配制:现配现用,避免长时间室温暴露。
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文献和实验【五分钟讲实验】从乳鼠心脏到会跳的细胞:大鼠原代心肌细胞分离培养入门
原代心肌细胞最神奇的地方,是它们真的会跳。 把一颗新生大鼠心脏拆成单个细胞,再让它们在培养皿里重新贴壁、伸展、同步搏动,这背后靠的不是玄学,而是取材速度、酶消化强度和差速贴壁纯化的精细配合。 一、先说清楚:这里讲的是乳鼠/新生大鼠心肌细胞 新生大鼠和成年大鼠的分离路线差别很大。 本文重点讲的是出生后约 1-4 天 SD 乳鼠/新生大鼠心肌细胞分离培养。 通常通过胰酶或胶原酶分批消化心室组织,再利用差速贴壁减少成纤维细胞污染,适合体外培养和干预实验。 类型
应答。 推荐方案:75 μg AChRα97-116肽 + 2 mg H37Ra(首次免疫,CFA为佐剂)。 优化3:乳化与注射——细节决定成败 乳化时间影响有限,但注射部位至关重要! 乳化时间:15分钟与60分钟的乳化时间对体重、临床评分和炎症因子水平无显著影响,但短时间乳化可减少皮下结节形成。 注射部位增加足垫注射:包含足垫注射的组别症状出现更早、临床评分更高、RNS衰减率更大、AChR抗体水平更高。 推荐操作: 使用无橡胶活塞的注射器进行乳化,减少热量产生,保护抗原完整性。 大鼠皮下注射使用
型一氧化氮合酶)、sGC(可溶性鸟苷酸环化酶)以及 PDE5(磷酸二酯酶5,即西地那非/万艾可的作用靶点) 的表达与活性。 检测凋亡与自噬指标: 如 Bax、Bcl-2、Caspase-3,探讨海绵体平滑肌细胞受损是否由细胞凋亡引起。 检测氧化应激与炎症因子: 如 SOD、MDA、TNF-α、IL-6 等,常用于糖尿病性 ED 或高血压性 ED 的机制研究。 4. 常见疾病模型中的机制验证 大鼠海绵体取材通常不是孤立进行的,它往往是某种特定疾病模型建立后的核心检测环节。常见的疾病模型包括: 糖
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