偏重亚硫酸钠，AB64784-500g

糖原及粘液染色法

比重1.16盐酸，加入 蒸馏 水成1000ml） 20ml 偏重亚硫酸钠或钾 1g 碱性品红1g加入200ml蒸馏水，搅拌加热沸腾，待冷却至50℃过滤，加入当量盐酸至25℃时加入偏重亚硫酸钠。置于暗处，两天后溶液变桔黄色或草黄色，然后加入少量活性碳并震荡、过滤，此时溶液应为无色。保存冰箱备用。溶液如显浅红色或草黄色，染色效果较差。 注意事项： 1、 糖原的固定要及时，而且标本要新鲜。 2、如用无水酒精作糖原的固定剂，有它的弊病，因无水酒精渗透较慢

放射免疫分析

盐，在水溶液中逐渐分解形成次氯酸，是氧化剂。在偏碱溶液中（pH7.5），氯胺T将125I的I－氧化为I+，I+取代蛋白质酪氨酸苯环的氢，形成二碘酪氨酸。反应式如下： 放射性碘标记率的高低与抗原（蛋白质或多肽）分子中酪氨酸的含量及分子中酪氨酸的暴露程度有关，当分子中含有较多的酪氨酸，又暴露在外时，则标记率就高。 标记方法：将纯化抗原和125I加入小试管底部，然后将新鲜配制的氯胺T快速冲入，混匀振荡数十秒～2min后加入偏重亚硫酸钠终止反应。再加入KI溶液稀释。然后在葡聚糖G柱上分离，逐管收集

蛋白质与多肽激素的放射免疫分析

+0.5mol/l PB50μl（pH7.5）+125 1800μCi,混合后，加入新配置的Ch―t 30μg/15μl(0.05mol/l PB, pH7.5)。迅速振荡混匀，室温下反应40s。 　　（2）终止碘化反应：加入还原剂偏重亚硫酸钠40μg/20μl(0.05mol/l PB, pH7.5),以终止碘化反应。 　　（3）Bio―Gel P2 层析纯化：将碘化反应混合液注入Bio―Gel P2 柱，用0.1n HAC溶液洗脱，分部收集，每2min收集一管，共收集60管。