2-丁基辛酸，AB67532-5ml

单克隆抗体的制备过程

，也可以用注射器反复隔日抽采腹水。反复抽采的方法得到的腹水产量比一次性处死得到的腹水产量高（站长用反复抽采的方法得到的最高产量为单只小鼠30.5 ml）。除了腹腔注射杂交瘤，还可以脾内注射，其方法有点类似脾脏内免疫。具体操作是：提前一周注射弗氏不完全佐剂，注射后一周左右用乙醚麻醉小鼠，剪开背部皮肤，可以看到脾脏，用注射器刺穿背部皮肤，将杂交瘤细胞注射到脾脏里，再用AB胶将伤口处的毛粘好，涂上抗生素即可，7-10天后可见腹水形成。这种方法的优点是对杂交瘤细胞的数量要求少，一般1000个以上的细胞都可以成功制备

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）。 （5）推注完成后停留5-10 s，可轻按摩小鼠胸部，促进生理盐水与肺泡充分接触，随后轻柔回抽灌洗液。 （注：肺泡灌洗液自然回收率较低，通常为50%-70%，可重复灌洗3-4次；全程需将收集的灌洗液置于冰上保存，避免样本变质影响后续检测。） 3. 流式检测 1）将收集好的肺泡灌洗液300 × g离心3-5 min，离心完后去掉上清，留下白色沉淀。 （2）加入Cell Staining Buffer重悬，调整细胞密度至1×107/mL。 （3）取100 μL细胞悬液，加入CD16/32封闭抗体，轻轻

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E APC 标记抗小鼠 CD206/MMR 抗体 [C068C2]   二、THP-1细胞极化流程及表面标志物检测方案 1. THP-1细胞极化培养及流式检测流程 通用准备（M0分化阶段）：THP-1细胞复苏、传代扩增至对数生长期。THP-1为悬浮细胞，计数后调整细胞密度至合适浓度（建议3-5×10⁵个/mL），铺板于合适培养板。加入PMA（100-200 ng/mL）于完全培养基（含10%FBS的RPMI-1640）中，于37°C、5% CO₂培养箱中诱导分化24 h，使其分化为贴壁