丙草胺，AB63145-1ml

快速检测茶叶中30种农药残留的QuEChERS-GC-MS法

； 传输线温度：280 ℃； 溶剂延迟：5 min。 5 实验结果 5.1 GC-MS测定结果图 图1 30种农药残留的总离子流色谱图 色谱峰按出峰时间依次为：1.敌草腈；2.联苯；3.苯胺灵；4.四氯硝基苯；5.灭克磷；6.氟草胺；7. α-六六六；8.β-六六六；9.扑灭津；10.五氯硝基苯；11. 特丁津；12.草达津；13.δ-六六六；14.除线磷；15.异丙草胺；16.扑草净；17.苄草丹；18.甲基吡啶磷；19.异丙甲草胺；20.毒死稗；21

常用染色剂及配制

是染色时间以及比较每种染色方法彼此的优缺点，不过各有优劣。 （一）苏木素染液的配制方法如下：1.Harris氏苏木素液 甲液：苏木素 1g 无水酒精 10ml 乙液：硫酸铝钾 20g 蒸馏水 200ml 丙液：一氧化汞 0.5g 经典的配制方法是，先将甲液加热溶解后，密封待用，再将乙液加热溶解至沸，去火，待溶液仍处于小沸腾状态时再将甲液徐徐倾入其中，全部混合后，再使溶液在短时间内加热至沸腾，去火，最后，将氧

肠道类器官的标准化实验操作教程及质量评估方法！

，450×g、4℃离心5min，弃上清。 ⑨将沉淀重悬于原溶液中，并与细胞外基质（BME）混合。   2.肠道类器官培养 ①将细胞悬液接种至预热的细胞培养板中。 ②将培养板倒置，置于37℃、5%CO₂细胞培养箱中静置20min。 ③每孔加入500μL含10μMY27632的培养基，置于培养箱中培养。 ④约1周后，进行机械分割以实现类器官的持续培养和传代。   3.人肠道类器官的机械分割、传代与扩增 ①吸去培养类器官的培养基，用4℃预冷的1mL高级DMEM/F12洗涤，用移液管将类器官收集至含4℃高级