大鼠脑出血模型和颅内给药

掌握这些科研小发明，少做几年实验

menghuitb：动物实验，大鼠脑核团给药的时候，因为很多核团很小，给药量也小（ 100 ~ 300nl），所以一般采用在微量进样器尖端（直径 0.4 mm）套一个玻璃针（针管 0.5 mm, 针尖 0.05 mm）后给药。有条件的实验室都自己用「拉管机」拉玻璃针，一些有钱的直接到厂家定做。 我关于做玻璃针的方法是：找一根直径 0.5 mm 的玻璃管，把细线系在玻璃管两头，一头用镊子夹住后把镊子放在桌沿，一头用动脉夹之类（有一定重量即可）的夹住，让玻璃管在空中静止的垂直。 用火机或者火柴烧

动物实验基本操作之七“给药途径与方法”

延髓池，而且可抽出清亮的脑脊液，注射药物前，先抽出一些脑脊液，抽取量根据实验需要注入多少药液决定，即注入多少抽取多少，以保持原来脑脊髓腔里的压力。 5、脑内给药 此法常用于微生物学动物实验，将病原体等接种于被检动物脑内，然后观察接种后的各种变化。小鼠脑内给药时，选套有塑料管、针尖露出2mm深的5（1/2）针头，由鼠正中额部刺入脑内，注入药物或接种物。给豚鼠、兔、狗等进行脑内注射时，须先用穿颅钢针穿透颅骨，再用注射器针头刺入脑部，再徐徐注入被检物。注射速度一定要慢，避免引起颅内压急骤升高。 6、直肠

小动物脑立体定位术

在动物实验中，有时需要在较少损伤中枢神经系统的情况下，把刺激电极、记录电极、损毁电极、给药导管等有目的地安置在动物脑的特定位置实施相关干预，这种定向安置的技术称为脑立体定位术。这是在脑内进行电刺激、记录细胞电活动、微量注射给药、定点毁损脑组织制备疾病模型等实验时不可缺少的实验步骤。其基本原理在于利用动物颅骨表面的某些解剖标志（如前囟bregma、人字缝尖lambda、矢状缝等）同脑表面及深部某一结构的相对恒定关系，从外部确定脑深部各结构的位置。在确定了颅外标记之后