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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
100
- 供应商:
SHCC
- 运输方式:
干冰/常温
- 年限:
10年
- 生长状态:
贴壁/悬浮
- 规格:
1*10^6cell/T25
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种属 |
人 |
|
别称 |
HEK-293-F; HEK 293-F; HEK-293F; HEK293F; 293-F; 293 F; 293F |
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组织来源 |
胎儿肾脏 |
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疾病 |
转化细胞系 |
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传代比例/细胞消化 |
1:2传代 |
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完全培养基配置 |
悬浮培养用特制无血清培养基;贴壁培养用MEM-EBSS + NEAA + 10%FBS |
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形态 |
上皮细胞样 |
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生长特征 |
贴壁生长,悬浮生长 |
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倍增时间 |
每周 2 至 3 次 |
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STR |
Amelogenin:X;CSF1PO:7,12;D13S317:12,14;D16S539:,9,13;D18S51:17,18;D6S1043:11;D21S11:28,30.2;D2S1338:19;D3S1358:15,17;D5S818:8,9;D7S820:11;D8S1179:12,14;FGA:23;Penta E:15;vWA:16,19; |
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培养条件 |
气相:空气,95%;二氧化碳,5%。 温度:37摄氏度,培养箱湿度为70%-80%。 |
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冻存条件 |
冻存液:90%FBS,DMSO 10%, 或使用非程序冻存液:官网货号SH-H040 |
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保藏机构 |
CCRID; 1101HUM-PUMC000393 |
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备注 |
该细胞为悬浮细胞,请注意离心收集细胞悬液,请勿直接倒掉细胞培养液。 |
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产品使用 |
仅限于科学研究,不可作为动物或人类疾病的治疗产品使用。 |
1)复苏细胞:将含有1 mL细胞悬液的冻存管在 37℃水浴中迅速摇晃解冻,加4 mL培养基混合均匀。在1000 rpm条件下离心3 min,弃去上清液,加1-2 mL培养基后吹匀。然后将所有细胞悬液加入含适量培养基的培养瓶中培养过夜(或将细胞悬液加入6 cm皿中,加入约4 mL培养基,培养过夜)。第二天换液并检查细胞密度。
2)细胞传代:如果细胞密度达80%-90%,即可进行传代培养。
- 弃去培养上清,用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。
- 加1 mL消化液(0.25%Trypsin-0.02%EDTA)于培养瓶中,使消化液浸润所有细胞,将培养瓶置于37℃培养箱中消化1-3 min(视细胞情况而定),然后在显微镜下观察细胞消化情况,若细胞大部分变圆并脱落,迅速拿回操作台,轻敲几下培养瓶后加2-3ml完全培养基终止消化。轻轻打匀后装入无菌离心管中,1000 rpm离心5 min,弃去上清液,补加1-2 mL培养液后吹匀。
- 将细胞悬液按1:2比例分到新的含8 mL培养基的新皿中或者瓶中,置于培养箱中培养。
a、收集细胞,装入无菌离心管中,1000 rpm条件下离心4 min,弃去上清液,用PBS清洗一遍,弃尽PBS,进行细胞计数。
b、根据细胞数量加入无血清细胞冻存液,使细胞密度5×106~1×107/mL,轻轻混匀,每支冻存管冻存1mL细胞悬液,注意冻存管做好标识。
c、将冻存管放入-80℃冰箱,24 h后转入液氮灌储存。记录冻存管位置以便下次拿取。












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文献和实验系是不稳定的,可能随着培养时间的改变,培养条件的不同,不同的选择压力,可能引起不同的克隆选择。因此就算是同一个细胞系,在不同条件下转染能力的差异可能会很大。载体核酸:首先要保证所转染核酸的正确性和完整性,超螺旋结构和舒展结构之间比例、双螺旋中断、核酸酶的降解,以及来自于储存和处理过程中的物理压力和污染物(如内毒素等)都会影响到转染效率。其次是载体构造,如启动子、增强子、Ori 等。转染体系中一般都带有强病毒调节元件 (如 RSV、CMV 和 SV40) 的对照载体进行优化和比较。然而,病毒启动子、增强
被紫外毒害,可谓是「穷苦」实验室首选妙法)。5 酶切连接转化酶切回收片段及载体后,将载体:DNA 片段 = 1:8 加到连接体系,16 度用 T4 酶连接 15 min,或更久,转化到感受态即可。6 鉴定:挑克隆摇菌如果赶时间的话可以边挑菌边鉴定。用 Taq Premix 做鉴定即可。鉴定完送测菌液。之后找公司索要正确序列对应的质粒,至此就得到了您想要的克隆。最后可能会遇见的问题,在实验过程中如果遇见要构建的蛋白没有很好用的抗体,或者做体外 co-IP 等相关实验,需要构建一个融合蛋白,方便之后
4 度过夜4. 转化将连接产物转化到受体菌中(一般为 DH5a),涂板,培养过夜。5. 挑取单克隆,并鉴定挑去平板上的单克隆培养,可以通过 PCR 或者酶切初步鉴定阳性克隆,对初步鉴定出来的阳性克隆进行测序。 贰 下面开始重点介绍重组酶构建质粒,基于同源基因重组原理,适用于向几乎任何载体在任何位点进行定向克隆,无需考虑插入片段自身携带的酶切位点可高效克隆 50 bp~10 kb 片段,同时构建时间也大大缩短。1. 载体的制备一般推荐双酶切线性化,线性化完全,假阳性克隆低。酶切体系同上。2. 对于使用
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