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北京百泰派克生物科技有限公司
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蛋白质质谱鉴定方法
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dànbáizhì质谱鉴定方法的技术原理与应用进展
在现代生命科学研究中,解析dànbáizhì的组成、结构及功能是理解生物过程的核心环节。dànbáizhì质谱鉴定方法通过将dànbáizhì酶解为肽段,利用质谱仪测定肽段的质量电荷比(m/z),结合数据库比对实现dànbáizhì的jīngzhǔn鉴定。这一技术已成为dànbáizhì组学研究的基础工具,其核心优势在于高灵敏度、高分辨率和广泛的动态范围,能够同时检测数千种dànbáizhì。基于质谱的dànbáizhì鉴定主要包括两种策略:niǎoqiāng法(Shotgun)和靶向dànbáizhì组学。niǎoqiāng法通过液相色谱-质谱联用(LC-MS/MS)对复杂样本进行全局分析,而靶向方法如选择反应监测(SRM)则针对特定dànbáizhì进行定量验证。
dànbáizhì质谱鉴定方法的关键步骤包括样品前处理、色谱分离、质谱检测和数据分析。样品前处理通常涉及dànbáizhì提取、还原烷基化和酶解(常用yídànbáiméi),以生成适合质谱分析的肽段混合物。色谱分离阶段采用反相液相色谱(RPLC)减少离子抑制效应,提高检测灵敏度。质谱检测环节依赖高分辨率仪器(如Orbitrap或TOF),通过数据依赖采集(DDA)或数据非依赖采集(DIA)模式获取肽段碎片信息。数据分析则借助MaxQuant、Proteome Discoverer等软件,将实验数据与UniProt等数据库匹配,实现dànbáizhì鉴定和定量。具体费用需要根据实验需求和样品情况来确定。
近年来,dànbáizhì质谱鉴定方法的技术革新显著提升了其应用广度。例如,交联质谱(XL-MS)可解析dànbáizhì相互作用网络,而自上而下(Top-down)质谱直接分析完整dànbáizhì,保留翻译后修饰信息。此外,单细胞dànbáizhì组学的发展使得在极低样本量下(如单个细胞)实现dànbáizhì鉴定成为可能。这些进展推动了癌症标志物发现、药物靶点筛选和病原体宿主互作等研究。然而,技术挑战依然存在,如低丰度dànbáizhì检测限、复杂样本的动态范围覆盖以及多组学数据的整合分析。
常见问题:
Q1. 如何优化dànbáizhì质谱鉴定方法中的酶解效率以提高肽段覆盖率?
A:酶解效率受蛋白酶活性、反应时间和缓冲体系影响。建议使用测序级yídànbáiméi(1:50酶底比),在37℃孵育12-16小时,添加0.1% RapiGest SF表面活性剂可增强疏水肽段溶解性。此外,超声辅助酶解或压力循环技术(PCT)可进一步缩短时间并提高重复性。
Q2. 在DIA与DDA采集模式间应如何选择?
A:DDA适合发现性研究,优先检测高丰度肽段,但易丢失低丰度信号;DIA通过全扫描循环获取所有碎片信息,更适合定量重复性和大规模队列研究。若样本复杂度高且需高重现性(如临床队列),推荐DIA;若目标为稀有修饰位点鉴定,DDA的MS/MS选择性更强。
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文献和实验酶(BirA)与诱饵蛋白融合表达,加入适量生物素,融合蛋白的相互作用/附近环境中的蛋白质会被生物素化。之后通过链霉亲和素或 Strep-Tactin® 进行亲和纯化,将被生物素化的蛋白质从细胞裂解液中富集出来,产物做质谱鉴定。 图 15:BioID 的原理 以上即为几种常用的蛋白质互作研究方法,另外还有很多其他相关技术可以探索。 值得一提的是,文章中所用图示与示例均来自 Strep-tag® 技术。
大部分蛋白质都可溶于水、稀盐、稀酸或碱溶液,少数与脂类结合的蛋白质则溶于乙醇、丙酮、丁醇等有机溶剂中,因些,可采用不同溶剂提取分离和纯化蛋白质及酶。(一)水溶液提取法稀盐和缓冲系统的水溶液对蛋白质稳定性好、溶解度大、是提取蛋白质最常用的溶剂,通常用量是原材料体积的1-5倍,提取时需要均匀的搅拌,以利于蛋白质的溶解。提取的温度要视有效成份性质而定。一方面,多数蛋白质的溶解度随着温度的升高而增大,因此,温度高利于溶解,缩短提取时间。但另一方面,温度升高会使蛋白质变性失活,因此,基于这一点考虑提取蛋白质
一、引言 在许多的细胞生命活动中,例如 DNA 复制、mRNA 转录与修饰以及病毒的感染等都涉及到 DNA 与蛋白质之间的相互作用的问题。 重组 DNA 技术的发展,人们已分离到了许多重要的基因。现在的关键问题是需要揭示环境因子及发育信号究竟是如何控制基因的转录活性。为此需要: 1. 鉴定分析参与基因表达调控的 DNA 元件。 2. 分离并鉴定这些顺式元件特异性结合的蛋白质因子。 这些问题的研究都涉及到 DNA 与蛋白质之间的相互作用。 研究 DNA-蛋白质相互作用的实验方法主要包括
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