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- 2026年02月03日
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适宜环境饲养，大鼠随机分为两组，每组8只，每只大鼠腹腔注射麻醉，75 %酒精消毒大鼠颈部皮肤，眼科剪沿中线剪开约1.2 cm长切口，暴露气管后进行以下分组操作：①矽肺模型组：吸取0.1 ml SiO2粉尘悬液，经软骨间隙注射到气管内；②对照组：吸取0.1 ml无菌生理盐水，经软骨间隙注射到气管内。
将肌肉及皮下组织复位，缝合皮肤并消毒。
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文献和实验实验动物及分组： 选用健康SD 雄性大鼠32只,体重280～330 g ,将其随机分成A 、B、C、D 4 个组,A 组即对照组,鞘内注射( IT) 生理盐水。 模型组:B 组鞘内注射0. 5 % AlCl3 ,C 组鞘内注射1. 0 % AlCl3 ,D 组鞘内注射1. 5 % AlCl3 ,5 d 后拔管,单笼饲养28 d。 AD 动物模型建立方法及判定 蛛网膜下腔插管及给药方法采用Yaksh 法[ 1 ] 。 AD 动物模型成功标准的判定:采用一次性避暗
代谢综合征以胰岛素抵抗为核心，高血压、高胰岛素血症、脂代谢紊乱为其主要表现，要想将这些病理因素加至动物体内制作经典的X综合征模型确实有难度。关于代谢综合征的动物模型的报道少之又少，更不要谈重复性和可操作性了。1）模型建立方法：清洁级雄性ＳＤ大鼠20只，普通饲料喂养1周后，于清醒状态下(上午10～12ｈ)用尾套法(尾动脉血压计与心电图机相连)测大鼠的收缩压(ＳＢＰ)。术前禁食过夜，自由饮水,用4%戊巴比妥钠(40ｍｇ ｋｇ)腹腔麻醉,无菌状态下，分离左肾动脉，用一间隙为0 25ｍｍ的Ｕ型银夹使左
胰腺炎动物模型是研究胰腺炎发病机制及探讨临床治疗的最好的方法,但是由于不同类型的胰腺炎间其发病机制不同,对胰腺炎的发病机制还不清楚,所以没有一种很好的动物模型可以模拟人的胰腺炎。但自1856年Busnar-do等以胆汁和橄榄油混合液注射犬胰管,成功地诱导急性胰腺炎模型以来,经过一个多世纪的探讨,胰腺炎动物模型的制备方法主要有以下几种:1.牛磺胆酸钠造模1）模型建立方法:大鼠于术前12h禁食,自由饮水,戊巴比妥溶液2mg/100g体质量行腹腔内麻醉,固定。经上腹正中切口入腹,提起十二指肠以小号
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