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- 详细信息
- 申请记录(5)
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
999
- 英文名:
EMSA/Gel-Shift KIT
- 保质期:
2年
- 规格:
100T
货号:EM001
存储条件:1-4组分-20℃保存,其他组分可4ºC保存,一年有效。
产品组分
|
货号 |
组分名称 |
规格 |
Sample |
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EM001-1 |
EMSA/Gel-Shift 结合缓冲液 (5X) |
200 μL |
20 μL |
|
EM001-2 |
上样缓冲液 (无色, 10X) |
200 μL |
20 μL |
|
EM001-3 |
上样缓冲液 (蓝色, 10X) |
200 μL |
20 μL |
|
EM001-4 |
Streptavidin-HRP 偶联物 |
100 μL |
10 μL |
|
EM001-5 |
洗涤液 (5X) |
250 mL |
25 mL |
|
EM001-6 |
检测平衡液 |
250 mL |
25 mL |
|
E1070-A |
ECL 发光液 A |
50 mL |
5 mL |
|
E1070-B |
ECL 发光液 B |
50 mL |
5 mL |
|
P1203 |
无蛋白封闭液 |
380 mL |
50 mL |
产品简介:
本试剂盒基于电泳迁移率变动实验(EMSA/Gel-Shift),结合化学发光检测技术,用于快速、高灵敏度地检测蛋白质与核酸(DNA/RNA)的特异性相互作用,如转录因子、核酸结合蛋白等的结合活性分析。试剂盒包含EMSA检测所需要的结合缓冲液,适用于基础研究、药物筛选及分子机制研究。
自备试剂
1. 探针
2. 提取用蛋白裂解液
3. 蛋白酶抑制剂
4. 带正电荷的尼龙膜或NC膜
5. EMSA电泳相关试剂
操作步骤(供参考):
1. 样品制备
(1)蛋白提取
a. 细胞样本:
收集1x107细胞,加入1ml 1xPBS洗涤一次,1000rpm离心5 min 去除上清,收集细胞;加入预冷裂解液1ml,同时按比例添加蛋白酶抑制剂,重悬细胞,剧烈涡旋10秒充分混匀,置于冰上30分钟,可每10分钟充分吹打一次;4℃,12000-16000g离心15分钟,将裂解产物(上清)转移到一个新的预冷管中,丢弃沉淀。
b. 动物组织:
将0.1g的组织切成非常细小的碎片,在冰浴条件下充分匀浆,用100um的细胞筛等收集细胞悬液,可加1xPBS冲洗;
4℃,1500g离心5min,弃上清收集细胞沉淀;沉淀中添加预冷的裂解液200ul(需添加蛋白酶抑制剂)可额外添加10ul DTT,重悬细胞后,剧烈涡旋10秒充分混匀,置于冰上30分钟,可每10分钟充分吹打一次;
4℃,12000-16000g离心15分钟,将裂解产物(上清)转移到一个新的预冷管中,丢弃沉淀。
c. 植物组织和不易匀浆的动物组织:
去植物样本约0.2g,液氮研磨;加入500-1000ul 预冷的裂解液(添加蛋白酶抑制剂)进行裂解,为了提高裂解效率,可加入 200ul 玻璃粉(可选)按照600-800g离心力充分震荡 30min,裂解完成后 12000 rpm,离心30min,吸取上清置于新的离心管中,弃去沉淀。
d. 原核/真核表达蛋白:
诱导蛋白表达并鉴定表达形式,要求表达的蛋白为上清表达;纯化诱导表达的蛋白;
e. 考马斯亮蓝或BCA测定蛋白样本浓度;
f. 样本分装为约40ul/管,保证每管含有5-25ug蛋白,液氮速冻后-80℃保存。
注意:避免反复冻融蛋白,分装保存于 -80°C。
(2) 探针标记
使用生物素或荧光标记的 DNA/RNA 探针。
注意:探针需退火形成双链,避免核酸酶污染。
2. 结合反应
(1) 反应体系配制
根据以下表格配置不同组别的EMSA反应:
|
组分 |
实验组 |
阴性对照 |
野生型冷探针对照 |
突变型冷探针对照 |
Super-shift |
终浓度 |
|
结合缓冲液 (5X) |
2 μL |
2 μL |
2 μL |
2 μL |
2 μL |
1x |
|
核蛋白提取物或纯化后的转录因子 |
1-5 μL |
- |
1-5 μL |
1-5 μL |
1-5 μL |
5-25μg |
|
生物素 标记探针 |
1 μL |
1 μL |
1 μL |
1 μL |
1 μL |
20 fmol |
|
竞争性探针(野生) |
- |
- |
- |
50-200x |
- |
1-4pmol |
|
竞争性探针(突变) |
- |
- |
50-200x |
- |
- |
1-4pmol |
|
目的蛋白 抗体 |
- |
- |
- |
- |
0.5-1 μL |
0.5-1ug |
|
ddH2O |
Up to 10 μL |
|||||
(2) 反应条件
按照以上顺序添加各试剂,加入未标记的探针或者抗体后混匀,并在PCR仪上37℃反应20min,让冷探针和抗体优先反应;
加入标记好的探针混匀,在PCR仪上37℃反应20min。
注:a.避免剧烈震荡,防止复合物解离。
b.如需做super-shift反应需自备抗体
c.若蛋白为原核表达,经纯化后每个反应体系终含量为:25ng-75ng
d.竞争性探针野生型和突变型的使用量均为生物素标记探针的50-200倍
3. DNA-EMSA非变性凝胶电泳配置
(1) 按照以下比例配置5% 非变性 PAGE 胶,总体积10ml(可按比例扩大)
|
组分 |
体积 |
|
5X TBE 缓冲液 |
1 ml |
|
ddH2O |
6.5 ml |
|
40% Acr/Bis(39:1) |
1.25 ml |
|
20% 甘油 |
1.25 ml |
|
10% APS |
75 μL |
|
TEMED |
5 μL |
依照上述次序依次加入各溶液,添加TEMED茜需混匀,添加TEMED后需要立即混匀并灌胶。灌胶时避免气泡并添加梳齿。
注:如发现制胶时很容易出现气泡,怎可对制胶玻璃板进行硅烷化处理。
(2) 上样与电泳
每孔加入 1 μL 10X 上样缓冲液(无色) 混合样品后进行上扬。
注:有些样品会受溴酚蓝影响,建议尽量使用无色的上样缓冲液
上样时在多余的上样孔中加入10ul稀释后的1x上样缓冲液 (蓝色)用于观察电泳进行的情况。
电泳条件:
电压:100 V(恒压),建议按照10V/cm进行电泳
缓冲液:0.5X TBE缓冲液
时间:电泳至溴酚蓝迁移至距离胶底部1/4处。
注:低温电泳(4°C)可减少复合物解离,建议在电泳过程中观察电泳温度,确保温度不超过30℃,如果温度升高需要适当降低电泳电压;
4. 转膜与检测
(1) 转膜(尼龙膜/硝酸纤维素膜)
a. 取一张和EMSA胶大小相近的尼龙膜或NC膜,剪刀剪角做好标记,用0.5X TBE buffer浸泡10min以上;
注:尼龙膜或者NC膜请勿用手接触,全程用镊子夹取,且不能接触样品位置
b. 取2张转印用滤纸,用0.5X TBE buffer 浸泡,滤纸大小与上面转印膜的大小相近或者略大
c. 将浸泡过的膜置于浸湿的滤纸上,小心的取出EMSA胶放置于膜上;
d. 建议用湿转的方式进行转膜,转膜条件:100 mA 恒流(或约390mA),4°C 转膜约60 min(缓冲液:0.5X TBE)。
e. 转膜结束后,用镊子小心取出膜,样品面向上,放置于干燥的滤纸上,轻轻吹掉表面比较明显的液体。立即进入交联(步骤(2))步骤。
注:
a. 转膜时间建议在30-60 min,如胶比较厚则应当适当延长转膜时间;
b. 结合膜的表面一定不能干燥!
c. 采用半干转膜仪建议按照390mA,30min。
(2) 交联
a. 利用紫外交联时建议交联条件为:120 mJ/cm²,选择紫外波长254nm,45-60s。
如无紫外交联仪可以使用普通的手提紫外灯进行交联,在距离膜3-375px的位置照3-15min,最佳交联条件需要根据标准品咨询过摸索;
b. 交联完成后进行检测,也可用保鲜膜包裹膜后置于室温干燥条件存放,可存放3-5天再进行检测。
(3) 封闭与孵育抗体
a. 封闭:取封闭液 (P1203) 15ml,加入适当容器中(如抗体孵育盒),再加入交联后的尼龙膜或者PVDF膜 室温摇育 15min。
注:确保封闭液是完全溶解的状态再使用。
b. 取7.5ul Streptavidin-HRP稀释于15ml 封闭液(按照1:2000稀释),将封闭后的膜加入封闭液中,置于摇床(水平或者侧摆皆可)室温孵育15 min。
注:Streptavidin-HRP稀释液可以重复使用3-4次,建议保存于-20℃,1月内使用完。
c. 洗涤:将5X 洗涤液25ml用蒸馏水或者milli Q稀释至 1X (稀释后体积25ml),取稀释后的洗涤液20ml洗膜,洗膜4 次(每次 5 min)。
d. 将膜转至含有20-25ml 检测平衡液的孵育盒中,在摇床上缓慢摇动5 min。
(4) ECL 显色
a. 取ECL发光液A液和B液各5ml按 1:1 混合 ECL A/B 液制成发光工作液。
注:发光液必须现用现配。
b. 将检测平衡液中的膜取出用吸水纸吸掉过多液体,置于保鲜膜或者干净的容器内,在膜表面添加发光工作液至覆盖全部的膜,室温静置2-3 min;
c. 将膜放于2片保鲜膜或者其他适当透光薄膜中间病故定于压片暗盒内部,用X光胶片压片1-5 min,显影定影,或者直接用化学发光图像分析系统中扫描成像。
三、注意事项
1、探针设计时要确保探针包含蛋白结合位点,长度建议 20-40 bp。
2、本产品仅限专业人员用于科学研究,不得用于临床诊断或治疗。
3、为了您的安全和健康,请佩戴一次性手套进行操作。
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申请记录
文献和实验Introduction to the EMSA (Gel Shift) Technique
or agarose gel electrophoresis. Because the rate of DNA migration is shifted or retarded upon protein binding, the assay is also referred to as a gel shift or gel retardation assay. Until conception of the EMSA by Fried and Crothers3 and Garner and Revzin
in the following order (in m l): 5X EMSA buffer: 4Water: to a final volume of 20 m lPolydI/dC: 1BSA: 132P probe: 1 (10K cpm)protein: 1-3 m llet the reaction stand for 10-15 min at room temp., then load 18 m l per lane on a 5% polyacrylamide gel. Run at 150 V for 2h
Gel Shift (EMSA)实验方法(Protocol)
There are multiple variations to this protocol, but we find that this one works well in all cases we tested. Reagents: 5X EMSA Buffer: 50mM HEPES (pH 7.9) 375 mM KCl 12.5 mM MgCl2 0.5 mM EDTA











