EPIS生命甲基化时钟检测
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EPIS生命甲基化时钟检测

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  • 深圳
  • 2025年07月16日
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      深圳普迪特生命科技有限公司

    • 服务名称

      EPIS生命甲基化时钟检测

        甲基化衰老时钟技术平台是一款专为科研院所与高校设计的高精度、高性价比表观遗传学检测解决方案。该平台基于BS转化 - PCR扩增子测序技术,通过靶向检测衰老相关CpG位点,实现单碱基分辨率的甲基化分析,且可以跨物种,适用于小鼠、犬类、兔子等模式生物,为衰老机制研究、器官特异性标记物筛选、癌症关联分析等提供精准数据支持。

    核心优势:

    优势维度 产品特点 传统方法
    检测精度 单碱基分辨率技术,重复性>95% 数据准确可靠,满足科研需求
    样本兼容性 支持血液、唾液、组织等多种样本 实验设计更灵活,应用场景广
    实验周期 标准化流程,7-10个工作日内完成 节省时间成本,加快研究进度
    数据分析 提供基础分析+高级定制分析选项 获得更全面的研究支持
    质量控制 全流程质控节点,多重验证机制 确保实验结果真实可信
    技术服务 专业团队提供实验设计指导 解决技术难题,优化研究方案
    性价比 同精度下成本优势明显 科研经费使用更高效

     

    实验流程:

     

    步骤 操作内容 技术要点 质量控制
    1. 样本接收 登记样本信息,核对样本类型和数量 检查样本标识完整性 记录样本状态,评估运输条件
    2. DNA提取 使用专用试剂盒提取DNA 优化裂解和纯化步骤 检测浓度(≥5 ng/μL)、纯度(OD260/280=1.8-2.0)
    3. 亚硫酸盐转化 对DNA进行化学修饰处理 控制反应温度和时间 检测转化效率(>95%)
    4. 靶向扩增 PCR扩增目标甲基化区域 设计特异性引物,优化退火温度 电泳检测扩增产物大小和特异性
    5. 测序建库 构建测序文库,上机测序 标准化建库流程,平衡文库浓度 检测文库质量(片段大小、浓度)
    6. 数据分析 原始数据过滤、比对和甲基化位点识别 使用专业软件分析甲基化水平 数据覆盖深度≥100X,重复性>95%
    7. 高级分析 差异甲基化分析、功能注释 定制化分析(如通路富集、聚类) 设置统计学显著性阈值(如p<0.05)
    8. 报告生成 整合数据,撰写检测报告 标准化报告模板,可视化展示 人工复核关键数据
    9. 结果交付 发送报告并提供技术咨询 支持多种格式(PDF/Excel) 客户确认报告完整性

     

    应用场景:

    • 衰老机制研究:构建器官特异性甲基化时钟,评估抗衰老干预效果。

    • 癌症关联分析:探索肿瘤微环境表观遗传变化,助力癌症风险预测模型开发。

    • 多组学整合:结合机器学习与深度学习算法,挖掘新型生物标记物。

    特色服务:

    • 定制化Panel设计:针对特定研究目标优化检测位点,支持多物种需求。

    • 基金申请支持:提供实验方案设计、样本量计算及数据分析代码包,助力科研立项。

    • 知识产权保障:拥有多项专利技术,数据可追溯,符合GLP标准。

    为您的科研赋能,让衰老研究更精准、更高效!

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    该产品被引用文献
    1. Horvath, S. (2013). DNA methylation age of human tissues and cell types. Genome Biology, *14*(10), R115.

    2. Liu, Z., Leung, D., Thrush, K., et al. (2020). Underlying features of epigenetic aging clocks in vivo and in vitro. Aging Cell, *19*(10), e13229.

    3. Yang, Z., Wong, A., Kuh, D., et al. (2016). Correlation of an epigenetic mitotic clock with cancer risk. Genome Biology, *17*(1), 205.   

    1. Masser, D. R., Berg, A. S., & Freeman, W. M. (2013). Targeted DNA methylation analysis by next-generation sequencing. Journal of Visualized Experiments, *76*, e50242.

    2. Olova, N., Krueger, F., Andrews, S., et al. (2018). Comparison of whole-genome bisulfite sequencing library preparation strategies identifies sources of biases affecting DNA methylation data. Genome Biology, *19*(1), 33

     

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