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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 规格:
48T
我司销售各类ELISA试剂盒,包括人ELISA试剂盒、小鼠ELISA试剂盒、大鼠ELISA试剂盒、植物ELISA试剂盒等.
试剂盒规格:96T/48T
96T可以做84个标本,12个标准对照
48T可以做42个标本,6个标准对照
保存:2-8℃
有效期:6个月
检测动物种类:
人、大鼠、小鼠、豚鼠、兔、植物类等
检测标本类型:
血清、血浆、组织匀浆液、细胞培养上清液、尿液、唾液、关节滑液、肺泡灌洗液等
检测指标:
趋化因子、生长因子、抑制因子、炎症因子、营养因子、脂肪因子、血管生成因子、动脉粥样硬化因子、基质金属蛋白酶等
实惠点:
选用进口材料:的技术支持,可靠的实验结果,的产品质量,低廉的市场价格,实惠、经济、可靠。
优点:
高灵敏度、高精密度,高重现性,高特异性。不仅有高可靠性的实验结果,更为您节约实验成本和时间。
技术服务:
从标本采集、保存、预试验、实验、数据分析等全实验过程提供全面的技术指导
ELISA试剂盒样本处理及要求:
1. 血清:室温血液自然凝固10-20分钟,离心20分钟左右(2000-3000转/分)。仔细收集上清,保存过程中如出现沉淀,应再次离心。
2. 血浆:应根据标本的要求选择柠檬酸钠作为抗凝剂,混合10-20分钟后,离心20分钟左右(2000-3000转/分)。仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应该再次离心。
3. 尿液:用无菌管收集,离心20分钟左右(2000-3000转/分)。仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。胸腹水、脑脊液参照实行。
4. 细胞培养上清:检测分泌性的成份时,用无菌管收集。离心20分钟左右(2000-3000转/分)。仔细收集上清。检测细胞内的成份时,用PBS(PH7.2-7.4)稀释细胞悬液,细胞浓度达到100万/ml左右。通过反复冻融,以使细胞破坏并放出细胞内成份。离心20分钟左右(2000-3000转/分)。仔细收集上清。保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。
5. 组织标本:切割标本后,称取重量。加入一定量的PBS,PH7.4。用液氮迅速冷冻保存备用。标本融化后仍然保持2-8℃的温度。加入一定量的PBS(PH7.4),用手工或匀浆器将标本匀浆充分。离心20分钟左右(2000-3000转/分)。仔细收集上清。分装后一份待检测,其余冷冻备用。
6. 标本采集后尽早进行提取,提取按相关文献进行,提取后应尽快进行实验。若不能马上进行试验,可将标本放于-20℃保存,但应避免反复冻融.
7. 不能检测含NaN3的样品,因NaN3抑制辣根过氧化物酶的(HRP)活性。
ELISA试剂盒,品质保证!售前售中售后全程提供技术指导,有质量问题免费包退包换!提供免费代测服务,代测时间为7-10天,提供原始数据,分析数据!
ELISA试剂盒操作注意事项:
● 试剂应按标签说明书储存,使用前恢复到室温。稀稀过后的标准品应丢弃,不可保存。
● 实验中不用的板条应立即放回包装袋中,密封保存,以免变质。
● 不用的其它试剂应包装好或盖好。不同批号的试剂不要混用。保质前使用。
● 使用一次性的吸头以免交叉污染,吸取终止液和底物A、B液时,避免使用带金属部分的加样器。
● 使用干净的塑料容器配置洗涤液。使用前充分混匀试剂盒里的各种成份及样品。
● 底物A应挥发,避免长时间打开盖子。底物B对光敏感,避免长时间暴露于光下。避免用手接触,有毒。实验完成后应立即读取OD值。
● 加入试剂的顺序应一致,以保证所有反应板孔温育的时间一样。
● 按照说明书中标明的时间、加液的量及顺序进行温育操作。
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文献和实验小鼠凝血因子ⅩⅢ(ⅩⅢ) 酶联免疫 分析( ELISA ) 试剂 盒使用说明书 本试剂仅供研究使用 目的:本试剂盒用于测定小鼠血清,血浆及相关液体样本中 凝血因子ⅩⅢ(F ⅩⅢ ) 含量。 实验原理 : 本试剂盒应用双抗体夹心法测定 标本 中 小鼠凝血因子ⅩⅢ(F ⅩⅢ ) 水平。用纯化的 小鼠凝血因子ⅩⅢ(F ⅩⅢ ) 抗体包被微孔板,制成固相抗体,往包被单抗的微孔中依次加入 凝血因子ⅩⅢ(F ⅩⅢ
免疫细胞膜分子(一):主要组织相容性抗原-- MHC基因结构
称为Ⅱ类分子即Ia抗原。Ⅲ类座其编码的分子称为Ⅲ类分子(包括血清因子、补体分子及TNF等)。Ⅳ类座位于D座右侧,是否属于H-2复合体尚未确定,但与H-2连锁,它包括Tla座和Qa座,其编码的分子称为Ⅳ类分子(Tla分子和Qa分子)。 1.Ⅰ类基因(H-2K,H-2D基因) Snell于50年代偶然发现H-2基因座不是由一个 基因组 成,他观察到二个品系小鼠(k/k和d/d)杂交的子代(F1:k/d)鼠能接受第三个品系小鼠,(a/a)的肿瘤
亦称视网膜动作电位图。网膜受光照时产生电位,把这种电位记录下来便是视网膜电位图,简称ERG。勿从杜波依斯-雷蒙(E.H.Dubois-Reymo-nd,1849)发现网膜静止电流和霍姆格伦(F.Holm-grem,1866)发现动作电流以来,为了探讨网膜的视觉机制把ERG作为有用的客观指标,对哺乳类、两栖类、爬行类、鱼类、头足类等动物进行了广泛的研究。把网膜放在黑暗中发现,产生的静止电位的极性是:脊椎动物在角膜侧为正,而头足类和其它少数无脊椎动物在巩膜侧为正,当网膜受光照时
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