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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
实验准备
- 动物选择与适应:选择健康小鼠(常用C57BL/6J或特定糖尿病模型如db/db小鼠),实验前需适应环境至少1周以减少应激反应。
- 禁食处理:禁食时间通常为4-6小时(部分研究为2-5小时以降低低血糖风险),禁食期间允许自由饮水。具体时间需根据品系和实验设计调整。
- 器材与试剂:准备血糖仪、血糖试纸、胰岛素溶液(人重组胰岛素或动物胰岛素,浓度0.5-1.0 U/kg体重,需用生理盐水稀释)、50%葡萄糖溶液(备用急救)。
实验步骤
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称重与基础血糖测量:
- 称量小鼠体重,计算胰岛素剂量(常用0.5-1.0 U/kg,需通过预实验优化,如敏感模型可能需更低剂量0.25 U/kg)。
- 剪去尾尖约1-2 mm,弃第一滴血,取第二滴血测量空腹血糖(t=0 min)。
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胰岛素注射:
- 通过腹腔注射胰岛素溶液,注射体积通常为5-10 μL/g体重。
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血糖监测时间点:
- 注射后分别在15、30、45、60、90、120分钟采集尾静脉血测量血糖。关键时间段为前20-30分钟,此时血糖下降斜率最能反映胰岛素敏感性。
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低血糖处理:
- 若血糖低于4 mmol/L(约72 mg/dL)或小鼠出现颤抖等低血糖症状,立即注射50%葡萄糖溶液(腹腔注射)。
数据分析
- 血糖变化曲线:绘制血糖随时间变化的曲线,重点关注前30分钟的下降速率。
- 曲线下面积(AUC) :计算反向AUC(即曲线以上面积),AUC越小表明胰岛素敏感性越高。
- 血糖下降幅度:理想情况下,注射后30分钟血糖应下降至基础值的40%-50%,若过度下降(如>60%)可能触发反调节反应(如胰高血糖素分泌)。
关键注意事项
- 剂量优化:不同品系或模型(如高脂饮食诱导的胰岛素抵抗小鼠)需通过预实验确定最佳剂量,避免高剂量导致低血糖休克。
- 应激控制:
- 实验前进行适应性训练(如模拟采血、注射操作),以减少应激性高血糖。
- 保持环境温度稳定(22-25℃),避免低温增加代谢率。
- 时间点选择:超过120分钟的血糖变化可能与胰岛素无关,建议在2小时内完成监测。
- 数据一致性:同一实验中需固定采血部位(尾尖或侧静脉)和操作人员,减少误差。
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