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武汉华尔纳生物科技有限公司
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GC-2
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类别 | 小鼠细胞系 |
生长特性 | 贴壁 |
培养体系 | DMEM(高糖)+10%FBS |
传代方法 | 1:2传代 |







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文献和实验讨 论 1.小鼠生殖细胞单细胞悬液制备的影响因素 良好单细胞悬液的制备必须首先考虑所用小鼠的日龄。因为随动物日龄的增加,精原细胞开始分化形成各级生殖细胞,其绝对数目及所占生殖细胞的比例都逐渐下降,会给分离纯化增加困难。在成年小鼠的睾丸中,A型精原细胞只占所有精原细胞的1.25%,占未分化精原细胞的10.6%,仅占所有生殖细胞的0.03%[5] 。因而用来分离精原细胞的动物的日龄应较小为好。一般小鼠选用生后8d的[2] ,但也有人选用生后10d的;大鼠则选用生后9d的[6]
Dev Cell 封面文章:林鑫华团队揭示染色质重塑因子 Znhit1 在减数分裂启动中的核心作用
的重要形式。值得注意的是,林鑫华团队构建了染色质重塑因子 Znhit1 的条件敲除小鼠,前期一系列工作相继证实 Znhit1 调控肠道干细胞和造血干细胞的命运决定,维持组织稳态,基于此提出了染色质重塑整合细胞信号调控谱系发育的新模型 [2-4]。 图 1:本研究被选做 Developmental Cell 封面论文 在该项工作中,研究者在小鼠胚胎期精子发生过程中敲除 Znhit1,导致雄性生殖细胞发育停滞在精原细胞阶段,减数分裂无法启动,进而精母细胞无法形成,最终导致小鼠形成无精症。Znhit1
min离心10min,沉淀细胞,弃上清。细胞重悬于0.5ml含0 5%BSA的1640培养液中。将各管细胞分别滴片,HE染色,光学显微镜下检测细胞的形态结构特征及均一程度,以确定细胞的类型及纯度。合并同类细胞,取1滴细胞悬液,加10μl0.4%台盼蓝,计细胞总数及死亡细胞百分比。最后调整细胞浓度为106个/ml。滴片,染色。显微镜下任选5个视野,计算细胞纯度。6、细胞的贴壁培养及纯化经沉降分离的精原细胞中混有少量支持细胞及间质细胞,将此细胞悬液接种到一次性无菌培养瓶中,于37℃、5%CO2及饱和








