MPC多光子显微镜

LaVision双光子显微镜：多线扫描双光子成像

摘要：高空间分辨率和低的光损伤风险使得双光子激光扫描显微镜TPLSM成为生物功能成像的选择。但是，如神经钙离子调控等功能性动态研究通常也需要一个高的时间分辨率。目前，通过线扫描可以获取速度的提升，但是将结构的空间分辨率限制在一条轴上。为克服高空间分辨率和高时间分辨率间的空白，我们改进了TPLSM，使用一个多倍分光器来在样品中产生多个激光焦点。通过使用一个电子倍增相机检测这些焦点释放的荧光，它可以支持同时进行多条线扫描。除了多线扫描，高达64束的阵列也允许使用X-Y扫描模式去以高的帧速获取

Lavision双光子共聚焦显微镜应用案例：毛囊再生过程活体成像

摘要 组织的发生与再生依赖于细胞-细胞间相互作用和指向干细胞的信号以及它们的直接增殖。但是，引导组织适当再生的细胞行为还没有被很好的理解。运用一种新的，非侵入的双光子成像技术，我们研究了活鼠随时间推移的生理性毛囊再生。通过这种方法，我们监测了真皮层干细胞和它们的后代在生理性毛囊再生过程中的行为，并指出了间充质对它们行为的影响。承接早先的研究，干细胞在毛发再生的初始阶段处于静止状态而它们的后代处于更活跃的分生状态。除了细胞分化之外，后代细胞的协调运动也允许毛囊的快速扩张。最后，我们通过切蚀目标

Nature Methods｜全新微创活体透明化方法与成像系统突破活体研究的瓶颈

率、降低光散射并保持渗透压，开发出 SeeDBLive 活体透明化技术。该技术可保留细胞生理活性，实现哺乳动物脑切片与活体小鼠大脑的深层高分辨共聚焦、双光子成像，支撑在体钙成像、电压成像等功能机制研究。 研究借助 Evident 双光子显微镜与 FV5000 共聚焦显微镜开展验证测试，高性能物镜保障了深层组织高清成像，体现整套成像方案的技术优势。实验证实，胞外介质折射率调至约  1.363–1.366 时组织透明效果最佳，证明胞内外折射率匹配是减少光散射的关键。该原理同样应用于物镜设计