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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
一、实验前准备
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动物选择:
常用SD大鼠或BALB/c小鼠,体重范围根据实验设计调整(大鼠一般180-250g,小鼠18-25g)。实验前需禁食12-24小时,自由饮水以排空肠道。 -
试剂配制:
- TNBS溶液:将TNBS溶解于40%-50%乙醇中(乙醇作为有机溶剂破坏黏膜屏障),浓度根据动物种属调整(大鼠常用50mg/kg TNBS,小鼠125mg/kg)。
- 麻醉剂:常用异氟烷或乙mi麻醉动物以减轻操作应激。
二、造模操作步骤
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灌肠给药:
- 将动物麻醉后,用直径约2mm的软质导管(如硅胶管)经肛门插入直肠,插入深度约大鼠8cm、小鼠4cm,确保溶液分布于结肠。
- 缓慢注入预先配置的TNBS/乙醇溶液(大鼠0.25-1mL,小鼠0.1-0.2mL)。
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体位处理:
注射后立即将动物倒置(头朝下)30秒至1分钟,防止溶液回流,确保TNBS与结肠黏膜充分接触。 -
术后护理:
- 动物恢复期间提供含蔗糖或生理盐水的饮水,防止脱水。
- 每日监测体重、粪便性状(血便、稀便)、活动状态等疾病活动指数(DAI)。
三、模型验证与评价
- 时间节点:
- 急性期:造模后3-7天出现典型症状(体重下降、血便)。
- 慢性期:持续至第15天左右,评估结肠长度缩短、溃疡面积及组织病理学变化。
- 评价指标:
- 宏观指标:结肠长度、溃疡指数、肠壁增厚程度。
- 微观指标:结肠组织HE染色(黏膜坏死、炎症细胞浸润)、MPO(髓过氧化物酶)活性检测。
- 免疫指标:Th1/Th2细胞因子(如IFN-γ、IL-4)或Th17/Treg平衡分析。
四、注意事项
- 剂量优化:不同种属和品系对TNBS敏感性差异大,需预实验确定最佳剂量(如小鼠需更高TNBS浓度)。
- 乙醇浓度:乙醇浓度过高可能导致黏膜过度损伤,推荐40%-50%乙醇作为溶剂。
- 操作技巧:灌肠时避免机械损伤肠道,导管需润滑后缓慢插入。
五、模型特点
- 免疫机制:TNBS作为半抗原与宿主蛋白结合引发Th1/Th17型免疫反应,模拟人类克罗恩病特征。
- 局限性:技术操作要求高,个体差异较大,需结合代谢组学或免疫分析提高模型稳定性。
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