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999
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上海圻明生物
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猴外周血单个核细胞分离液KIT
猴外周血单个核细胞分离液KIT欢迎来电咨询。
【实验前准备】
1. 适用仪器
最大离心力可达 1200g 的水平转子离心机。
(离心机使用时调整为慢升慢降(具体参数请咨询离心机厂家)建议升速(指开始启动→达到设定离心力)的时间、降速(指设定离心时间完成→机器完全停止)时间均控制在 3 分钟左右。)
2. 实验最佳分离时间
为获得最佳的实验结果,最好在取样 2h 内进行实验,样品存放时间越长,细胞分离效果越差。样品放置超过 6h 后分离效果更差甚至不能达到分离目的。
3. 分离液的使用环境
a. 分离液需常温(37℃-15℃)避光保存,严禁冷藏冷冻保存;
b. 使用时严格遵守无菌操作规范(超净工作台或生物安全柜内),并在 18℃-22℃环境温度下进行操作,20℃条件下分离效果最佳。超出此温度范围,有可能使分离液密度发生改变,造成分离效果不佳。
4. 无菌离心管
本试剂盒可保证目的细胞的提取率大于 80%,不是纯度。如需获得高纯度目的细胞,请配合免疫磁珠分选。本试剂盒可减少磁珠的使用量,减少成本。

【检验方法】
全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃(试剂需要复温。夏季 20℃,冬季 25℃。)的条件下进行。
【组织样本单细胞悬液的制备】
1. 取组织块称重后,用眼科剪刀无菌操作,将组织剪成小块。
2. 将组织块放在 70µm 细胞筛网(产品编号:TBDTM-SC,需要另购)上,用研磨器反复揉搓,边揉搓边加入匀浆冲洗液 (以 0.1g 组织为例,约加 5-8ml),使细胞全部通过筛网冲到离心管中。
注:需要让细胞形成单细胞悬液冲到离心管中,而不是被研磨挤压到离心管中。
目的:使组织形成单个的细胞,而不是成团或碎片组织。单个的细胞更易分离。
3. 弃去筛网,组织研磨液经 450g,离心 10min,弃上清。
4. 用组织样本稀释液重悬组织细胞,将细胞悬液细胞浓度调整为 2×108--1×109/ml (以0.1g 组织为例,约使用 1ml 组织样本稀释液重悬细胞),备用。
单核细胞层和单个核细胞层混在一起不能分开
1. 吸取全部白色环状细胞层,清洗后用组织样本稀释液 1-2ml 重悬细胞。
2. 使用分离液 2 重新提取淋巴细胞。
3. 取 15ml 离心管,加入 4ml 分离液 2,将用组织样本稀释液重悬的 1-2ml 细胞缓慢加于
分离液之液面上,400g,离心 20min。
4. 离心后,离心管可分为 4 层,第一层稀释液层,第二层单核细胞层,第三层分离液层,
第四层淋巴细胞层。
5. 可重复检验方法中的目的细胞洗涤方法,获得淋巴细胞


可能存在的问题及解决方法】
1. 由于血液粘度、细胞密度等差异可能造成的问题及解决方案如下表所示:
出现情况 出现原因 建议解决方案
离心后目的细胞存在于血浆层或稀释液层 转速过小或离心时间过短
适当增减转速
离心后目的细胞存在于分离液中 转速过大或离心时间过长
离心后白环层弥散 细胞密度过大
调整细胞密度
离心后白环层太浅或看不见 细胞密度过
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死亡,并且运输难度大。对于这些考虑,组织保存液MACS组织保存液(130-100-008)可以使新鲜固体组织在2-8 ℃ 保存 48 小时并避免细胞激活和凋亡等背景效应。 2. Buffer配制对酶活的影响? 在组织解离过程中,缓冲液(Buffer)的配制对酶活性有着至关重要的影响。配制不当的缓冲液会显著降低酶活,导致解离效率低下、细胞损伤增加或解离失败。 常见影响酶活性的关键因素:pH值,离子种类与强度,渗透压,温度,其他添加剂等。 按照说明书需要精心配制buffer,确保其维持最佳的pH、离子环境
猴 B病毒 (HS) 酶联免疫 分析( ELISA ) 试剂 盒使用说明书 本试剂仅供研究使用 目的:本试剂盒用于测定猴血清,血浆及相关液体样本中 B病毒(HS) 的 含量。 实验原理 : 本试剂盒应用双抗体夹心法测定 标本 中 猴 B病毒 (HS) 水平。用纯化的 猴 B病毒 (HS) 抗体包被微孔板,制成固相抗体,往包被单抗的微孔中依次加入 B病毒 (HS) , 再与HRP 标记的 B 病毒 (HS) 抗体结合,形成
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