猪瘟病毒/猪蓝耳病毒通用型/口蹄疫病毒通用型/伪狂犬-病毒野

【产品名称】
商 品 名 称 ： 猪瘟病毒/猪蓝耳病毒通用型/口蹄疫病毒通用型/伪狂犬-病毒野毒株 （CSFV/PRRSV-U/FMDV-U/PRV-gE）核酸检测试剂盒（四重荧光PCR法）
Name ： Classical Swine Fever Virus ， Porcine Respiratory and Reproductive Syndrome Virus, Foot-and-mouth Disease Virus and Pseudorabies -Virus gE gene Detection Kit （Real-Time PCR Method）
【包装规格】50T/盒
【预期用途】 猪瘟是由猪瘟病毒（CSFV）感染猪体后引起猪高热稽留、全身广泛性出血及母猪繁殖障碍等一系列症状的疾病。猪蓝耳病是由猪蓝耳病毒（PRRSV）诱发，以母猪发热、厌食和流产等繁殖障碍以及仔猪的呼吸道症状和高死亡率为特征。口蹄疫是由口蹄疫病毒（FMDV）引起的一种急性、热性、高度接触性传染病。伪狂犬-病病   毒（Pseudorabies- virus，PRV）是引起牛、羊、猪、犬和猫等多种家畜和野生动物发热、奇痒（猪除外）及脑脊髓炎为主要症状的疱疹病毒。本试剂盒适用于检测标本中的猪瘟病毒、猪蓝耳病病毒、口蹄疫病毒和伪狂犬-病毒    野毒株，用于以上 4 种类型病毒感染的辅助诊断及流行病学调查。
【检验原理】 本试剂盒分别对猪瘟病毒、猪蓝耳病病毒、口蹄疫病毒和伪狂犬-病毒野毒株的基因保守区设计特异性引物和   探针，用一步法荧光 RT-PCR 技术分别对猪瘟病毒、猪蓝耳病病毒、口蹄疫病毒和伪狂犬-病毒野毒株的核酸进行体外扩增检测，用于科研实验中对可疑感染病料的病原学检测。

【试剂组成】

包装规格	50T/盒
CSFV/PRRSV-U/FMDV-U/PRV-gE 反应液	500μL×2 管
酶液	50μL×1 管
CSFV/PRRSV-U/FMDV-U/PRV-gE 阳性质控品	50μL ×1 管
阴性质控品	250μL ×1 管

说明：不同批号的试剂盒组分不可交互使用。
【储存条件及有效期】 -20℃±5℃，避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次，有效期 12 个月。
【适用仪器】 ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
【标本采集】 病死或扑杀猪，取淋巴结、脾脏、肺脏、扁桃体等组织；待检活猪，可取鼻咽拭子样本或用注射器取血 5mL 至无菌离心管。
【保存和运输】 采集或处理好的样品在 2℃~8℃条件下保存应不超过 24 h；若需长期保存，应放置-70℃以下保存，冻融不超过 3 次。

【使用方法】
1.    样品处理（样本处理区）
1.1    样本前处理 组织样品：称取约 1g，剪碎混匀后于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨，待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中，8000rpm 离心 2min，取上清液 200μL 用于后续；鼻咽拭子样本：加入 500 L 无菌 PBS,充分涡旋震荡 1min,反复挤压拭子,弃去拭子后 3 000 r/min 离心 5 min,取上清 200μL 用于后续；血液样品取血清 200μL 用于后续提取。
1.2    核酸提取 推荐采用公司生产的核酸提取或纯化试剂（磁珠法或离心柱法）进行核酸提取，请按照    试剂说明书进行操作。
2.    试剂配制（试剂准备区） 根据待检测样本总数，设所需要的 PCR 反应管管数为 N（N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照；反应管数每满 10 份，多配制 1 份），每测试反应体系配制如下表：

试剂	CSFV/PRRSV-U/FMDV-U/PRV-gE 反应液	酶液
用量（样本数为 N）	19μL	1μL

将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中，20μL/管。
3.    加样（样本处理区） 将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL，分别加入相应的反应管中，盖好管盖，混匀，短暂离心。
4.    PCR 扩增（核酸扩增区）
4.1    将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内；
4.2    设置好通道、样品信息，反应体系设置为 25μL；荧光通道选择： 检测通道（Reporter Dye）FAM、VIC、TEXAS RED、CY5， 淬灭通道（Quencher Dye）选择 NONE，ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光，选择 None 即可。
4.3    推荐循环参数设置：

步骤	循环数	温度	时间	收集荧光信号
1	1 cycle	50℃	10min	否
2	1 cycle	95℃	2min	否
3	45 cycle	95℃	15sec	否
		60℃	30sec	是

5.    结果分析判定
5.1    结果分析条件设定（请参照各仪器使用说明书进行设置，以分析 ABI7500 仪器为例） 反应结束后自动保存结果，根据分析后图像调节 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值（用户可根据实际情况自行调整，Start 值可设在 3～15、End 值可设在 5～20，使阈值线位于扩增曲线指数期，阴性质控品的扩增曲线平直或低于阈值线），点击 Analyze 自动获得分析结果。
5.2    结果判断 FAM 通道为猪瘟病毒检测结果，VIC 通道为猪蓝耳病毒检测结果，CY5 通道为口蹄疫病毒检测结果，TEXAS RED 通道为伪狂犬-病毒野毒株检测结果 阳性：检测通道 Ct 值≤40，且曲线有明显的指数增长曲线； 阴性：样本检测结果 Ct 值>40 或无 Ct 值。
5.3    质控标准 阴性质控品：无特异性扩增曲线或无 Ct 值显示； 阳性质控品：扩增曲线有明显指数增长期，且 Ct 值≤32；以上条件应同时满足，否则实验视为无效。
6.    检测方法的局限性
1.    样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关；
2.    样本提取过程中没有控制好交叉污染，会出现假阳性结果；
3.    阳性对照、扩增产物泄漏，会导致假阳性结果；
4.    病原体在流行过程中基因突变、重组，会导致假阴性结果；
5.    不同的提取方法存在提取效率差异，会导致假阴性结果；
6.    试剂运输，保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降，出现假阴性或定量检测不准确的结果；
7.    本检测结果仅供参考，如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
【注意事项】
1.    所有操作严格按照说明书进行；
2.    试剂盒内各种组分使用前应自然融化，完全混匀并短暂离心；
3.    反应液应避光保存；
4.    反应中尽量避免气泡存在，管盖需盖紧；
5.    使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服；
6.    样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行，以免交叉污染；
7.    实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器；
8.    试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

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