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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
290
- 英文名:
Rift Valley -fever Virus Detection Kit
- 保质期:
12个月
- 供应商:
上海烜雅生物科技有限公司
- 保存条件:
-20℃
- 规格:
50T
商品名称:裂谷-热病毒(RVFV)核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)
Name :Rift Valley- fever Virus Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包装规格】25T/盒、50T/盒
【预期用途】 裂谷热(Rift Valley fever)是由裂谷-热病毒(Rift Valley -fever virus, RVFV)引起的急性传染病,经蚊虫叮咬和直接接触传播,能感染多种脊椎动物。人感染裂谷热后临床表现为突然发热、头痛、肌肉关节痛等,重症病例表现为多脏器受累。裂谷热主要在非洲流行,亚洲中东地区也有病例报道,我国于 2016 年 7 月 23 日通报了首例输入性裂谷热病例。裂谷-热病毒属布尼亚病毒科白蛉病毒属,为有包膜单股 RNA 病毒,直径约 90~110 nm, 基因组为分 L、M、S 共 3 个节段,目前国内采用实时荧光 PCR 等方法对裂谷热病例进行核酸检测。 本试剂盒适用于血液,死亡动物的肝脏、脾脏、大脑,流产胎儿等物质中裂谷-热病毒RNA,适用于裂谷-热病毒感染的诊断、检疫、检测、监测和流行病学调查等。
【检验原理】 本试剂盒针对裂谷-热病毒基因中的高度保守区域设计特异性引物和探针,用一步法荧光 RT-PCR 技术对裂谷-热病毒的 RNA 进行体外扩增检测,用于科研实验中对可疑感染病料的病原学检测。

【试剂组成】
| 包装规格 | 50T/盒 |
| RVFV 反应液 | 500μL×2 管 |
| 酶液 | 50μL×1 管 |
| RVFV 阳性质控品 | 50μL ×1 管 |
| 阴性质控品 | 250μL ×1 管 |
【储存条件及有效期】 -20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。
【适用仪器】 ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler480、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
【标本采集】 按 GB/T 18088 规定,逐头进行采样,并按规定填写《送样单》送实验室。采集发热期动物的抗凝血 5 mL。对怀疑死于该病的动物采集死亡动物的肝脏、脾脏、大脑,流产胎儿 5g。
【保存和运输】 制备的样本在 2℃~8℃条件下保存应不超过 24 h,若需长期保存应置-70℃以下,但应避免反复冻融(冻融不超过 3 次)。

【使用方法】
1. 样品处理(样本处理区)
1.1 样本前处理 血液用常规方法分离血清;死亡动物的肝脏、脾脏、大脑,流产胎儿经剪碎、研磨,加生理盐水,冻融两次,4℃过夜,离心取澄清样品上清液。
1.2 核酸提取 推荐采用上海烜雅生物科技有限公司生产的核酸提取或纯化试剂(磁珠法或离心柱法)进行核酸提取, 请按照试剂说明书进行操作。
2. 试剂配制(试剂准备区) 根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;反应管数每满 10 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:
| 试剂 | RVFV 反应液 | 酶液 |
| 用量(样本数为 N) | 19μL | 1μL |
3. 加样(样本处理区) 将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀, 短暂离心。
4. PCR 扩增(核酸扩增区)
4.1 将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
4.2 设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL;荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM, 淬灭通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光, 选择 None 即可。
4.3 推荐循环参数设置:
| 步骤 | 循环数 | 温度 | 时间 | 收集荧光信号 |
| 1 | 1 cycle | 50℃ | 10min | 否 |
| 2 | 1 cycle | 95℃ | 2min | 否 |
3 | 45 cycle | 95℃ | 15sec | 否 |
| 60℃ | 30sec | 是 |
5.1 结果分析条件设定(请参照各仪器使用说明书进行设置,以分析 ABI7500 仪器为例) 反应结束后自动保存结果,根据分析后图像调节 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值(用户可根据实际情况自行调整,Start 值可设在 3~15、End 值可设在 5~20,使阈值线位于扩增曲线指数期,阴性质控品的扩增曲线平直或低于阈值线),点击 Analyze 自动获得分析结果。
5.2 结果判断 阳性:检测通道 Ct 值≤40,且曲线有明显的指数增长曲线; 阴性:样本检测结果无 Ct 值,且无特异性扩增曲线; 可疑:样本检测结果 40<Ct 值≤45,建议重复检测,如果检测通道仍为 40
6 检测方法的局限性
1. 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;
2. 样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;
3. 阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;
4. 病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;
5. 不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;
6. 试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;
7. 本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
【注意事项】
1. 所有操作严格按照说明书进行;
2. 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
3. 反应液应避光保存;
4. 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
5. 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
6. 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
7. 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
8. 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

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