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上海冠导生物工程有限公司
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≥100瓶
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常温运输【复苏细胞】或干冰运输【冻存细胞】
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22RV1人前列腺癌传代细胞种子库|送STR图谱
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1*10(6)Cellls/瓶
"22RV1人前列腺癌传代细胞种子库|送STR图谱
传代方法：1:2-1:4(首次传代建议1:2)
生长特性：贴壁生长
换液频率：每周2-3次
背景资料：２２RV１是来自异种移植(在阉割引起前列腺癌衰退又在其父亲的雄性激素信赖型CWR２２嫁接后复发的小鼠中连续传代)的人前列腺癌上皮细胞系。此细胞系表达前列腺特异抗原。二羟基睾丸脂酮轻微刺激细胞生长，经westernblot检测溶解产物与抗雄性激素受体抗体起免疫反应。EGF刺激细胞生长，但TGFβ-１不能抑制细胞生长。该细胞在裸鼠中成瘤。
细胞常规培养传代流程(请严格遵照无菌操作)：１)吸出原培养瓶中的培养基，PBS缓冲润洗细胞两次，加２-３ml ０.２５%胰酶进行消化细胞(注意把握消化时间，通常控制在１-２min)；２)镜下观察消化情况，在细胞边缘缩小，贴壁松动时(不建议消化到细胞漂浮)去掉胰酶，加６-８ml完全培养基，轻轻吹打细胞层，尽量把细胞层吹落，吹散；３)取部分细胞悬转移到新的培养皿/瓶中，添加适当的完全培养基，把细胞悬打匀，于培养箱中培养；４)注意培养基PH值变化情况，定期换(每周２-３次)，待细胞密度达到８０%以后重复１项操作或者冻存；别注意：(如使用公共实验室或者初次接触细胞培养，建议添加双抗培养)１)收到细胞后请尽快更换为含１５%血清的新鲜培养基，如因殊情况需要继续使用原瓶，请在原瓶培养基中额外添加１０%的血清，(原瓶培养基的继续使用时间Zui长不宜超过７２小时)；２)贴壁细胞收到当天切忌立刻消化，请将细胞换后放置培养箱孵育到第二天再做消化传代，请YOU先选择直径６cm的培养皿进行传代培养；３)如签收时出现培养瓶壁破裂，漏等情况请及时做HAO照片记录并联系实验室。
DHL8 Cells;背景说明：弥漫大B淋巴瘤；腹腔积液转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明;相关产品有：Rat Chondrosarcoma Swarm Cells、Hu-P-T4 Cells、SBC5 Cells
Lewis Lung Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：WEHI231 Cells、UMNSAH/DF#1 Cells、LIXC-002 Cells
CHOS Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：MCF 7 Cells、HBE 135-E6E7 Cells、TYKnu Cells
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22RV1人前列腺癌传代细胞种子库|送STR图谱
产品包装形式：复苏细胞：T25培养瓶(一瓶)或冻存细胞：1ml冻存管(两支)
来源说明：细胞主要来源ATCC、DSMZ等细胞库
物种来源：Human\Mouse\Rat\Others
U343 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明;相关产品有：HEK AD293 Cells、FO [Mouse myeloma] Cells、SKNBE(2) Cells
B16-F1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
hTERTHME1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：SK-MEL-3 Cells、PaCa2 Cells、LY-R Cells
H2291 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：４传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：RGC-6 Cells、H841 Cells、HCV-29 Cells
形态特性：上皮细胞样
22RV1人前列腺癌传代细胞种子库|送STR图谱
贴壁细胞的传代培养，详细步骤如下：首先倒掉培养基，在这一步骤可以收集一些细胞上清做支原体检测；加入胰蛋白酶，一般T25是加2mL，盖好瓶盖，摇晃T25培养瓶，使胰蛋白酶均匀覆盖在细胞表面，放入培养箱2-3min，期间可在显微镜下观察，看到大部分细胞变圆，即可放入超净台，加入2倍的完全培养基，这里就是加4mL培养基，终止消化；将含有胰蛋白酶，细胞和培养基一起转移到离心管中，1000rpm/3min离心，去掉上清；新鲜的完全培养基重悬，根据细胞的生长特性和后续的实验需求进行传代，比如我养的Hepa1-6就长的比较快，不是着急用的话，我就会按1E6个细胞/T75培养瓶进行传代；但如果后两天要用，就会适当多传一点；还可通过显微镜计数后，直接用于细胞铺板，继续后续的实验。
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在细胞传代过程中，离心操作后的上清液处理是一个关键步骤，而关于是用移液枪吸走还是直接倒掉上清液，需要综合多方面因素来考量。使用移液枪吸走上清液具有一定的优势。移液枪能够较为精准地控制吸取的量和速度，可以地减少对细胞沉淀的扰动。可以根据实际情况尽可能地吸净上清液，减少残留血清或培养基成分对后续细胞培养的潜在影响，比如残留的血清可能会改变新培养基的营养成分比例或带来一些未知的生长因子干扰。然而，直接倒掉上清液也并非不可行。在处理一些细胞数量较多、细胞耐受性较好且对实验精度要求并非极高的细胞传代时，直接倒掉上清液能够提高操作效率，节省时间。但这种方式存在一定风险，直接倾倒时较难控制力度和角度，如果操作不慎，容易使细胞沉淀随着上清液一起流出，导致细胞损失，而且可能会因液体快速流下冲击细胞沉淀造成细胞的物理性损伤。在实际的细胞传代操作中，应根据细胞的特性、实验的要求以及个人的操作熟练程度来选择合适的上清液处理方式。对于新手或者处理珍贵细胞系时，建议优先采用移液枪吸走的方式，以保障细胞的活性和传代的成功率。而在积累了丰富经验且对实验条件有充分把握的情况下，可以根据具体情况灵活运用直接倒掉上清液的方法，在保证实验质量的同时提高工作效率。
TK+/- (clone 3.7.2C) Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞样;相关产品有：NCI-H2106 Cells、130 T Cells、PLC-8024 Cells
SUPB-15 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代。３天内可长满。;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：CCD-841-CoN Cells、HCT-8 Cells、NCI-H446 Cells
F-81 Cells;背景说明：肾；自发永生；雌性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：BIC Cells、WM266 Cells、X63 Cells
HuH-6 Cells;背景说明：肝癌。据说产球蛋白和甲胎蛋白。;传代方法：消化３-５分钟。１：２。６-７天长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：CEM-C7 Cells、4-1st Cells、M-1 myeloid leukemia Cells
CEM T4 Cells;背景说明：急性T淋巴细胞白血病；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明;相关产品有：DHL5 Cells、Douglas Foster-1 Cells、NPA 87 Cells
GM02131A Cells;背景说明：B淋巴细胞；EBV转化;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明;相关产品有：B16/F10 Cells、PLC-8024 Cells、MDA MB 453 Cells
SN12PM6 Cells;背景说明：肾癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：COLO679 Cells、HeLa Cells、KYSE180 Cells
NU-GC-4 Cells;背景说明：胃癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：半贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：TK-1 Cells、Ramos G6.C10 Cells、BERH-2 Cells
HCT-8 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NCI-H-295 Cells、CNE1 Cells、SK.MEL.28 Cells
WIL2-S Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：COLO 824 Cells、TH1 Cells、HRPEpiC Cells
Hs 870.T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２—１：３传代；每周换液２-３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞;相关产品有：RPVSMC Cells、MRC5 Cells、KYSE510 Cells
CCD-33Co Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：HMC Cells、SKNEP-1 Cells、SBC3 Cells
MES-SA Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：６-１：８传代；每周２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞样 ;相关产品有：MCF-12A Cells、SUNE 1 Cells、6-10B Cells
H1299 Cells;背景说明：这株细胞来源于一个淋巴结转移。患者接受了初期放疗。细胞均一性的部分缺失p５３蛋白，并缺少p５３蛋白表达。细胞可以合成０.１pmol/毫克蛋白的NMB蛋白，而不合成促胃液释放肽(GRP)。;传代方法：１：２传代；３天传代一次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样；多角形;相关产品有：C-4-I Cells、Jurkat Cells、T8 Cells
A-431 Cells;背景说明：该细胞源自一位患有皮肤鳞状细胞癌的８５岁女性，是GiardDJ等人建立的一系列细胞株中的一株。该细胞在免疫抑制小鼠体内可成瘤，在琼脂上培养可形成克隆；是一个超三倍体人细胞株。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：RL95-2 Cells、Raji Cells、SKBR-3 Cells
HBL-100 Cells;背景说明：该细胞由E.V.Gaffney及其同事从一位没有乳癌家族史的供者乳汁中建立，培养出来的细胞染色体组型在第７代时就不正常；电镜照片显示有微丝、张力原纤维和桥粒；Southern转移表明有整合型SV４０病毒基因，当作正常细胞。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：NS-I/1 Cells、SKMel-28 Cells、Hs27 Cells
SW 1116 Cells;背景说明：CSAp阴性(CSAp-)。 结肠抗原３，阴性。 角蛋白免疫过氧化物酶染色阳性。 癌基因c-myc, K-ras, H-ras, myb, sis 和fos的表达呈阳性。 未检测到癌基因N-myc和N-ras的表达。 表达肿瘤特异的核基质蛋白CC-４，CC-５和CC-６。;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：WM239A Cells、PF382 Cells、MCF-12A Cells
Abcam HEK293T PSIP1 KO Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
AG11805 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line RRB037 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XE324 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BY00279 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
CS1YOF Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
DA04409 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
FA18JTO(SVT)-2 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
GM07779 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Wayne State University-Head and Neck 13 Cells;背景说明：舌鳞癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NU-GC-4 Cells、ND7/23 Cells、H1792 Cells
YD15 Cells;背景说明：舌鳞癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：Hs940T Cells、Emory University-2 Cells、SKNO-1 Cells
HCC0202 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：B-CPAP Cells、HT-29/CX-1 Cells、OV-1063 Cells
BV2 Cells;背景说明：源于C５７BL/６小鼠小胶质细胞，表达核v-myc、染色体v-raf癌基因，表面表达envgp７０抗原，在形态学、表型及功能上有吞噬细胞的特征。;传代方法：１：６传代；２-３天１次。;生长特性：半贴壁生长;形态特性：多形型;相关产品有：KYSE 520 Cells、HCC-2108 Cells、SKG3A Cells
UM-RC-2 Cells;背景说明：肾透明细胞癌;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：PNEC30 Cells、B95.8 Cells、Hs832T Cells
33604 Cells;背景说明：葡萄膜黑色素瘤；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：KMS-18 Cells、H-711 Cells、U118 Cells
BV-173 Cells;背景说明：慢性粒细胞白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明;相关产品有：Hs 940.T Cells、Mv1.Lu Cells、H676 Cells
CCD-1112sk Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：Renal Carcinoma Cells、Vertebral Cancer of the Prostate Cells、H727 Cells
TYKnu Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NCIH1915 Cells、OVSAHO Cells、Fortner's melanotic melanoma #3 Cells
DrG Cells;背景说明：背根神经 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：H1373 Cells、OAW42 Cells、JB6 clone 30, subclone 7b Cells
BT.549 Cells;背景说明：该细胞１９７８年由W.G.Coutinho和E.Y.Lasfargues建系，源自一位７２岁患有乳腺导管癌的白人女性，来源组织包括乳头及浸润导管。该细胞形态包括上皮样细胞及多核巨细胞，可分泌一种粘性物质。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：H1755 Cells、KU19-19 Cells、DV90 Cells
22RV1人前列腺癌传代细胞种子库|送STR图谱
Bac 1.2F5 Cells;背景说明：巨噬细胞；SV４０转化；BALB/c x A.CA;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：130-T Cells、K422 Cells、NTERA-2cl.D1 Cells
UMC11 Cells;背景说明：肺肿瘤；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：U-373-MG Cells、KRC/Y Cells、NTERA-2 cl.D1 Cells
OC 316 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：SF-539 BT Cells、Nittby-Salford 1 Cells、MNNG-HOS (Cl#5) Cells
SW 1222 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：H-2029 Cells、T. T Cells、CAL 51 Cells
GM09633 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
HAP1 ATXN3 (-) Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
AE 1201 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：Ly10 Cells、L-5178-Y Cells、SNU-1040 Cells
Cor L88 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NCI-H1573 Cells、SW-900 Cells、CV1 Cells
L929(NCTC) Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：C-26 Cells、GP-293 Cells、AHH1 Cells
UPCI-SCC090 Cells;背景说明：舌鳞癌细胞；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：L M (TK-) Cells、Panc 1 Cells、NCI.H460 Cells
TE-6 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：SK MEL 28 Cells、MFC Cells、REC-1 Cells
HUT-28 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：６传代，每周换液２-３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明;相关产品有：P-815 Cells、Hut292 Cells、NMCG1 Cells
Caki2 Cells;背景说明：该细胞源自一位６９岁白人男性的初期肾腺癌组织;传代方法：１：３—１：６传代，每周换液２—３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：BE2C Cells、OKT 3 Cells、CAL-78 Cells
HMSC Cells;背景说明：骨髓间充质干 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：A2780CP Cells、SNU-387 Cells、KU.812 Cells
HG03066 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
iBMK Puma+/+ B Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
LK91 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
NCI-BL2087 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
PathHunter CHO-K1 GPR61 beta-arrestin Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Ubigene A-549 TAB2 KO Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
v6.5 Slc39a14-K1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
HAP1 STK40 (-) Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Panc4.03 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：RMG-1 Cells、EB2 Cells、Melanoma 14 Cells
G519 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NCI H747 Cells、OVCAR-432 Cells、GTL 16 Cells
TGBC11TKB Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：NCIH2085 Cells、NCTC-3960 Cells、OVCAR-433 Cells
CV 1 Cells;背景说明：CV-１细胞株是１９６４年由JensenFC等建系的，源自成年雄性非洲绿猴肾，被用于Rous肉瘤病毒的转染研究。可作为SV４０载体的转染宿主。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞样;相关产品有：hADSCs Cells、BALL-1 Cells、Z310 Cells
HUT125 Cells;背景说明：腺鳞状肺癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：MLE 12 Cells、P3X63Ag8653 Cells、32D clone3 Cells
HUT125 Cells;背景说明：腺鳞状肺癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：MLE 12 Cells、P3X63Ag8653 Cells、32D clone3 Cells
PC615.3 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：HCC827 Cells、LIM1215 Cells、BEL7402 Cells
HL60 Cells;背景说明：该细胞由CollinsSJ从一位患有急性早幼粒细胞性白血病的３６岁白人女性的外周血中分离建立；可自发分化，或在盐、次黄嘌呤、佛波醇肉豆蔻酸(PMA,TPA)、DMSO(１%to１.５%)、D和视黄酸的刺激下发生分化；PMA刺激后可分泌TNF-α。该细胞具有吞噬活性和趋化反应，癌基因myc阳性，表达补体受体和FcR。;传代方法：维持细胞浓度在１×１０５-１×１０６/ml,每２-３天换液１次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：髓母细胞样;相关产品有：MT-3 [Human leukocytes] Cells、Farage Cells、MDA MB 436 Cells
HET-1A Cells;背景说明：食管；上皮细胞；SV４０转化；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：GM3190 Cells、Caco2-BBE Cells、LX-2 Cells
ELD-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：SKNEP-1 Cells、22Rv-1 Cells、BT-483 Cells
Human Pancreatic Duct Epithelial Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明;相关产品有：293H Cells、MDA415 Cells、HPAC Cells
HUVEC Cells;背景说明：脐静脉；内皮 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：QG-56 Cells、HCC0078 Cells、CL1-5 Cells
HCC15 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：FRO81-2 Cells、YD-38 Cells、MOLT.4 Cells
22RV1人前列腺癌传代细胞种子库|送STR图谱
QGY7701 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：消化３-５分钟，１：２,３天内可长满;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：U343 Cells、CX1 Cells、AM Cells
RCC-10RGB Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：Caco-2 Cells、HCC0038 Cells、NHLF Cells
S2R+-Pex19-KO-A1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
HeLaS3 Cells;背景说明：该细胞是１９５５年由PuckTT,MarcusPI和CieciuraSJ建系的，含HPV-１８序列；角蛋白阳性；可用于与染色体突变、细胞营养、集落形成相关的哺乳动物细胞的克隆分析。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：KP-N-RT-BM Cells、HCC0202 Cells、AC29 Cells
Hut292 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：８传代；２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：H650 Cells、GM3569 Cells、H-841 Cells
DCS Cells;背景说明：树突状 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：GM16136 Cells、KMS-26 Cells、DU_145 Cells
Walker 256 Cells;背景说明：乳腺癌；雌性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：Centre Antoine Lacassagne-85-1 Cells、GBC-SD Cells、BHP 10-3 Cells
SKNBE2C Cells;背景说明：神经母细胞瘤；骨髓转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：C17 Cells、ECV Cells、JiyoyeP-2003 Cells
SW-1573 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：MDBK (NBL-1) Cells、IM 9 Cells、NR 8383 Cells
HUT 28 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：６传代，每周换液２-３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NCIH1666 Cells、SNU-475 Cells、MEG-01 Cells
Caco-2/BBe 1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：６—１：１０传代，每周换液２次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：SW620 Cells、RA-FLSs Cells、SK HEP-1 Cells
WRL 68 Cells;背景说明：胚胎；肝 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：RAT2 Cells、LIXC002 Cells、U 138 MG Cells
RBL2H3 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞;相关产品有：b.End3 Cells、EST81 Cells、HCS-2/8 Cells
SRA 01/04 Cells;背景说明：晶状体；上皮细胞；SV４０转化；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：HN4 Cells、SW-954 Cells、MAEC Cells
HEK-293H Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：SGC7901/DDP Cells、CHO K1 Cells、SKN-AS Cells
CCD 19Lu Cells;背景说明：肺成纤维细胞；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NCIH1618 Cells、SO-RB50 Cells、ZR751 Cells
Super Tube Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NB-9 Cells、SuperTube Cells、H-1770 Cells
BayGenomics ES cell line RRH053 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XH153 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
ES[MC1R(20):tetDnmt3b(22)] Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
N1-2A8 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Ubigene MC-38 Fat1 KO Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
MB-021 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
"
传代方法：1:2-1:4(首次传代建议1:2)
生长特性：贴壁生长
换液频率：每周2-3次
背景资料：２２RV１是来自异种移植(在阉割引起前列腺癌衰退又在其父亲的雄性激素信赖型CWR２２嫁接后复发的小鼠中连续传代)的人前列腺癌上皮细胞系。此细胞系表达前列腺特异抗原。二羟基睾丸脂酮轻微刺激细胞生长，经westernblot检测溶解产物与抗雄性激素受体抗体起免疫反应。EGF刺激细胞生长，但TGFβ-１不能抑制细胞生长。该细胞在裸鼠中成瘤。
细胞常规培养传代流程(请严格遵照无菌操作)：１)吸出原培养瓶中的培养基，PBS缓冲润洗细胞两次，加２-３ml ０.２５%胰酶进行消化细胞(注意把握消化时间，通常控制在１-２min)；２)镜下观察消化情况，在细胞边缘缩小，贴壁松动时(不建议消化到细胞漂浮)去掉胰酶，加６-８ml完全培养基，轻轻吹打细胞层，尽量把细胞层吹落，吹散；３)取部分细胞悬转移到新的培养皿/瓶中，添加适当的完全培养基，把细胞悬打匀，于培养箱中培养；４)注意培养基PH值变化情况，定期换(每周２-３次)，待细胞密度达到８０%以后重复１项操作或者冻存；别注意：(如使用公共实验室或者初次接触细胞培养，建议添加双抗培养)１)收到细胞后请尽快更换为含１５%血清的新鲜培养基，如因殊情况需要继续使用原瓶，请在原瓶培养基中额外添加１０%的血清，(原瓶培养基的继续使用时间Zui长不宜超过７２小时)；２)贴壁细胞收到当天切忌立刻消化，请将细胞换后放置培养箱孵育到第二天再做消化传代，请YOU先选择直径６cm的培养皿进行传代培养；３)如签收时出现培养瓶壁破裂，漏等情况请及时做HAO照片记录并联系实验室。
DHL8 Cells;背景说明：弥漫大B淋巴瘤；腹腔积液转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明;相关产品有：Rat Chondrosarcoma Swarm Cells、Hu-P-T4 Cells、SBC5 Cells
Lewis Lung Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：WEHI231 Cells、UMNSAH/DF#1 Cells、LIXC-002 Cells
CHOS Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：MCF 7 Cells、HBE 135-E6E7 Cells、TYKnu Cells
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产品包装形式：复苏细胞：T25培养瓶(一瓶)或冻存细胞：1ml冻存管(两支)
来源说明：细胞主要来源ATCC、DSMZ等细胞库
物种来源：Human\Mouse\Rat\Others
U343 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明;相关产品有：HEK AD293 Cells、FO [Mouse myeloma] Cells、SKNBE(2) Cells
B16-F1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
hTERTHME1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：SK-MEL-3 Cells、PaCa2 Cells、LY-R Cells
H2291 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：４传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：RGC-6 Cells、H841 Cells、HCV-29 Cells
形态特性：上皮细胞样
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贴壁细胞的传代培养，详细步骤如下：首先倒掉培养基，在这一步骤可以收集一些细胞上清做支原体检测；加入胰蛋白酶，一般T25是加2mL，盖好瓶盖，摇晃T25培养瓶，使胰蛋白酶均匀覆盖在细胞表面，放入培养箱2-3min，期间可在显微镜下观察，看到大部分细胞变圆，即可放入超净台，加入2倍的完全培养基，这里就是加4mL培养基，终止消化；将含有胰蛋白酶，细胞和培养基一起转移到离心管中，1000rpm/3min离心，去掉上清；新鲜的完全培养基重悬，根据细胞的生长特性和后续的实验需求进行传代，比如我养的Hepa1-6就长的比较快，不是着急用的话，我就会按1E6个细胞/T75培养瓶进行传代；但如果后两天要用，就会适当多传一点；还可通过显微镜计数后，直接用于细胞铺板，继续后续的实验。
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在细胞传代过程中，离心操作后的上清液处理是一个关键步骤，而关于是用移液枪吸走还是直接倒掉上清液，需要综合多方面因素来考量。使用移液枪吸走上清液具有一定的优势。移液枪能够较为精准地控制吸取的量和速度，可以地减少对细胞沉淀的扰动。可以根据实际情况尽可能地吸净上清液，减少残留血清或培养基成分对后续细胞培养的潜在影响，比如残留的血清可能会改变新培养基的营养成分比例或带来一些未知的生长因子干扰。然而，直接倒掉上清液也并非不可行。在处理一些细胞数量较多、细胞耐受性较好且对实验精度要求并非极高的细胞传代时，直接倒掉上清液能够提高操作效率，节省时间。但这种方式存在一定风险，直接倾倒时较难控制力度和角度，如果操作不慎，容易使细胞沉淀随着上清液一起流出，导致细胞损失，而且可能会因液体快速流下冲击细胞沉淀造成细胞的物理性损伤。在实际的细胞传代操作中，应根据细胞的特性、实验的要求以及个人的操作熟练程度来选择合适的上清液处理方式。对于新手或者处理珍贵细胞系时，建议优先采用移液枪吸走的方式，以保障细胞的活性和传代的成功率。而在积累了丰富经验且对实验条件有充分把握的情况下，可以根据具体情况灵活运用直接倒掉上清液的方法，在保证实验质量的同时提高工作效率。
TK+/- (clone 3.7.2C) Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞样;相关产品有：NCI-H2106 Cells、130 T Cells、PLC-8024 Cells
SUPB-15 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代。３天内可长满。;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：CCD-841-CoN Cells、HCT-8 Cells、NCI-H446 Cells
F-81 Cells;背景说明：肾；自发永生；雌性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：BIC Cells、WM266 Cells、X63 Cells
HuH-6 Cells;背景说明：肝癌。据说产球蛋白和甲胎蛋白。;传代方法：消化３-５分钟。１：２。６-７天长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：CEM-C7 Cells、4-1st Cells、M-1 myeloid leukemia Cells
CEM T4 Cells;背景说明：急性T淋巴细胞白血病；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明;相关产品有：DHL5 Cells、Douglas Foster-1 Cells、NPA 87 Cells
GM02131A Cells;背景说明：B淋巴细胞；EBV转化;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明;相关产品有：B16/F10 Cells、PLC-8024 Cells、MDA MB 453 Cells
SN12PM6 Cells;背景说明：肾癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：COLO679 Cells、HeLa Cells、KYSE180 Cells
NU-GC-4 Cells;背景说明：胃癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：半贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：TK-1 Cells、Ramos G6.C10 Cells、BERH-2 Cells
HCT-8 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NCI-H-295 Cells、CNE1 Cells、SK.MEL.28 Cells
WIL2-S Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：COLO 824 Cells、TH1 Cells、HRPEpiC Cells
Hs 870.T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２—１：３传代；每周换液２-３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞;相关产品有：RPVSMC Cells、MRC5 Cells、KYSE510 Cells
CCD-33Co Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：HMC Cells、SKNEP-1 Cells、SBC3 Cells
MES-SA Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：６-１：８传代；每周２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞样 ;相关产品有：MCF-12A Cells、SUNE 1 Cells、6-10B Cells
H1299 Cells;背景说明：这株细胞来源于一个淋巴结转移。患者接受了初期放疗。细胞均一性的部分缺失p５３蛋白，并缺少p５３蛋白表达。细胞可以合成０.１pmol/毫克蛋白的NMB蛋白，而不合成促胃液释放肽(GRP)。;传代方法：１：２传代；３天传代一次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样；多角形;相关产品有：C-4-I Cells、Jurkat Cells、T8 Cells
A-431 Cells;背景说明：该细胞源自一位患有皮肤鳞状细胞癌的８５岁女性，是GiardDJ等人建立的一系列细胞株中的一株。该细胞在免疫抑制小鼠体内可成瘤，在琼脂上培养可形成克隆；是一个超三倍体人细胞株。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：RL95-2 Cells、Raji Cells、SKBR-3 Cells
HBL-100 Cells;背景说明：该细胞由E.V.Gaffney及其同事从一位没有乳癌家族史的供者乳汁中建立，培养出来的细胞染色体组型在第７代时就不正常；电镜照片显示有微丝、张力原纤维和桥粒；Southern转移表明有整合型SV４０病毒基因，当作正常细胞。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：NS-I/1 Cells、SKMel-28 Cells、Hs27 Cells
SW 1116 Cells;背景说明：CSAp阴性(CSAp-)。 结肠抗原３，阴性。 角蛋白免疫过氧化物酶染色阳性。 癌基因c-myc, K-ras, H-ras, myb, sis 和fos的表达呈阳性。 未检测到癌基因N-myc和N-ras的表达。 表达肿瘤特异的核基质蛋白CC-４，CC-５和CC-６。;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：WM239A Cells、PF382 Cells、MCF-12A Cells
Abcam HEK293T PSIP1 KO Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
AG11805 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line RRB037 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XE324 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BY00279 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
CS1YOF Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
DA04409 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
FA18JTO(SVT)-2 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
GM07779 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Wayne State University-Head and Neck 13 Cells;背景说明：舌鳞癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NU-GC-4 Cells、ND7/23 Cells、H1792 Cells
YD15 Cells;背景说明：舌鳞癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：Hs940T Cells、Emory University-2 Cells、SKNO-1 Cells
HCC0202 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：B-CPAP Cells、HT-29/CX-1 Cells、OV-1063 Cells
BV2 Cells;背景说明：源于C５７BL/６小鼠小胶质细胞，表达核v-myc、染色体v-raf癌基因，表面表达envgp７０抗原，在形态学、表型及功能上有吞噬细胞的特征。;传代方法：１：６传代；２-３天１次。;生长特性：半贴壁生长;形态特性：多形型;相关产品有：KYSE 520 Cells、HCC-2108 Cells、SKG3A Cells
UM-RC-2 Cells;背景说明：肾透明细胞癌;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：PNEC30 Cells、B95.8 Cells、Hs832T Cells
33604 Cells;背景说明：葡萄膜黑色素瘤；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：KMS-18 Cells、H-711 Cells、U118 Cells
BV-173 Cells;背景说明：慢性粒细胞白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明;相关产品有：Hs 940.T Cells、Mv1.Lu Cells、H676 Cells
CCD-1112sk Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：Renal Carcinoma Cells、Vertebral Cancer of the Prostate Cells、H727 Cells
TYKnu Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NCIH1915 Cells、OVSAHO Cells、Fortner's melanotic melanoma #3 Cells
DrG Cells;背景说明：背根神经 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：H1373 Cells、OAW42 Cells、JB6 clone 30, subclone 7b Cells
BT.549 Cells;背景说明：该细胞１９７８年由W.G.Coutinho和E.Y.Lasfargues建系，源自一位７２岁患有乳腺导管癌的白人女性，来源组织包括乳头及浸润导管。该细胞形态包括上皮样细胞及多核巨细胞，可分泌一种粘性物质。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：H1755 Cells、KU19-19 Cells、DV90 Cells
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Bac 1.2F5 Cells;背景说明：巨噬细胞；SV４０转化；BALB/c x A.CA;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：130-T Cells、K422 Cells、NTERA-2cl.D1 Cells
UMC11 Cells;背景说明：肺肿瘤；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：U-373-MG Cells、KRC/Y Cells、NTERA-2 cl.D1 Cells
OC 316 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：SF-539 BT Cells、Nittby-Salford 1 Cells、MNNG-HOS (Cl#5) Cells
SW 1222 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：H-2029 Cells、T. T Cells、CAL 51 Cells
GM09633 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
HAP1 ATXN3 (-) Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
AE 1201 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：Ly10 Cells、L-5178-Y Cells、SNU-1040 Cells
Cor L88 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NCI-H1573 Cells、SW-900 Cells、CV1 Cells
L929(NCTC) Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：C-26 Cells、GP-293 Cells、AHH1 Cells
UPCI-SCC090 Cells;背景说明：舌鳞癌细胞；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：L M (TK-) Cells、Panc 1 Cells、NCI.H460 Cells
TE-6 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：SK MEL 28 Cells、MFC Cells、REC-1 Cells
HUT-28 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：６传代，每周换液２-３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明;相关产品有：P-815 Cells、Hut292 Cells、NMCG1 Cells
Caki2 Cells;背景说明：该细胞源自一位６９岁白人男性的初期肾腺癌组织;传代方法：１：３—１：６传代，每周换液２—３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：BE2C Cells、OKT 3 Cells、CAL-78 Cells
HMSC Cells;背景说明：骨髓间充质干 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：A2780CP Cells、SNU-387 Cells、KU.812 Cells
HG03066 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
iBMK Puma+/+ B Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
LK91 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
NCI-BL2087 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
PathHunter CHO-K1 GPR61 beta-arrestin Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Ubigene A-549 TAB2 KO Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
v6.5 Slc39a14-K1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
HAP1 STK40 (-) Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Panc4.03 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：RMG-1 Cells、EB2 Cells、Melanoma 14 Cells
G519 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NCI H747 Cells、OVCAR-432 Cells、GTL 16 Cells
TGBC11TKB Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：NCIH2085 Cells、NCTC-3960 Cells、OVCAR-433 Cells
CV 1 Cells;背景说明：CV-１细胞株是１９６４年由JensenFC等建系的，源自成年雄性非洲绿猴肾，被用于Rous肉瘤病毒的转染研究。可作为SV４０载体的转染宿主。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞样;相关产品有：hADSCs Cells、BALL-1 Cells、Z310 Cells
HUT125 Cells;背景说明：腺鳞状肺癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：MLE 12 Cells、P3X63Ag8653 Cells、32D clone3 Cells
HUT125 Cells;背景说明：腺鳞状肺癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：MLE 12 Cells、P3X63Ag8653 Cells、32D clone3 Cells
PC615.3 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：HCC827 Cells、LIM1215 Cells、BEL7402 Cells
HL60 Cells;背景说明：该细胞由CollinsSJ从一位患有急性早幼粒细胞性白血病的３６岁白人女性的外周血中分离建立；可自发分化，或在盐、次黄嘌呤、佛波醇肉豆蔻酸(PMA,TPA)、DMSO(１%to１.５%)、D和视黄酸的刺激下发生分化；PMA刺激后可分泌TNF-α。该细胞具有吞噬活性和趋化反应，癌基因myc阳性，表达补体受体和FcR。;传代方法：维持细胞浓度在１×１０５-１×１０６/ml,每２-３天换液１次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：髓母细胞样;相关产品有：MT-3 [Human leukocytes] Cells、Farage Cells、MDA MB 436 Cells
HET-1A Cells;背景说明：食管；上皮细胞；SV４０转化；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：GM3190 Cells、Caco2-BBE Cells、LX-2 Cells
ELD-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：SKNEP-1 Cells、22Rv-1 Cells、BT-483 Cells
Human Pancreatic Duct Epithelial Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明;相关产品有：293H Cells、MDA415 Cells、HPAC Cells
HUVEC Cells;背景说明：脐静脉；内皮 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：QG-56 Cells、HCC0078 Cells、CL1-5 Cells
HCC15 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：FRO81-2 Cells、YD-38 Cells、MOLT.4 Cells
22RV1人前列腺癌传代细胞种子库|送STR图谱
QGY7701 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：消化３-５分钟，１：２,３天内可长满;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：U343 Cells、CX1 Cells、AM Cells
RCC-10RGB Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：Caco-2 Cells、HCC0038 Cells、NHLF Cells
S2R+-Pex19-KO-A1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
HeLaS3 Cells;背景说明：该细胞是１９５５年由PuckTT,MarcusPI和CieciuraSJ建系的，含HPV-１８序列；角蛋白阳性；可用于与染色体突变、细胞营养、集落形成相关的哺乳动物细胞的克隆分析。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：KP-N-RT-BM Cells、HCC0202 Cells、AC29 Cells
Hut292 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：８传代；２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：H650 Cells、GM3569 Cells、H-841 Cells
DCS Cells;背景说明：树突状 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：GM16136 Cells、KMS-26 Cells、DU_145 Cells
Walker 256 Cells;背景说明：乳腺癌；雌性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：Centre Antoine Lacassagne-85-1 Cells、GBC-SD Cells、BHP 10-3 Cells
SKNBE2C Cells;背景说明：神经母细胞瘤；骨髓转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：C17 Cells、ECV Cells、JiyoyeP-2003 Cells
SW-1573 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：MDBK (NBL-1) Cells、IM 9 Cells、NR 8383 Cells
HUT 28 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：６传代，每周换液２-３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NCIH1666 Cells、SNU-475 Cells、MEG-01 Cells
Caco-2/BBe 1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：６—１：１０传代，每周换液２次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：SW620 Cells、RA-FLSs Cells、SK HEP-1 Cells
WRL 68 Cells;背景说明：胚胎；肝 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：RAT2 Cells、LIXC002 Cells、U 138 MG Cells
RBL2H3 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞;相关产品有：b.End3 Cells、EST81 Cells、HCS-2/8 Cells
SRA 01/04 Cells;背景说明：晶状体；上皮细胞；SV４０转化；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：HN4 Cells、SW-954 Cells、MAEC Cells
HEK-293H Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：SGC7901/DDP Cells、CHO K1 Cells、SKN-AS Cells
CCD 19Lu Cells;背景说明：肺成纤维细胞；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NCIH1618 Cells、SO-RB50 Cells、ZR751 Cells
Super Tube Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明部分;形态特性：详见产品说明;相关产品有：NB-9 Cells、SuperTube Cells、H-1770 Cells
BayGenomics ES cell line RRH053 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XH153 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
ES[MC1R(20):tetDnmt3b(22)] Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
N1-2A8 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Ubigene MC-38 Fat1 KO Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
MB-021 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
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"PubMed=14518030; DOI=10.1002/pros.10291
van Bokhoven A., Caires A., Di Maria M., Schulte A.P., Lucia M.S., Nordeen S.K., Miller G.J., Varella-Garcia M.
Spectral karyotype (SKY) analysis of human prostate carcinoma cell lines.
Prostate 57:226-244(2003)
CLPUB00698
van Bokhoven A.
Models for prostate cancer. Molecular characterization and critical appraisal of human prostate carcinoma cell lines.
Thesis PhD (2004); Katholieke Universiteit Nijmegen; Nijmegen; Netherlands
PubMed=15486987; DOI=10.1002/pros.20158
Zhao H.-J., Kim Y., Wang P., Lapointe J., Tibshirani R., Pollack J.R., Brooks J.D.
Genome-wide characterization of gene expression variations and DNA copy number changes in prostate cancer cell lines.
Prostate 63:187-197(2005)
PubMed=19403664; DOI=10.1128/JVI.00546-09; PMCID=PMC2704771
Knouf E.C., Metzger M.J., Mitchell P.S., Arroyo J.D., Chevillet J.R., Tewari M., Miller A.D.
Multiple integrated copies and high-level production of the human retrovirus XMRV (xenotropic murine leukemia virus-related virus) from 22Rv1 prostate carcinoma cells.
J. Virol. 83:7353-7356(2009)
PubMed=20164919; DOI=10.1038/nature08768; PMCID=PMC3145113
Bignell G.R., Greenman C.D., Davies H.R., Butler A.P., Edkins S., Andrews J.M., Buck G., Chen L., Beare D., Latimer C., Widaa S., Hinton J., Fahey C., Fu B.-Y., Swamy S., Dalgliesh G.L., Teh B.T., Deloukas P., Yang F.-T., Campbell P.J., Futreal P.A., Stratton M.R.
Signatures of mutation and selection in the cancer genome.
Nature 463:893-898(2010)
PubMed=20215515; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-09-3458; PMCID=PMC2881662
Rothenberg S.M., Mohapatra G., Rivera M.N., Winokur D., Greninger P., Nitta M., Sadow P.M., Sooriyakumar G., Brannigan B.W., Ulman M.J., Perera R.M., Wang R., Tam A., Ma X.-J., Erlander M., Sgroi D.C., Rocco J.W., Lingen M.W., Cohen E.E.W., Louis D.N., Settleman J., Haber D.A.
A genome-wide screen for microdeletions reveals disruption of polarity complex genes in diverse human cancers.
Cancer Res. 70:2158-2164(2010)
PubMed=21248069; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-10-1998; PMCID=PMC3059379
Li Y.-M., Alsagabi M., Fan D.-H., Bova G.S., Tewfik A.H., Dehm S.M.
Intragenic rearrangement and altered RNA splicing of the androgen receptor in a cell-based model of prostate cancer progression.
Cancer Res. 71:2108-2117(2011)
PubMed=22460905; DOI=10.1038/nature11003; PMCID=PMC3320027
Barretina J.G., Caponigro G., Stransky N., Venkatesan K., Margolin A.A., Kim S., Wilson C.J., Lehar J., Kryukov G.V., Sonkin D., Reddy A., Liu M., Murray L., Berger M.F., Monahan J.E., Morais P., Meltzer J., Korejwa A., Jane-Valbuena J., Mapa F.A., Thibault J., Bric-Furlong E., Raman P., Shipway A., Engels I.H., Cheng J., Yu G.-Y.K., Yu J.-J., Aspesi P. Jr., de Silva M., Jagtap K., Jones M.D., Wang L., Hatton C., Palescandolo E., Gupta S., Mahan S., Sougnez C., Onofrio R.C., Liefeld T., MacConaill L.E., Winckler W., Reich M., Li N.-X., Mesirov J.P., Gabriel S.B., Getz G., Ardlie K., Chan V., Myer V.E., Weber B.L., Porter J., Warmuth M., Finan P., Harris J.L., Meyerson M.L., Golub T.R., Morrissey M.P., Sellers W.R., Schlegel R., Garraway L.A.
The Cancer Cell Line Encyclopedia enables predictive modelling of anticancer drug sensitivity.
Nature 483:603-607(2012)
DOI=10.5897/IJBMBR2013.0154
Iloki Assanga S.B., Gil-Salido A.A., Lewis Lujan L.M., de Jesus Rosas-Durazo A., Acosta-Silva A.L., Rivera-Castaneda E.G., Rubio-Pino J.L.
Cell growth curves for different cell lines and their relationship with biological activities.
Int. J. Biotechnol. Mol. Biol. Res. 4:60-70(2013)
PubMed=23117885; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-12-3630; PMCID=PMC3549016
Li Y.-M., Chan S.-C., Brand L.J., Hwang T.H., Silverstein K.A.T., Dehm S.M.
Androgen receptor splice variants mediate enzalutamide resistance in castration-resistant prostate cancer cell lines.
Cancer Res. 73:483-489(2013)
PubMed=23671654; DOI=10.1371/journal.pone.0063056; PMCID=PMC3646030
Lu Y.-H., Soong T.D., Elemento O.
A novel approach for characterizing microsatellite instability in cancer cells.
PLoS ONE 8:E63056-E63056(2013)
PubMed=25984343; DOI=10.1038/sdata.2014.35; PMCID=PMC4432652
Cowley G.S., Weir B.A., Vazquez F., Tamayo P., Scott J.A., Rusin S., East-Seletsky A., Ali L.D., Gerath W.F.J., Pantel S.E., Lizotte P.H., Jiang G.-Z., Hsiao J., Tsherniak A., Dwinell E., Aoyama S., Okamoto M., Harrington W., Gelfand E.T., Green T.M., Tomko M.J., Gopal S., Wong T.C., Li H.-B., Howell S., Stransky N., Liefeld T., Jang D., Bistline J., Meyers B.H., Armstrong S.A., Anderson K.C., Stegmaier K., Reich M., Pellman D., Boehm J.S., Mesirov J.P., Golub T.R., Root D.E., Hahn W.C.
Parallel genome-scale loss of function screens in 216 cancer cell lines for the identification of context-specific genetic dependencies.
Sci. Data 1:140035-140035(2014)
PubMed=25877200; DOI=10.1038/nature14397
Yu M., Selvaraj S.K., Liang-Chu M.M.Y., Aghajani S., Busse M., Yuan J., Lee G., Peale F.V., Klijn C., Bourgon R., Kaminker J.S., Neve R.M.
A resource for cell line authentication, annotation and quality control.
Nature 520:307-311(2015)
PubMed=27271795; DOI=10.1002/pros.23190
Shourideh M., DePriest A., Mohler J.L., Wilson E.M., Koochekpour S.
Characterization of fibroblast-free CWR-R1ca castration-recurrent prostate cancer cell line.
Prostate 76:1067-1077(2016)
PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017; PMCID=PMC4967469
Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Miroo T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.
A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.
Cell 166:740-754(2016)
PubMed=28145883; DOI=10.18632/oncotarget.14850; PMCID=PMC5386661
Nouri M., Caradec J., Lubik A.A., Li N., Hollier B.G., Takhar M., Altimirano-Dimas M., Chen M.-Q., Roshan-Moniri M., Butler M., Lehman M., Bishop J.L., Truong S., Huang S.-C., Cochrane D.R., Cox M., Collins C., Gleave M.E., Erho N., Alshalafa M., Davicioni E., Nelson C., Gregory-Evans C.Y., Karnes R.J., Jenkins R.B., Klein E.A., Buttyan R.
Therapy-induced developmental reprogramming of prostate cancer cells and acquired therapy resistance.
Oncotarget 8:18949-18967(2017)
PubMed=28928128; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-17-0320; PMCID=PMC5654612
Van Etten J.L., Nyquist M.D., Li Y.-M., Yang R.-D., Ho Y., Johnson R., Ondigi O., Voytas D.F., Henzler C., Dehm S.M.
Targeting a single alternative polyadenylation site coordinately blocks expression of androgen receptor mRNA splice variants in prostate cancer.
Cancer Res. 77:5228-5235(2017)
PubMed=30629668; DOI=10.1371/journal.pone.0210404; PMCID=PMC6328144
Uphoff C.C., Pommerenke C., Denkmann S.A., Drexler H.G.
Screening human cell lines for viral infections applying RNA-Seq data analysis.
PLoS ONE 14:E0210404-E0210404(2019)
PubMed=30787054; DOI=10.1158/1055-9965.EPI-18-1132; PMCID=PMC6548687
Hooker S.E. Jr., Woods-Burnham L., Bathina M., Lloyd S., Gorjala P., Mitra R., Nonn L., Kimbro K.S., Kittles R.A.
Genetic ancestry analysis reveals misclassification of commonly used cancer cell lines.
Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. 28:1003-1009(2019)
PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675
Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
Cancer Res. 79:1263-1273(2019)
PubMed=30971826; DOI=10.1038/s41586-019-1103-9
Behan F.M., Iorio F., Picco G., Goncalves E., Beaver C.M., Migliardi G., Santos R., Rao Y., Sassi F., Pinnelli M., Ansari R., Harper S., Jackson D.A., McRae R., Pooley R., Wilkinson P., van der Meer D.J., Dow D., Buser-Doepner C.A., Bertotti A., Trusolino L., Stronach E.A., Saez-Rodriguez J., Yusa K., Garnett M.J.
Prioritization of cancer therapeutic targets using CRISPR-Cas9 screens.
Nature 568:511-516(2019)
PubMed=31006810; DOI=10.1093/nar/gkz286; PMCID=PMC6582326
Kounatidou E., Nakjang S., McCracken S.R.C., Dehm S.M., Robson C.N., Jones D., Gaughan L.
A novel CRISPR-engineered prostate cancer cell line defines the AR-V transcriptome and identifies PARP inhibitor sensitivities.
Nucleic Acids Res. 47:5634-5647(2019)
PubMed=31068700; DOI=10.1038/s41586-019-1186-3; PMCID=PMC6697103
Ghandi M., Huang F.W., Jane-Valbuena J., Kryukov G.V., Lo C.C., McDonald E.R. 3rd, Barretina J.G., Gelfand E.T., Bielski C.M., Li H.-X., Hu K., Andreev-Drakhlin A.Y., Kim J., Hess J.M., Haas B.J., Aguet F., Weir B.A., Rothberg M.V., Paolella B.R., Lawrence M.S., Akbani R., Lu Y.-L., Tiv H.L., Gokhale P.C., de Weck A., Mansour A.A., Oh C., Shih J., Hadi K., Rosen Y., Bistline J., Venkatesan K., Reddy A., Sonkin D., Liu M., Lehar J., Korn J.M., Porter D.A., Jones M.D., Golji J., Caponigro G., Taylor J.E., Dunning C.M., Creech A.L., Warren A.C., McFarland J.M., Zamanighomi M., Kauffmann A., Stransky N., Imielinski M., Maruvka Y.E., Cherniack A.D., Tsherniak A., Vazquez F., Jaffe J.D., Lane A.A., Weinstock D.M., Johannessen C.M., Morrissey M.P., Stegmeier F., Schlegel R., Hahn W.C., Getz G., Mills G.B., Boehm J.S., Golub T.R., Garraway L.A., Sellers W.R.
Next-generation characterization of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
Nature 569:503-508(2019)
PubMed=31395879; DOI=10.1038/s41467-019-11415-2; PMCID=PMC6687785
Yu K., Chen B., Aran D., Charalel J., Yau C., Wolf D.M., van 't Veer L.J., Butte A.J., Goldstein T., Sirota M.
Comprehensive transcriptomic analysis of cell lines as models of primary tumors across 22 tumor types.
Nat. Commun. 10:3574.1-3574.11(2019)"
van Bokhoven A., Caires A., Di Maria M., Schulte A.P., Lucia M.S., Nordeen S.K., Miller G.J., Varella-Garcia M.
Spectral karyotype (SKY) analysis of human prostate carcinoma cell lines.
Prostate 57:226-244(2003)
CLPUB00698
van Bokhoven A.
Models for prostate cancer. Molecular characterization and critical appraisal of human prostate carcinoma cell lines.
Thesis PhD (2004); Katholieke Universiteit Nijmegen; Nijmegen; Netherlands
PubMed=15486987; DOI=10.1002/pros.20158
Zhao H.-J., Kim Y., Wang P., Lapointe J., Tibshirani R., Pollack J.R., Brooks J.D.
Genome-wide characterization of gene expression variations and DNA copy number changes in prostate cancer cell lines.
Prostate 63:187-197(2005)
PubMed=19403664; DOI=10.1128/JVI.00546-09; PMCID=PMC2704771
Knouf E.C., Metzger M.J., Mitchell P.S., Arroyo J.D., Chevillet J.R., Tewari M., Miller A.D.
Multiple integrated copies and high-level production of the human retrovirus XMRV (xenotropic murine leukemia virus-related virus) from 22Rv1 prostate carcinoma cells.
J. Virol. 83:7353-7356(2009)
PubMed=20164919; DOI=10.1038/nature08768; PMCID=PMC3145113
Bignell G.R., Greenman C.D., Davies H.R., Butler A.P., Edkins S., Andrews J.M., Buck G., Chen L., Beare D., Latimer C., Widaa S., Hinton J., Fahey C., Fu B.-Y., Swamy S., Dalgliesh G.L., Teh B.T., Deloukas P., Yang F.-T., Campbell P.J., Futreal P.A., Stratton M.R.
Signatures of mutation and selection in the cancer genome.
Nature 463:893-898(2010)
PubMed=20215515; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-09-3458; PMCID=PMC2881662
Rothenberg S.M., Mohapatra G., Rivera M.N., Winokur D., Greninger P., Nitta M., Sadow P.M., Sooriyakumar G., Brannigan B.W., Ulman M.J., Perera R.M., Wang R., Tam A., Ma X.-J., Erlander M., Sgroi D.C., Rocco J.W., Lingen M.W., Cohen E.E.W., Louis D.N., Settleman J., Haber D.A.
A genome-wide screen for microdeletions reveals disruption of polarity complex genes in diverse human cancers.
Cancer Res. 70:2158-2164(2010)
PubMed=21248069; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-10-1998; PMCID=PMC3059379
Li Y.-M., Alsagabi M., Fan D.-H., Bova G.S., Tewfik A.H., Dehm S.M.
Intragenic rearrangement and altered RNA splicing of the androgen receptor in a cell-based model of prostate cancer progression.
Cancer Res. 71:2108-2117(2011)
PubMed=22460905; DOI=10.1038/nature11003; PMCID=PMC3320027
Barretina J.G., Caponigro G., Stransky N., Venkatesan K., Margolin A.A., Kim S., Wilson C.J., Lehar J., Kryukov G.V., Sonkin D., Reddy A., Liu M., Murray L., Berger M.F., Monahan J.E., Morais P., Meltzer J., Korejwa A., Jane-Valbuena J., Mapa F.A., Thibault J., Bric-Furlong E., Raman P., Shipway A., Engels I.H., Cheng J., Yu G.-Y.K., Yu J.-J., Aspesi P. Jr., de Silva M., Jagtap K., Jones M.D., Wang L., Hatton C., Palescandolo E., Gupta S., Mahan S., Sougnez C., Onofrio R.C., Liefeld T., MacConaill L.E., Winckler W., Reich M., Li N.-X., Mesirov J.P., Gabriel S.B., Getz G., Ardlie K., Chan V., Myer V.E., Weber B.L., Porter J., Warmuth M., Finan P., Harris J.L., Meyerson M.L., Golub T.R., Morrissey M.P., Sellers W.R., Schlegel R., Garraway L.A.
The Cancer Cell Line Encyclopedia enables predictive modelling of anticancer drug sensitivity.
Nature 483:603-607(2012)
DOI=10.5897/IJBMBR2013.0154
Iloki Assanga S.B., Gil-Salido A.A., Lewis Lujan L.M., de Jesus Rosas-Durazo A., Acosta-Silva A.L., Rivera-Castaneda E.G., Rubio-Pino J.L.
Cell growth curves for different cell lines and their relationship with biological activities.
Int. J. Biotechnol. Mol. Biol. Res. 4:60-70(2013)
PubMed=23117885; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-12-3630; PMCID=PMC3549016
Li Y.-M., Chan S.-C., Brand L.J., Hwang T.H., Silverstein K.A.T., Dehm S.M.
Androgen receptor splice variants mediate enzalutamide resistance in castration-resistant prostate cancer cell lines.
Cancer Res. 73:483-489(2013)
PubMed=23671654; DOI=10.1371/journal.pone.0063056; PMCID=PMC3646030
Lu Y.-H., Soong T.D., Elemento O.
A novel approach for characterizing microsatellite instability in cancer cells.
PLoS ONE 8:E63056-E63056(2013)
PubMed=25984343; DOI=10.1038/sdata.2014.35; PMCID=PMC4432652
Cowley G.S., Weir B.A., Vazquez F., Tamayo P., Scott J.A., Rusin S., East-Seletsky A., Ali L.D., Gerath W.F.J., Pantel S.E., Lizotte P.H., Jiang G.-Z., Hsiao J., Tsherniak A., Dwinell E., Aoyama S., Okamoto M., Harrington W., Gelfand E.T., Green T.M., Tomko M.J., Gopal S., Wong T.C., Li H.-B., Howell S., Stransky N., Liefeld T., Jang D., Bistline J., Meyers B.H., Armstrong S.A., Anderson K.C., Stegmaier K., Reich M., Pellman D., Boehm J.S., Mesirov J.P., Golub T.R., Root D.E., Hahn W.C.
Parallel genome-scale loss of function screens in 216 cancer cell lines for the identification of context-specific genetic dependencies.
Sci. Data 1:140035-140035(2014)
PubMed=25877200; DOI=10.1038/nature14397
Yu M., Selvaraj S.K., Liang-Chu M.M.Y., Aghajani S., Busse M., Yuan J., Lee G., Peale F.V., Klijn C., Bourgon R., Kaminker J.S., Neve R.M.
A resource for cell line authentication, annotation and quality control.
Nature 520:307-311(2015)
PubMed=27271795; DOI=10.1002/pros.23190
Shourideh M., DePriest A., Mohler J.L., Wilson E.M., Koochekpour S.
Characterization of fibroblast-free CWR-R1ca castration-recurrent prostate cancer cell line.
Prostate 76:1067-1077(2016)
PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017; PMCID=PMC4967469
Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Miroo T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.
A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.
Cell 166:740-754(2016)
PubMed=28145883; DOI=10.18632/oncotarget.14850; PMCID=PMC5386661
Nouri M., Caradec J., Lubik A.A., Li N., Hollier B.G., Takhar M., Altimirano-Dimas M., Chen M.-Q., Roshan-Moniri M., Butler M., Lehman M., Bishop J.L., Truong S., Huang S.-C., Cochrane D.R., Cox M., Collins C., Gleave M.E., Erho N., Alshalafa M., Davicioni E., Nelson C., Gregory-Evans C.Y., Karnes R.J., Jenkins R.B., Klein E.A., Buttyan R.
Therapy-induced developmental reprogramming of prostate cancer cells and acquired therapy resistance.
Oncotarget 8:18949-18967(2017)
PubMed=28928128; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-17-0320; PMCID=PMC5654612
Van Etten J.L., Nyquist M.D., Li Y.-M., Yang R.-D., Ho Y., Johnson R., Ondigi O., Voytas D.F., Henzler C., Dehm S.M.
Targeting a single alternative polyadenylation site coordinately blocks expression of androgen receptor mRNA splice variants in prostate cancer.
Cancer Res. 77:5228-5235(2017)
PubMed=30629668; DOI=10.1371/journal.pone.0210404; PMCID=PMC6328144
Uphoff C.C., Pommerenke C., Denkmann S.A., Drexler H.G.
Screening human cell lines for viral infections applying RNA-Seq data analysis.
PLoS ONE 14:E0210404-E0210404(2019)
PubMed=30787054; DOI=10.1158/1055-9965.EPI-18-1132; PMCID=PMC6548687
Hooker S.E. Jr., Woods-Burnham L., Bathina M., Lloyd S., Gorjala P., Mitra R., Nonn L., Kimbro K.S., Kittles R.A.
Genetic ancestry analysis reveals misclassification of commonly used cancer cell lines.
Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. 28:1003-1009(2019)
PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675
Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
Cancer Res. 79:1263-1273(2019)
PubMed=30971826; DOI=10.1038/s41586-019-1103-9
Behan F.M., Iorio F., Picco G., Goncalves E., Beaver C.M., Migliardi G., Santos R., Rao Y., Sassi F., Pinnelli M., Ansari R., Harper S., Jackson D.A., McRae R., Pooley R., Wilkinson P., van der Meer D.J., Dow D., Buser-Doepner C.A., Bertotti A., Trusolino L., Stronach E.A., Saez-Rodriguez J., Yusa K., Garnett M.J.
Prioritization of cancer therapeutic targets using CRISPR-Cas9 screens.
Nature 568:511-516(2019)
PubMed=31006810; DOI=10.1093/nar/gkz286; PMCID=PMC6582326
Kounatidou E., Nakjang S., McCracken S.R.C., Dehm S.M., Robson C.N., Jones D., Gaughan L.
A novel CRISPR-engineered prostate cancer cell line defines the AR-V transcriptome and identifies PARP inhibitor sensitivities.
Nucleic Acids Res. 47:5634-5647(2019)
PubMed=31068700; DOI=10.1038/s41586-019-1186-3; PMCID=PMC6697103
Ghandi M., Huang F.W., Jane-Valbuena J., Kryukov G.V., Lo C.C., McDonald E.R. 3rd, Barretina J.G., Gelfand E.T., Bielski C.M., Li H.-X., Hu K., Andreev-Drakhlin A.Y., Kim J., Hess J.M., Haas B.J., Aguet F., Weir B.A., Rothberg M.V., Paolella B.R., Lawrence M.S., Akbani R., Lu Y.-L., Tiv H.L., Gokhale P.C., de Weck A., Mansour A.A., Oh C., Shih J., Hadi K., Rosen Y., Bistline J., Venkatesan K., Reddy A., Sonkin D., Liu M., Lehar J., Korn J.M., Porter D.A., Jones M.D., Golji J., Caponigro G., Taylor J.E., Dunning C.M., Creech A.L., Warren A.C., McFarland J.M., Zamanighomi M., Kauffmann A., Stransky N., Imielinski M., Maruvka Y.E., Cherniack A.D., Tsherniak A., Vazquez F., Jaffe J.D., Lane A.A., Weinstock D.M., Johannessen C.M., Morrissey M.P., Stegmeier F., Schlegel R., Hahn W.C., Getz G., Mills G.B., Boehm J.S., Golub T.R., Garraway L.A., Sellers W.R.
Next-generation characterization of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
Nature 569:503-508(2019)
PubMed=31395879; DOI=10.1038/s41467-019-11415-2; PMCID=PMC6687785
Yu K., Chen B., Aran D., Charalel J., Yau C., Wolf D.M., van 't Veer L.J., Butte A.J., Goldstein T., Sirota M.
Comprehensive transcriptomic analysis of cell lines as models of primary tumors across 22 tumor types.
Nat. Commun. 10:3574.1-3574.11(2019)"
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