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- 22RV1人前列腺癌传代细胞|送STR图谱
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上海冠导生物工程有限公司
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≥100瓶
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常温运输【复苏细胞】或干冰运输【冻存细胞】
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22RV1人前列腺癌传代细胞|送STR图谱
- 规格：
1*10(6)Cellls/瓶
"22RV1人前列腺癌传代细胞|送STR图谱
传代方法：1:2-1:4(首次传代建议1:2)
生长特性：贴壁生长
换液频率：每周2-3次
背景资料：２２RV１是来自异种移植(在阉割引起前列腺癌衰退又在其父亲的雄性激素信赖型CWR２２嫁接后复发的小鼠中连续传代)的人前列腺癌上皮细胞系。此细胞系表达前列腺特异抗原。二羟基睾丸脂酮轻微刺激细胞生长，经westernblot检测溶解产物与抗雄性激素受体抗体起免疫反应。EGF刺激细胞生长，但TGFβ-１不能抑制细胞生长。该细胞在裸鼠中成瘤。
常见细胞贴壁较弱原因：在遇到运输低温及震荡、室温静置太长时间、添加的培养基或其他试剂过冷、密度较高、聚集未吹散、加液吹打到细胞面等情况时会出现明显的成片脱落现象，此时若脱落现象不严重应尽快放回培养基继续培养，若呈大片脱落的情况时需要收集细胞重新消化吹散并接种；建议使用经过包被或者高贴壁培养瓶培养细胞，尽量避免接触低温或密度过高。
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Pa18C Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：HS-766T Cells、BSC40 Cells、NCI-441 Cells
BTI-Tn5B14 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Hs 281.T Cells、CNE2 Cells、LNCaP-ATCC Cells
CAMA1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３—１：４传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞贴壁斑块；紧凑，很少汇合;相关产品有：HL-7702 Cells、MX-1 Cells、2V6.11 Cells
B5 NIH Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
22RV1人前列腺癌传代细胞|送STR图谱
产品包装形式：复苏细胞：T25培养瓶(一瓶)或冻存细胞：1ml冻存管(两支)
来源说明：细胞主要来源ATCC、DSMZ等细胞库
绝大部分细胞消化只要用胰酶润洗一遍即可：吸去胰酶后，残留的那些无法计算体积的附着在细胞表面的微量胰酶在37℃一般不到2min足够消化细胞(绝大部分1min不到)。对于这些细胞原则上不要用胰酶孵育细胞，连续这样传代，对细胞伤害很大。简单的程序是PBS润洗吸去，胰酶润洗吸去，然后37℃消化。什么算是消化好了呢？不需要把细胞全部消化成间隔分布很离散的单个圆形才算消化好了，一般你肉眼观察贴壁细胞层，只要能移动了，多半呈沙状移动，其实已经是可以了。一般能移动了，说明细胞与培养基质材料的附着已经消失了，细胞之间的附着也已经消失了，细胞已经独立分布了(虽然没有呈现很广的离散分布)。这个时候应该停止消化，不要等到看到镜下所有细胞都分离得非常好，间隙很大，才停止。细胞系在贴壁的过程中仍然会聚集，这个是贴壁培养的细胞，尤其是肿瘤细胞的一个特性，你可以尝试，准备100%的单个细胞悬液，贴壁后观察细胞，仍然是几个几个细胞聚集在一起。一些悬浮培养细胞也是如此，容易聚集，不要过几个小时就拿出来吹打成单细胞悬液。细胞只要能从基质上脱离下来，即使是成片的(比如Calu-3细胞)，吹打不超过20次(一般10次即可)，成小规模聚集(10个细胞左右)是正常的，不要再去延长消化时间，等待单细胞悬液出现。比较难消化的细胞：润洗方法5min还不能消化，以结肠癌细胞为例，比如：HCT15、LS411和KM12细胞，胰酶消化，一般10 cm培养皿，一次加入300ul-500ul就足够了。即使这样难消化的细胞，一般不超过5min，即可见细胞成片移动，就应该停止消化。一些正常细胞也会有难消化的时候，比如tsDC细胞，用胰酶孵育，3min左右即可看到成片沙状移动。
物种来源：Human\Mouse\Rat\Others
22RV1人前列腺癌传代细胞|送STR图谱
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End1/E6E7 Cells;背景说明：子宫内膜；女性；HPV１６转化;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Vero E6 Cells、HECCL-1 Cells、H1869 Cells
T.T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１０^５ cells/６０mm dish;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：SNU5 Cells、H1838 Cells、KNS81 Cells
KY-50 Cells;背景说明：食管鳞癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：CL MC/9 Cells、NCI-SNU-407 Cells、Hs 606 Cells
形态特性：上皮细胞样
贴壁消化难题：１，先用PBS 把细胞洗两遍，使瓶内没有血清了，减少对胰酶的中和，然后用新配的０.２５%的胰酶加入３ml左右，放在３７度，然后可以在细胞有些消化下来时，拿着瓶口，运用手腕的力量轻轻震荡瓶内体，这样细胞很快就下来了，还不需要吹打，分散也均匀；２，成团、絮状：消化里加入eda可以减少细胞成团的现象，血清可以终止胰酶的作用，如果是进口血清的话也能终止eda的作用。用胰酶消化后胰酶可以倒掉，也可以不倒，直接加血清终止，如果消化中加入了eda的话，就要将消化倒干净，如果细胞贴壁要求不是很严格的话，一般不需要进行离心。鼻咽癌细胞的贴壁能力很强，用０.５%胰酶(含０.１%EDA)一般要消化１２~１５min。用PBS洗涤时要洗净残余的培养基，加入胰酶后在培养箱中消化(避免细胞室温下受损以及在此温度时胰酶活性Zui强)至细胞收缩变圆(可显微镜下观察)且有少许细胞脱落(有流下来的趋势)，随后立即弃去胰酶(如果脱落的细胞很多且需要大量细胞实验，则不能弃去胰酶)，加入培养基仔细吹打(不能用无血清培养基或者PBS替代，否则细胞聚集成团块或絮状)。一般我都离心一次弃去上清(去除残留的胰酶及漂浮的死细胞或细胞碎片)；消化过度：马上用培养基中和，用吸管吹打细胞，收集全部的细胞到以无菌的离心管中８００RPM ３分钟。弃上清，用全培重悬，换新的培养瓶继续培养，状态不HAO的细胞在培养的过程中会死亡脱落，在换的时候可以清除掉！
HEK-293-FT Cells;背景说明：该细胞稳定表达SV４０大T抗原，并且促进最适病毒产物的产生。;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：圆形;相关产品有：NP-69 Cells、32D:cl3 Cells、C3H/10T1/2-clone8 Cells
Mono-Mac-6 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：KP-N-NS Cells、OSA Cells、P 815 Cells
LN 229 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：４-１：６传代；每周换液２-３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：RBMVEC Cells、SUM 52PE Cells、COLO-679 Cells
MDAMB361 Cells;背景说明：该细胞源自４０岁女性乳腺癌的脑转移组织。;传代方法： １：２—１：６传代，每周换液２—３次;生长特性：松散贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：HuH-6 Cells、SW1783 Cells、HT1080 Cells
WM266-4 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MeT 5A Cells、OUMS23 Cells、SGC7901 Cells
P3/NS1/Ag4-1 Cells;背景说明：这是P３X６３Ag８(ATCCTIB-９)的一个不分泌克隆。Kappa链合成了但不分泌。能抗０.１mM８-氮杂鸟嘌呤但不能在HAT培养基中生长。据报道它是由于缺失了３-酮类固醇还原酶活性的胆固醇营养缺陷型。检测表明肢骨发育畸形病毒(鼠痘)阴性。;传代方法：１：２传代，３天内可长满。;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：2008 Cells、AA-Mel Cells、SMMC-7721 Cells
TKB1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Anip[973] Cells、GM05862 Cells、NCI-H1694 Cells
SU 86.86 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代；;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：UWB1.289 Cells、HEK-293 c18 Cells、Hs840_T Cells
H283 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每周换液２-３次。;生长特性：悬浮细胞的多细胞聚集体，和一些贴壁 Cells;形态特性：上皮细胞;相关产品有：U266 Bl Cells、beta TC6 Cells、Gerner 7666 Cells
VERO C 1008 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：IMCD3 Cells、FDCP-1 Cells、Ontario Cancer Institute-Acute Myeloid Leukemia-4 Cells
Hs675T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代，每周２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞;相关产品有：A2780/CP70 Cells、Tu-177 Cells、624 MEL Cells
CAMA-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３—１：４传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞贴壁斑块；紧凑，很少汇合;相关产品有：Human Microglia Clone 3 Cells、PC3M-IE8 Cells、WERI Cells
NPC-TW01 Cells;背景说明：鼻咽癌;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Pfeiffer Cells、H1770 Cells、C57/B6-L Cells
MC3T3 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：P3-NS1/1-Ag4-1 Cells、Panc 02 Cells、COLO 201 Cells
SUM 190 Cells;背景说明：乳腺癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SV-HUC-1 Cells、SH-SY5Y Parental Cells、HPAF-II/CD18 Cells
SK-N-BE(2C) Cells;背景说明：神经母细胞瘤；骨髓转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MOLP8 Cells、INS1E Cells、LM2-4175 Cells
NCIN87 Cells;背景说明：NCI-N８７细胞表达表面糖蛋白癌胚抗原(CEA)和TAG７２,并且没有左旋多巴胺脱羧酶(DDC)活性。它们的血管活性的肠肽(VIP)受体活性极低并缺乏胃泌激素受体。它们表达蕈毒碱胆碱受体。没有证据表明存在N-myc,L-myc,myb和EGF受体基因的重组。这个细胞株表达的c-myc和c-erb-B２RNA水平与其它细胞株相当。以下基因不表达:N-myc,L-myc,c-cis,IGF-２,或胃泌激素释放肽。报道NCI-N８７细胞的植板率为４.３%。;传代方法：消化１５-２０分钟。１：２。４-５天长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：H1876 Cells、NCIH841 Cells、NCI-H2405 Cells
1461T Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Abcam HeLa GALK1 KO Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
AG21753 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line RRF248 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XG461 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
C0197 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
CW60087 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
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FC43 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
GM08088 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
SKNO1 Cells;背景说明：急性髓系白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MDA-MB-175VII Cells、HCC-1937 Cells、CT26 Cells
H1184 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：OV-CA 432 Cells、KCL22S Cells、YAC Cells
MOPC Cells;背景说明：少突胶质前体 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：半贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HS-294 Cells、GM3570 Cells、C57 Mouse Tumor 64 Cells
22RV1人前列腺癌传代细胞|送STR图谱
MS1 Cells;背景说明：MS１是１９９４年建株的胰岛内皮细胞株。原代培养的胰岛内皮细胞用抗G４１８的温度敏感型SV４０大T抗原(tsA-５８-３)转染。抗性克隆用克隆环分离，并筛选吸收dil-Ac-LDL的。这株细胞保留了内皮细胞的许多特性，如吸收乙酰化LDL和表达八因子相关抗原及BEGF受体。;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H1522 Cells、MS-751 Cells、YES-2 Cells
Madin-Darby Canine Kidney Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：U-251 Cells、CCC-HEL-1 Cells、RERF-LC-MS Cells
CNE1-LUC Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：TE3A Cells、C643 Cells、H-889 Cells
MLTC-1 Cells;背景说明：睾丸间质瘤;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MV3 Cells、HemECs Cells、SK N SH Cells
HSC-1 Cells;背景说明：皮肤鳞癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：293 H Cells、HOP 62 Cells、WI-38 Cells
MDA436 Cells;背景说明：该细胞源于一名４３岁患有乳腺腺癌女性的胸腔积液。;传代方法：１：２传代，每周换液２—３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：多角形;相关产品有：UMR106 Cells、HCE-T Cells、Anip 973 Cells
KYSE0410 Cells;背景说明：食管鳞癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H929 Cells、GTL-16 Cells、SKG-IIIa Cells
Lewis Lung Cancer Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Embryonic Bovine Tracheal cells Cells、HEL-1 Cells、Caki-1 Cells
WEHI-3B Cells;背景说明：白血病；BALB/c;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Okayama University Medical School-23 Cells、H1385 Cells、GA-10-Clone-4 Cells
Panc-02 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：UM-UC3 Cells、LC-2 ad Cells、MARC-145 Cells
HEK-293H Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SGC7901/DDP Cells、H1650_CO Cells、10T1/2 Cells
ABC-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每周换液２次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：NCIH1869 Cells、L 363 Cells、NCIH1930 Cells
GM10296 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
HAP1 CAMKK1 (-) 2 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
SN-12C Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：２x１０^４ cells/ml;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：BRL 3A Cells、KM.12 Cells、MCF7 Cells
COV504 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：H341 Cells、Rh30 Cells、Hs 27 Cells
P388.D1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SKHEP1 Cells、BT 549 Cells、U-87MG ATCC Cells
NCI522 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：６传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：MDA-kb2 Cells、Epithelioma Papulosum Cyprini Cells、OCI-LY-19 Cells
LMH Cells;背景说明：肝癌；雄性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SAOS 2 Cells、Madin-Darby Canine Kidney Cells、NCI-H920 Cells
OCM-1A Cells;背景说明：脉络膜黑色素瘤；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：A.704 Cells、Bronchial Epithelium transformed with Ad12-SV40 2B Cells、OCILY3 Cells
P-19 Cells;背景说明：P１９细胞株是从C３H/He小鼠中诱导的恶性畸胎瘤中建立的。该细胞在含有０.１mM的培养基中可高效率地克隆。该细胞具有多能性，在５００nM维A酸诱导下可以分化成神经和神经胶质样细胞；在０.５%~１.０%二甲亚砜(DMSO)存在下，分化形成心脏和骨骼肌样细胞，但不形成神经或神经胶质样细胞；在DMSO和维A酸同时存在时，细胞的分化与只有维A酸一样。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：HPAF/CD18 Cells、184A1 Cells、Spodoptera frugiperda clone 9 Cells
H524 Cells;背景说明：该细胞１９８２年建系，源自非小细胞肺癌男性患者的转移淋巴结。;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：圆形细胞;相关产品有：MN-60 Cells、H1781 Cells、GM3569 Cells
HG03697 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
IGIBi010-A Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
LS180-SLC27A3-KO-c6 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
NCTC 3196 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
PC-295 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
UCL-N001S Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
ZL-70 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
HAP1 UCHL5 (-) 1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
GT1-1 Cells;背景说明：GT１-１为GT１细胞系的亚克隆，GT１来源于稳定表达SV４０大T抗原的转基因小鼠产生的可以分泌促性腺激素释放激素LHRH的肿瘤。GT１-１细胞可以表达pro-LHRHmRNA，并向培养基中分泌LHRH样的免疫反应性的物质。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：LY-R Cells、BCaP 37 Cells、2B4 Cells
RSC-364 Cells;背景说明：滑膜 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCI-H-128 Cells、KMBC Cells、MES-SA Cells
SU-DHL-1 Cells;背景说明：间变性大细胞淋巴瘤；胸腔积液转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：DU-145 Cells、H28 Cells、A375-MEL Cells
NCIH146 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２—１：６传代，每周换液２-３次;生长特性：悬浮生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：NCI-H64 Cells、A375SM Cells、293-F Cells
MDA-MB-453 Cells;背景说明：该细胞系由CailleauR在１９７６年从一名４８岁的患有转移性乳腺癌的白人女性的心包渗出液中分离建立的。该细胞表达FGF的受体。;传代方法：１：２-１：４传代；２-３天换液１次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样；多角形;相关产品有：H-2444 Cells、C57 Mouse Tumor 64 Cells、HS-729 Cells
MDA-MB-453 Cells;背景说明：该细胞系由CailleauR在１９７６年从一名４８岁的患有转移性乳腺癌的白人女性的心包渗出液中分离建立的。该细胞表达FGF的受体。;传代方法：１：２-１：４传代；２-３天换液１次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样；多角形;相关产品有：H-2444 Cells、C57 Mouse Tumor 64 Cells、HS-729 Cells
HFLS-RA Cells;背景说明：关节；成纤维 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Evsa-T Cells、J774 A.1 Cells、RAW 264.7 Cells
RAW264 Cells;背景说明：单核巨噬细胞白血病；雄性；BALB/c;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：TYK-nu Cells、CD18 Cells、HIEC6 Cells
451Lu Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NS1-1 Ag4.1 Cells、RPMI No. 1846 Cells、HCa/16A3-F Cells
HL 60 Cells;背景说明：该细胞由CollinsSJ从一位患有急性早幼粒细胞性白血病的３６岁白人女性的外周血中分离建立；可自发分化，或在盐、次黄嘌呤、佛波醇肉豆蔻酸(PMA,TPA)、DMSO(１%to１.５%)、D和视黄酸的刺激下发生分化；PMA刺激后可分泌TNF-α。该细胞具有吞噬活性和趋化反应，癌基因myc阳性，表达补体受体和FcR。;传代方法：维持细胞浓度在１×１０５-１×１０６/ml,每２-３天换液１次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：髓母细胞样;相关产品有：SW 948 Cells、B-104 Cells、RERFLCMS Cells
MDAMB436 Cells;背景说明：该细胞源于一名４３岁患有乳腺腺癌女性的胸腔积液。;传代方法：１：２传代，每周换液２—３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：多角形;相关产品有：SW-1990 Cells、UMR-106 Cells、SJRH-30 Cells
MDA-MB-415 Cells;背景说明：这株细胞表达WNT７B癌基因。８１６８０８８].带瘤患者来自巴拉圭，虽然填报的是白人，但细胞表型存在G６PDＡ型，显示其属于混血。细胞株形成平展延伸的上皮细胞样，在电镜下呈现结节，伴随着延伸的微管和微板。不容易用胰酶消化。;传代方法：消化５-１０分钟。１：２。４-５天长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：NCI.H23 Cells、QSG7701 Cells、H-1930 Cells
CG4 Cells;背景说明：少突胶质前体细胞；SD大鼠;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：半贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：PaTu 8988s Cells、PLC/PRF/5 Cells、HCC1954-BL Cells
3T3-L1 Cells;背景说明：３T３-L１是从３T３细胞（Swissalbino）中经克隆分离得到的连续传代的亚系。该细胞从快速分裂到汇合和接触性抑制状态经历了前脂肪细胞到脂肪样细胞的转变。该细胞鼠痘病毒阴性；可产生甘油三酯，高浓度血清可增强细胞内脂肪堆积。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞样;相关产品有：NS1-Ag 4/1 Cells、LTEP-a2 Cells、CCD1112Sk Cells
SL-29 Cells;背景说明：胚成纤维细胞； White Leghorn SPAFAS;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MB39 Cells、LED-WiDr Cells、E0771 Cells
SCC-61B Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Centre Antoine Lacassagne-33 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Det. 562 Cells、MV522 Cells、MAC1 Cells
ARO81 Cells;背景说明：甲状腺癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SN12C Cells、Y3-Ag1,2,3 Cells、Baby Hamster Kidney from litter No. 21 Cells
NCIH740 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：95C Cells、NCI-H3255 Cells、CCC-HHM-2 Cells
Alexander cells Cells;背景说明：该细胞系分泌乙肝病毒表面抗原（HBsAg）。 此细胞系原先被支原体污染，后用BM-cycline去除支原体;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：HEK 293 c18 Cells、M2-10B4 Cells、CAL 85-1 Cells
SGC996 Cells;背景说明：胆囊癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HEI-193 Cells、HDF-a Cells、SNU-407 Cells
┈订┈购┈热┈线：1┈5┈8┈0┈0┈5┈7┈6┈8┈6┈7【微信同号】┈Q┈Q：3┈3┈0┈7┈2┈0┈4┈2┈7┈1；
NCIH1373 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：４传代；２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：H774 Cells、BAR-T Cells、OVTOKO Cells
G361mel Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：４传代，２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：VP 267 Cells、HCC-202 Cells、HPB/ALL Cells
CAL 120 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：CV-1.K Cells、D562 Cells、MRC9 Cells
H-1573 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代，每周２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HUCEC Cells、RCSMC Cells、SkChA-1 Cells
22RV1人前列腺癌传代细胞|送STR图谱
HEL-92-1-7 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每周２-３次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：成淋巴细胞;相关产品有：HCC-70 Cells、LTEP-sm Cells、QGY-7703 Cells
WiDrTC Cells;背景说明：结肠癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SNU-251 Cells、SNU387 Cells、OCI-LY-7 Cells
Karpas 299 Cells;背景说明：间变性大细胞淋巴瘤；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HNE-1 Cells、U-118MG Cells、WERIRb1 Cells
VK-2/E6E7 Cells;背景说明：阴道；上皮细胞；HPV１６转化；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：OVCAR 8 Cells、MDAMB175 Cells、SCL I Cells
TGBC11T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：CEMC1 Cells、HEK-293 Cells、J45.01 Cells
BayGenomics ES cell line NPX111 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XC424 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
CPTC-Ezrin-1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
MB40.3 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
SC17.27 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
LISP-E11 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
"
传代方法：1:2-1:4(首次传代建议1:2)
生长特性：贴壁生长
换液频率：每周2-3次
背景资料：２２RV１是来自异种移植(在阉割引起前列腺癌衰退又在其父亲的雄性激素信赖型CWR２２嫁接后复发的小鼠中连续传代)的人前列腺癌上皮细胞系。此细胞系表达前列腺特异抗原。二羟基睾丸脂酮轻微刺激细胞生长，经westernblot检测溶解产物与抗雄性激素受体抗体起免疫反应。EGF刺激细胞生长，但TGFβ-１不能抑制细胞生长。该细胞在裸鼠中成瘤。
常见细胞贴壁较弱原因：在遇到运输低温及震荡、室温静置太长时间、添加的培养基或其他试剂过冷、密度较高、聚集未吹散、加液吹打到细胞面等情况时会出现明显的成片脱落现象，此时若脱落现象不严重应尽快放回培养基继续培养，若呈大片脱落的情况时需要收集细胞重新消化吹散并接种；建议使用经过包被或者高贴壁培养瓶培养细胞，尽量避免接触低温或密度过高。
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Pa18C Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：HS-766T Cells、BSC40 Cells、NCI-441 Cells
BTI-Tn5B14 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Hs 281.T Cells、CNE2 Cells、LNCaP-ATCC Cells
CAMA1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３—１：４传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞贴壁斑块；紧凑，很少汇合;相关产品有：HL-7702 Cells、MX-1 Cells、2V6.11 Cells
B5 NIH Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
22RV1人前列腺癌传代细胞|送STR图谱
产品包装形式：复苏细胞：T25培养瓶(一瓶)或冻存细胞：1ml冻存管(两支)
来源说明：细胞主要来源ATCC、DSMZ等细胞库
绝大部分细胞消化只要用胰酶润洗一遍即可：吸去胰酶后，残留的那些无法计算体积的附着在细胞表面的微量胰酶在37℃一般不到2min足够消化细胞(绝大部分1min不到)。对于这些细胞原则上不要用胰酶孵育细胞，连续这样传代，对细胞伤害很大。简单的程序是PBS润洗吸去，胰酶润洗吸去，然后37℃消化。什么算是消化好了呢？不需要把细胞全部消化成间隔分布很离散的单个圆形才算消化好了，一般你肉眼观察贴壁细胞层，只要能移动了，多半呈沙状移动，其实已经是可以了。一般能移动了，说明细胞与培养基质材料的附着已经消失了，细胞之间的附着也已经消失了，细胞已经独立分布了(虽然没有呈现很广的离散分布)。这个时候应该停止消化，不要等到看到镜下所有细胞都分离得非常好，间隙很大，才停止。细胞系在贴壁的过程中仍然会聚集，这个是贴壁培养的细胞，尤其是肿瘤细胞的一个特性，你可以尝试，准备100%的单个细胞悬液，贴壁后观察细胞，仍然是几个几个细胞聚集在一起。一些悬浮培养细胞也是如此，容易聚集，不要过几个小时就拿出来吹打成单细胞悬液。细胞只要能从基质上脱离下来，即使是成片的(比如Calu-3细胞)，吹打不超过20次(一般10次即可)，成小规模聚集(10个细胞左右)是正常的，不要再去延长消化时间，等待单细胞悬液出现。比较难消化的细胞：润洗方法5min还不能消化，以结肠癌细胞为例，比如：HCT15、LS411和KM12细胞，胰酶消化，一般10 cm培养皿，一次加入300ul-500ul就足够了。即使这样难消化的细胞，一般不超过5min，即可见细胞成片移动，就应该停止消化。一些正常细胞也会有难消化的时候，比如tsDC细胞，用胰酶孵育，3min左右即可看到成片沙状移动。
物种来源：Human\Mouse\Rat\Others
22RV1人前列腺癌传代细胞|送STR图谱
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End1/E6E7 Cells;背景说明：子宫内膜；女性；HPV１６转化;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Vero E6 Cells、HECCL-1 Cells、H1869 Cells
T.T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１０^５ cells/６０mm dish;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：SNU5 Cells、H1838 Cells、KNS81 Cells
KY-50 Cells;背景说明：食管鳞癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：CL MC/9 Cells、NCI-SNU-407 Cells、Hs 606 Cells
形态特性：上皮细胞样
贴壁消化难题：１，先用PBS 把细胞洗两遍，使瓶内没有血清了，减少对胰酶的中和，然后用新配的０.２５%的胰酶加入３ml左右，放在３７度，然后可以在细胞有些消化下来时，拿着瓶口，运用手腕的力量轻轻震荡瓶内体，这样细胞很快就下来了，还不需要吹打，分散也均匀；２，成团、絮状：消化里加入eda可以减少细胞成团的现象，血清可以终止胰酶的作用，如果是进口血清的话也能终止eda的作用。用胰酶消化后胰酶可以倒掉，也可以不倒，直接加血清终止，如果消化中加入了eda的话，就要将消化倒干净，如果细胞贴壁要求不是很严格的话，一般不需要进行离心。鼻咽癌细胞的贴壁能力很强，用０.５%胰酶(含０.１%EDA)一般要消化１２~１５min。用PBS洗涤时要洗净残余的培养基，加入胰酶后在培养箱中消化(避免细胞室温下受损以及在此温度时胰酶活性Zui强)至细胞收缩变圆(可显微镜下观察)且有少许细胞脱落(有流下来的趋势)，随后立即弃去胰酶(如果脱落的细胞很多且需要大量细胞实验，则不能弃去胰酶)，加入培养基仔细吹打(不能用无血清培养基或者PBS替代，否则细胞聚集成团块或絮状)。一般我都离心一次弃去上清(去除残留的胰酶及漂浮的死细胞或细胞碎片)；消化过度：马上用培养基中和，用吸管吹打细胞，收集全部的细胞到以无菌的离心管中８００RPM ３分钟。弃上清，用全培重悬，换新的培养瓶继续培养，状态不HAO的细胞在培养的过程中会死亡脱落，在换的时候可以清除掉！
HEK-293-FT Cells;背景说明：该细胞稳定表达SV４０大T抗原，并且促进最适病毒产物的产生。;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：圆形;相关产品有：NP-69 Cells、32D:cl3 Cells、C3H/10T1/2-clone8 Cells
Mono-Mac-6 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：KP-N-NS Cells、OSA Cells、P 815 Cells
LN 229 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：４-１：６传代；每周换液２-３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：RBMVEC Cells、SUM 52PE Cells、COLO-679 Cells
MDAMB361 Cells;背景说明：该细胞源自４０岁女性乳腺癌的脑转移组织。;传代方法： １：２—１：６传代，每周换液２—３次;生长特性：松散贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：HuH-6 Cells、SW1783 Cells、HT1080 Cells
WM266-4 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MeT 5A Cells、OUMS23 Cells、SGC7901 Cells
P3/NS1/Ag4-1 Cells;背景说明：这是P３X６３Ag８(ATCCTIB-９)的一个不分泌克隆。Kappa链合成了但不分泌。能抗０.１mM８-氮杂鸟嘌呤但不能在HAT培养基中生长。据报道它是由于缺失了３-酮类固醇还原酶活性的胆固醇营养缺陷型。检测表明肢骨发育畸形病毒(鼠痘)阴性。;传代方法：１：２传代，３天内可长满。;生长特性：悬浮生长;形态特性：淋巴母细胞;相关产品有：2008 Cells、AA-Mel Cells、SMMC-7721 Cells
TKB1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Anip[973] Cells、GM05862 Cells、NCI-H1694 Cells
SU 86.86 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代；;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：UWB1.289 Cells、HEK-293 c18 Cells、Hs840_T Cells
H283 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每周换液２-３次。;生长特性：悬浮细胞的多细胞聚集体，和一些贴壁 Cells;形态特性：上皮细胞;相关产品有：U266 Bl Cells、beta TC6 Cells、Gerner 7666 Cells
VERO C 1008 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：IMCD3 Cells、FDCP-1 Cells、Ontario Cancer Institute-Acute Myeloid Leukemia-4 Cells
Hs675T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代，每周２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞;相关产品有：A2780/CP70 Cells、Tu-177 Cells、624 MEL Cells
CAMA-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３—１：４传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞贴壁斑块；紧凑，很少汇合;相关产品有：Human Microglia Clone 3 Cells、PC3M-IE8 Cells、WERI Cells
NPC-TW01 Cells;背景说明：鼻咽癌;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Pfeiffer Cells、H1770 Cells、C57/B6-L Cells
MC3T3 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：P3-NS1/1-Ag4-1 Cells、Panc 02 Cells、COLO 201 Cells
SUM 190 Cells;背景说明：乳腺癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SV-HUC-1 Cells、SH-SY5Y Parental Cells、HPAF-II/CD18 Cells
SK-N-BE(2C) Cells;背景说明：神经母细胞瘤；骨髓转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MOLP8 Cells、INS1E Cells、LM2-4175 Cells
NCIN87 Cells;背景说明：NCI-N８７细胞表达表面糖蛋白癌胚抗原(CEA)和TAG７２,并且没有左旋多巴胺脱羧酶(DDC)活性。它们的血管活性的肠肽(VIP)受体活性极低并缺乏胃泌激素受体。它们表达蕈毒碱胆碱受体。没有证据表明存在N-myc,L-myc,myb和EGF受体基因的重组。这个细胞株表达的c-myc和c-erb-B２RNA水平与其它细胞株相当。以下基因不表达:N-myc,L-myc,c-cis,IGF-２,或胃泌激素释放肽。报道NCI-N８７细胞的植板率为４.３%。;传代方法：消化１５-２０分钟。１：２。４-５天长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：H1876 Cells、NCIH841 Cells、NCI-H2405 Cells
1461T Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Abcam HeLa GALK1 KO Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
AG21753 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line RRF248 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XG461 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
C0197 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
CW60087 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
┈订┈购┈热┈线：1┈5┈8┈0┈0┈5┈7┈6┈8┈6┈7【微信同号】┈Q┈Q：3┈3┈0┈7┈2┈0┈4┈2┈7┈1；
FC43 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
GM08088 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
SKNO1 Cells;背景说明：急性髓系白血病；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MDA-MB-175VII Cells、HCC-1937 Cells、CT26 Cells
H1184 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：OV-CA 432 Cells、KCL22S Cells、YAC Cells
MOPC Cells;背景说明：少突胶质前体 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：半贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HS-294 Cells、GM3570 Cells、C57 Mouse Tumor 64 Cells
22RV1人前列腺癌传代细胞|送STR图谱
MS1 Cells;背景说明：MS１是１９９４年建株的胰岛内皮细胞株。原代培养的胰岛内皮细胞用抗G４１８的温度敏感型SV４０大T抗原(tsA-５８-３)转染。抗性克隆用克隆环分离，并筛选吸收dil-Ac-LDL的。这株细胞保留了内皮细胞的许多特性，如吸收乙酰化LDL和表达八因子相关抗原及BEGF受体。;传代方法：消化３-５分钟。１：２。３天内可长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H1522 Cells、MS-751 Cells、YES-2 Cells
Madin-Darby Canine Kidney Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：U-251 Cells、CCC-HEL-1 Cells、RERF-LC-MS Cells
CNE1-LUC Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：TE3A Cells、C643 Cells、H-889 Cells
MLTC-1 Cells;背景说明：睾丸间质瘤;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MV3 Cells、HemECs Cells、SK N SH Cells
HSC-1 Cells;背景说明：皮肤鳞癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：293 H Cells、HOP 62 Cells、WI-38 Cells
MDA436 Cells;背景说明：该细胞源于一名４３岁患有乳腺腺癌女性的胸腔积液。;传代方法：１：２传代，每周换液２—３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：多角形;相关产品有：UMR106 Cells、HCE-T Cells、Anip 973 Cells
KYSE0410 Cells;背景说明：食管鳞癌；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：H929 Cells、GTL-16 Cells、SKG-IIIa Cells
Lewis Lung Cancer Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Embryonic Bovine Tracheal cells Cells、HEL-1 Cells、Caki-1 Cells
WEHI-3B Cells;背景说明：白血病；BALB/c;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Okayama University Medical School-23 Cells、H1385 Cells、GA-10-Clone-4 Cells
Panc-02 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长 ;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：UM-UC3 Cells、LC-2 ad Cells、MARC-145 Cells
HEK-293H Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SGC7901/DDP Cells、H1650_CO Cells、10T1/2 Cells
ABC-1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每周换液２次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：NCIH1869 Cells、L 363 Cells、NCIH1930 Cells
GM10296 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
HAP1 CAMKK1 (-) 2 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
SN-12C Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：２x１０^４ cells/ml;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞样;相关产品有：BRL 3A Cells、KM.12 Cells、MCF7 Cells
COV504 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：H341 Cells、Rh30 Cells、Hs 27 Cells
P388.D1 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SKHEP1 Cells、BT 549 Cells、U-87MG ATCC Cells
NCI522 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：６传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：MDA-kb2 Cells、Epithelioma Papulosum Cyprini Cells、OCI-LY-19 Cells
LMH Cells;背景说明：肝癌；雄性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SAOS 2 Cells、Madin-Darby Canine Kidney Cells、NCI-H920 Cells
OCM-1A Cells;背景说明：脉络膜黑色素瘤；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：A.704 Cells、Bronchial Epithelium transformed with Ad12-SV40 2B Cells、OCILY3 Cells
P-19 Cells;背景说明：P１９细胞株是从C３H/He小鼠中诱导的恶性畸胎瘤中建立的。该细胞在含有０.１mM的培养基中可高效率地克隆。该细胞具有多能性，在５００nM维A酸诱导下可以分化成神经和神经胶质样细胞；在０.５%~１.０%二甲亚砜(DMSO)存在下，分化形成心脏和骨骼肌样细胞，但不形成神经或神经胶质样细胞；在DMSO和维A酸同时存在时，细胞的分化与只有维A酸一样。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：HPAF/CD18 Cells、184A1 Cells、Spodoptera frugiperda clone 9 Cells
H524 Cells;背景说明：该细胞１９８２年建系，源自非小细胞肺癌男性患者的转移淋巴结。;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：圆形细胞;相关产品有：MN-60 Cells、H1781 Cells、GM3569 Cells
HG03697 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
IGIBi010-A Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
LS180-SLC27A3-KO-c6 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
NCTC 3196 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
PC-295 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
UCL-N001S Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
ZL-70 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
HAP1 UCHL5 (-) 1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
GT1-1 Cells;背景说明：GT１-１为GT１细胞系的亚克隆，GT１来源于稳定表达SV４０大T抗原的转基因小鼠产生的可以分泌促性腺激素释放激素LHRH的肿瘤。GT１-１细胞可以表达pro-LHRHmRNA，并向培养基中分泌LHRH样的免疫反应性的物质。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：LY-R Cells、BCaP 37 Cells、2B4 Cells
RSC-364 Cells;背景说明：滑膜 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NCI-H-128 Cells、KMBC Cells、MES-SA Cells
SU-DHL-1 Cells;背景说明：间变性大细胞淋巴瘤；胸腔积液转移；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：DU-145 Cells、H28 Cells、A375-MEL Cells
NCIH146 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２—１：６传代，每周换液２-３次;生长特性：悬浮生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：NCI-H64 Cells、A375SM Cells、293-F Cells
MDA-MB-453 Cells;背景说明：该细胞系由CailleauR在１９７６年从一名４８岁的患有转移性乳腺癌的白人女性的心包渗出液中分离建立的。该细胞表达FGF的受体。;传代方法：１：２-１：４传代；２-３天换液１次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样；多角形;相关产品有：H-2444 Cells、C57 Mouse Tumor 64 Cells、HS-729 Cells
MDA-MB-453 Cells;背景说明：该细胞系由CailleauR在１９７６年从一名４８岁的患有转移性乳腺癌的白人女性的心包渗出液中分离建立的。该细胞表达FGF的受体。;传代方法：１：２-１：４传代；２-３天换液１次;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样；多角形;相关产品有：H-2444 Cells、C57 Mouse Tumor 64 Cells、HS-729 Cells
HFLS-RA Cells;背景说明：关节；成纤维 Cells;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Evsa-T Cells、J774 A.1 Cells、RAW 264.7 Cells
RAW264 Cells;背景说明：单核巨噬细胞白血病；雄性；BALB/c;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：TYK-nu Cells、CD18 Cells、HIEC6 Cells
451Lu Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：NS1-1 Ag4.1 Cells、RPMI No. 1846 Cells、HCa/16A3-F Cells
HL 60 Cells;背景说明：该细胞由CollinsSJ从一位患有急性早幼粒细胞性白血病的３６岁白人女性的外周血中分离建立；可自发分化，或在盐、次黄嘌呤、佛波醇肉豆蔻酸(PMA,TPA)、DMSO(１%to１.５%)、D和视黄酸的刺激下发生分化；PMA刺激后可分泌TNF-α。该细胞具有吞噬活性和趋化反应，癌基因myc阳性，表达补体受体和FcR。;传代方法：维持细胞浓度在１×１０５-１×１０６/ml,每２-３天换液１次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：髓母细胞样;相关产品有：SW 948 Cells、B-104 Cells、RERFLCMS Cells
MDAMB436 Cells;背景说明：该细胞源于一名４３岁患有乳腺腺癌女性的胸腔积液。;传代方法：１：２传代，每周换液２—３次;生长特性：贴壁生长;形态特性：多角形;相关产品有：SW-1990 Cells、UMR-106 Cells、SJRH-30 Cells
MDA-MB-415 Cells;背景说明：这株细胞表达WNT７B癌基因。８１６８０８８].带瘤患者来自巴拉圭，虽然填报的是白人，但细胞表型存在G６PDＡ型，显示其属于混血。细胞株形成平展延伸的上皮细胞样，在电镜下呈现结节，伴随着延伸的微管和微板。不容易用胰酶消化。;传代方法：消化５-１０分钟。１：２。４-５天长满。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：NCI.H23 Cells、QSG7701 Cells、H-1930 Cells
CG4 Cells;背景说明：少突胶质前体细胞；SD大鼠;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：半贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：PaTu 8988s Cells、PLC/PRF/5 Cells、HCC1954-BL Cells
3T3-L1 Cells;背景说明：３T３-L１是从３T３细胞（Swissalbino）中经克隆分离得到的连续传代的亚系。该细胞从快速分裂到汇合和接触性抑制状态经历了前脂肪细胞到脂肪样细胞的转变。该细胞鼠痘病毒阴性；可产生甘油三酯，高浓度血清可增强细胞内脂肪堆积。;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：成纤维细胞样;相关产品有：NS1-Ag 4/1 Cells、LTEP-a2 Cells、CCD1112Sk Cells
SL-29 Cells;背景说明：胚成纤维细胞； White Leghorn SPAFAS;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：MB39 Cells、LED-WiDr Cells、E0771 Cells
SCC-61B Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
Centre Antoine Lacassagne-33 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：Det. 562 Cells、MV522 Cells、MAC1 Cells
ARO81 Cells;背景说明：甲状腺癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SN12C Cells、Y3-Ag1,2,3 Cells、Baby Hamster Kidney from litter No. 21 Cells
NCIH740 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：95C Cells、NCI-H3255 Cells、CCC-HHM-2 Cells
Alexander cells Cells;背景说明：该细胞系分泌乙肝病毒表面抗原（HBsAg）。 此细胞系原先被支原体污染，后用BM-cycline去除支原体;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：HEK 293 c18 Cells、M2-10B4 Cells、CAL 85-1 Cells
SGC996 Cells;背景说明：胆囊癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HEI-193 Cells、HDF-a Cells、SNU-407 Cells
┈订┈购┈热┈线：1┈5┈8┈0┈0┈5┈7┈6┈8┈6┈7【微信同号】┈Q┈Q：3┈3┈0┈7┈2┈0┈4┈2┈7┈1；
NCIH1373 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：３-１：４传代；２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮样;相关产品有：H774 Cells、BAR-T Cells、OVTOKO Cells
G361mel Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：４传代，２-３天换液１次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：VP 267 Cells、HCC-202 Cells、HPB/ALL Cells
CAL 120 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁或悬浮，详见产品说明书部分;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：CV-1.K Cells、D562 Cells、MRC9 Cells
H-1573 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２-１：３传代，每周２-３次。;生长特性：贴壁生长;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HUCEC Cells、RCSMC Cells、SkChA-1 Cells
22RV1人前列腺癌传代细胞|送STR图谱
HEL-92-1-7 Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：每周２-３次。;生长特性：悬浮生长;形态特性：成淋巴细胞;相关产品有：HCC-70 Cells、LTEP-sm Cells、QGY-7703 Cells
WiDrTC Cells;背景说明：结肠癌；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：SNU-251 Cells、SNU387 Cells、OCI-LY-7 Cells
Karpas 299 Cells;背景说明：间变性大细胞淋巴瘤；男性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：悬浮;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：HNE-1 Cells、U-118MG Cells、WERIRb1 Cells
VK-2/E6E7 Cells;背景说明：阴道；上皮细胞；HPV１６转化；女性;传代方法：１：２-１：３传代；每周换液２-３次。;生长特性：贴壁;形态特性：详见产品说明书;相关产品有：OVCAR 8 Cells、MDAMB175 Cells、SCL I Cells
TGBC11T Cells;背景说明：详见相关文献介绍;传代方法：１：２传代;生长特性：贴壁生长;形态特性：上皮细胞;相关产品有：CEMC1 Cells、HEK-293 Cells、J45.01 Cells
BayGenomics ES cell line NPX111 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
BayGenomics ES cell line XC424 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
CPTC-Ezrin-1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
MB40.3 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
SC17.27 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
LISP-E11 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
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"PubMed=14518030; DOI=10.1002/pros.10291
van Bokhoven A., Caires A., Di Maria M., Schulte A.P., Lucia M.S., Nordeen S.K., Miller G.J., Varella-Garcia M.
Spectral karyotype (SKY) analysis of human prostate carcinoma cell lines.
Prostate 57:226-244(2003)
CLPUB00698
van Bokhoven A.
Models for prostate cancer. Molecular characterization and critical appraisal of human prostate carcinoma cell lines.
Thesis PhD (2004); Katholieke Universiteit Nijmegen; Nijmegen; Netherlands
PubMed=15486987; DOI=10.1002/pros.20158
Zhao H.-J., Kim Y., Wang P., Lapointe J., Tibshirani R., Pollack J.R., Brooks J.D.
Genome-wide characterization of gene expression variations and DNA copy number changes in prostate cancer cell lines.
Prostate 63:187-197(2005)
PubMed=19403664; DOI=10.1128/JVI.00546-09; PMCID=PMC2704771
Knouf E.C., Metzger M.J., Mitchell P.S., Arroyo J.D., Chevillet J.R., Tewari M., Miller A.D.
Multiple integrated copies and high-level production of the human retrovirus XMRV (xenotropic murine leukemia virus-related virus) from 22Rv1 prostate carcinoma cells.
J. Virol. 83:7353-7356(2009)
PubMed=20164919; DOI=10.1038/nature08768; PMCID=PMC3145113
Bignell G.R., Greenman C.D., Davies H.R., Butler A.P., Edkins S., Andrews J.M., Buck G., Chen L., Beare D., Latimer C., Widaa S., Hinton J., Fahey C., Fu B.-Y., Swamy S., Dalgliesh G.L., Teh B.T., Deloukas P., Yang F.-T., Campbell P.J., Futreal P.A., Stratton M.R.
Signatures of mutation and selection in the cancer genome.
Nature 463:893-898(2010)
PubMed=20215515; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-09-3458; PMCID=PMC2881662
Rothenberg S.M., Mohapatra G., Rivera M.N., Winokur D., Greninger P., Nitta M., Sadow P.M., Sooriyakumar G., Brannigan B.W., Ulman M.J., Perera R.M., Wang R., Tam A., Ma X.-J., Erlander M., Sgroi D.C., Rocco J.W., Lingen M.W., Cohen E.E.W., Louis D.N., Settleman J., Haber D.A.
A genome-wide screen for microdeletions reveals disruption of polarity complex genes in diverse human cancers.
Cancer Res. 70:2158-2164(2010)
PubMed=21248069; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-10-1998; PMCID=PMC3059379
Li Y.-M., Alsagabi M., Fan D.-H., Bova G.S., Tewfik A.H., Dehm S.M.
Intragenic rearrangement and altered RNA splicing of the androgen receptor in a cell-based model of prostate cancer progression.
Cancer Res. 71:2108-2117(2011)
PubMed=22460905; DOI=10.1038/nature11003; PMCID=PMC3320027
Barretina J.G., Caponigro G., Stransky N., Venkatesan K., Margolin A.A., Kim S., Wilson C.J., Lehar J., Kryukov G.V., Sonkin D., Reddy A., Liu M., Murray L., Berger M.F., Monahan J.E., Morais P., Meltzer J., Korejwa A., Jane-Valbuena J., Mapa F.A., Thibault J., Bric-Furlong E., Raman P., Shipway A., Engels I.H., Cheng J., Yu G.-Y.K., Yu J.-J., Aspesi P. Jr., de Silva M., Jagtap K., Jones M.D., Wang L., Hatton C., Palescandolo E., Gupta S., Mahan S., Sougnez C., Onofrio R.C., Liefeld T., MacConaill L.E., Winckler W., Reich M., Li N.-X., Mesirov J.P., Gabriel S.B., Getz G., Ardlie K., Chan V., Myer V.E., Weber B.L., Porter J., Warmuth M., Finan P., Harris J.L., Meyerson M.L., Golub T.R., Morrissey M.P., Sellers W.R., Schlegel R., Garraway L.A.
The Cancer Cell Line Encyclopedia enables predictive modelling of anticancer drug sensitivity.
Nature 483:603-607(2012)
DOI=10.5897/IJBMBR2013.0154
Iloki Assanga S.B., Gil-Salido A.A., Lewis Lujan L.M., de Jesus Rosas-Durazo A., Acosta-Silva A.L., Rivera-Castaneda E.G., Rubio-Pino J.L.
Cell growth curves for different cell lines and their relationship with biological activities.
Int. J. Biotechnol. Mol. Biol. Res. 4:60-70(2013)
PubMed=23117885; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-12-3630; PMCID=PMC3549016
Li Y.-M., Chan S.-C., Brand L.J., Hwang T.H., Silverstein K.A.T., Dehm S.M.
Androgen receptor splice variants mediate enzalutamide resistance in castration-resistant prostate cancer cell lines.
Cancer Res. 73:483-489(2013)
PubMed=23671654; DOI=10.1371/journal.pone.0063056; PMCID=PMC3646030
Lu Y.-H., Soong T.D., Elemento O.
A novel approach for characterizing microsatellite instability in cancer cells.
PLoS ONE 8:E63056-E63056(2013)
PubMed=25984343; DOI=10.1038/sdata.2014.35; PMCID=PMC4432652
Cowley G.S., Weir B.A., Vazquez F., Tamayo P., Scott J.A., Rusin S., East-Seletsky A., Ali L.D., Gerath W.F.J., Pantel S.E., Lizotte P.H., Jiang G.-Z., Hsiao J., Tsherniak A., Dwinell E., Aoyama S., Okamoto M., Harrington W., Gelfand E.T., Green T.M., Tomko M.J., Gopal S., Wong T.C., Li H.-B., Howell S., Stransky N., Liefeld T., Jang D., Bistline J., Meyers B.H., Armstrong S.A., Anderson K.C., Stegmaier K., Reich M., Pellman D., Boehm J.S., Mesirov J.P., Golub T.R., Root D.E., Hahn W.C.
Parallel genome-scale loss of function screens in 216 cancer cell lines for the identification of context-specific genetic dependencies.
Sci. Data 1:140035-140035(2014)
PubMed=25877200; DOI=10.1038/nature14397
Yu M., Selvaraj S.K., Liang-Chu M.M.Y., Aghajani S., Busse M., Yuan J., Lee G., Peale F.V., Klijn C., Bourgon R., Kaminker J.S., Neve R.M.
A resource for cell line authentication, annotation and quality control.
Nature 520:307-311(2015)
PubMed=27271795; DOI=10.1002/pros.23190
Shourideh M., DePriest A., Mohler J.L., Wilson E.M., Koochekpour S.
Characterization of fibroblast-free CWR-R1ca castration-recurrent prostate cancer cell line.
Prostate 76:1067-1077(2016)
PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017; PMCID=PMC4967469
Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Miroo T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.
A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.
Cell 166:740-754(2016)
PubMed=28145883; DOI=10.18632/oncotarget.14850; PMCID=PMC5386661
Nouri M., Caradec J., Lubik A.A., Li N., Hollier B.G., Takhar M., Altimirano-Dimas M., Chen M.-Q., Roshan-Moniri M., Butler M., Lehman M., Bishop J.L., Truong S., Huang S.-C., Cochrane D.R., Cox M., Collins C., Gleave M.E., Erho N., Alshalafa M., Davicioni E., Nelson C., Gregory-Evans C.Y., Karnes R.J., Jenkins R.B., Klein E.A., Buttyan R.
Therapy-induced developmental reprogramming of prostate cancer cells and acquired therapy resistance.
Oncotarget 8:18949-18967(2017)
PubMed=28928128; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-17-0320; PMCID=PMC5654612
Van Etten J.L., Nyquist M.D., Li Y.-M., Yang R.-D., Ho Y., Johnson R., Ondigi O., Voytas D.F., Henzler C., Dehm S.M.
Targeting a single alternative polyadenylation site coordinately blocks expression of androgen receptor mRNA splice variants in prostate cancer.
Cancer Res. 77:5228-5235(2017)
PubMed=30629668; DOI=10.1371/journal.pone.0210404; PMCID=PMC6328144
Uphoff C.C., Pommerenke C., Denkmann S.A., Drexler H.G.
Screening human cell lines for viral infections applying RNA-Seq data analysis.
PLoS ONE 14:E0210404-E0210404(2019)
PubMed=30787054; DOI=10.1158/1055-9965.EPI-18-1132; PMCID=PMC6548687
Hooker S.E. Jr., Woods-Burnham L., Bathina M., Lloyd S., Gorjala P., Mitra R., Nonn L., Kimbro K.S., Kittles R.A.
Genetic ancestry analysis reveals misclassification of commonly used cancer cell lines.
Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. 28:1003-1009(2019)
PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675
Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
Cancer Res. 79:1263-1273(2019)
PubMed=30971826; DOI=10.1038/s41586-019-1103-9
Behan F.M., Iorio F., Picco G., Goncalves E., Beaver C.M., Migliardi G., Santos R., Rao Y., Sassi F., Pinnelli M., Ansari R., Harper S., Jackson D.A., McRae R., Pooley R., Wilkinson P., van der Meer D.J., Dow D., Buser-Doepner C.A., Bertotti A., Trusolino L., Stronach E.A., Saez-Rodriguez J., Yusa K., Garnett M.J.
Prioritization of cancer therapeutic targets using CRISPR-Cas9 screens.
Nature 568:511-516(2019)
PubMed=31006810; DOI=10.1093/nar/gkz286; PMCID=PMC6582326
Kounatidou E., Nakjang S., McCracken S.R.C., Dehm S.M., Robson C.N., Jones D., Gaughan L.
A novel CRISPR-engineered prostate cancer cell line defines the AR-V transcriptome and identifies PARP inhibitor sensitivities.
Nucleic Acids Res. 47:5634-5647(2019)
PubMed=31068700; DOI=10.1038/s41586-019-1186-3; PMCID=PMC6697103
Ghandi M., Huang F.W., Jane-Valbuena J., Kryukov G.V., Lo C.C., McDonald E.R. 3rd, Barretina J.G., Gelfand E.T., Bielski C.M., Li H.-X., Hu K., Andreev-Drakhlin A.Y., Kim J., Hess J.M., Haas B.J., Aguet F., Weir B.A., Rothberg M.V., Paolella B.R., Lawrence M.S., Akbani R., Lu Y.-L., Tiv H.L., Gokhale P.C., de Weck A., Mansour A.A., Oh C., Shih J., Hadi K., Rosen Y., Bistline J., Venkatesan K., Reddy A., Sonkin D., Liu M., Lehar J., Korn J.M., Porter D.A., Jones M.D., Golji J., Caponigro G., Taylor J.E., Dunning C.M., Creech A.L., Warren A.C., McFarland J.M., Zamanighomi M., Kauffmann A., Stransky N., Imielinski M., Maruvka Y.E., Cherniack A.D., Tsherniak A., Vazquez F., Jaffe J.D., Lane A.A., Weinstock D.M., Johannessen C.M., Morrissey M.P., Stegmeier F., Schlegel R., Hahn W.C., Getz G., Mills G.B., Boehm J.S., Golub T.R., Garraway L.A., Sellers W.R.
Next-generation characterization of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
Nature 569:503-508(2019)
PubMed=31395879; DOI=10.1038/s41467-019-11415-2; PMCID=PMC6687785
Yu K., Chen B., Aran D., Charalel J., Yau C., Wolf D.M., van 't Veer L.J., Butte A.J., Goldstein T., Sirota M.
Comprehensive transcriptomic analysis of cell lines as models of primary tumors across 22 tumor types.
Nat. Commun. 10:3574.1-3574.11(2019)"
van Bokhoven A., Caires A., Di Maria M., Schulte A.P., Lucia M.S., Nordeen S.K., Miller G.J., Varella-Garcia M.
Spectral karyotype (SKY) analysis of human prostate carcinoma cell lines.
Prostate 57:226-244(2003)
CLPUB00698
van Bokhoven A.
Models for prostate cancer. Molecular characterization and critical appraisal of human prostate carcinoma cell lines.
Thesis PhD (2004); Katholieke Universiteit Nijmegen; Nijmegen; Netherlands
PubMed=15486987; DOI=10.1002/pros.20158
Zhao H.-J., Kim Y., Wang P., Lapointe J., Tibshirani R., Pollack J.R., Brooks J.D.
Genome-wide characterization of gene expression variations and DNA copy number changes in prostate cancer cell lines.
Prostate 63:187-197(2005)
PubMed=19403664; DOI=10.1128/JVI.00546-09; PMCID=PMC2704771
Knouf E.C., Metzger M.J., Mitchell P.S., Arroyo J.D., Chevillet J.R., Tewari M., Miller A.D.
Multiple integrated copies and high-level production of the human retrovirus XMRV (xenotropic murine leukemia virus-related virus) from 22Rv1 prostate carcinoma cells.
J. Virol. 83:7353-7356(2009)
PubMed=20164919; DOI=10.1038/nature08768; PMCID=PMC3145113
Bignell G.R., Greenman C.D., Davies H.R., Butler A.P., Edkins S., Andrews J.M., Buck G., Chen L., Beare D., Latimer C., Widaa S., Hinton J., Fahey C., Fu B.-Y., Swamy S., Dalgliesh G.L., Teh B.T., Deloukas P., Yang F.-T., Campbell P.J., Futreal P.A., Stratton M.R.
Signatures of mutation and selection in the cancer genome.
Nature 463:893-898(2010)
PubMed=20215515; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-09-3458; PMCID=PMC2881662
Rothenberg S.M., Mohapatra G., Rivera M.N., Winokur D., Greninger P., Nitta M., Sadow P.M., Sooriyakumar G., Brannigan B.W., Ulman M.J., Perera R.M., Wang R., Tam A., Ma X.-J., Erlander M., Sgroi D.C., Rocco J.W., Lingen M.W., Cohen E.E.W., Louis D.N., Settleman J., Haber D.A.
A genome-wide screen for microdeletions reveals disruption of polarity complex genes in diverse human cancers.
Cancer Res. 70:2158-2164(2010)
PubMed=21248069; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-10-1998; PMCID=PMC3059379
Li Y.-M., Alsagabi M., Fan D.-H., Bova G.S., Tewfik A.H., Dehm S.M.
Intragenic rearrangement and altered RNA splicing of the androgen receptor in a cell-based model of prostate cancer progression.
Cancer Res. 71:2108-2117(2011)
PubMed=22460905; DOI=10.1038/nature11003; PMCID=PMC3320027
Barretina J.G., Caponigro G., Stransky N., Venkatesan K., Margolin A.A., Kim S., Wilson C.J., Lehar J., Kryukov G.V., Sonkin D., Reddy A., Liu M., Murray L., Berger M.F., Monahan J.E., Morais P., Meltzer J., Korejwa A., Jane-Valbuena J., Mapa F.A., Thibault J., Bric-Furlong E., Raman P., Shipway A., Engels I.H., Cheng J., Yu G.-Y.K., Yu J.-J., Aspesi P. Jr., de Silva M., Jagtap K., Jones M.D., Wang L., Hatton C., Palescandolo E., Gupta S., Mahan S., Sougnez C., Onofrio R.C., Liefeld T., MacConaill L.E., Winckler W., Reich M., Li N.-X., Mesirov J.P., Gabriel S.B., Getz G., Ardlie K., Chan V., Myer V.E., Weber B.L., Porter J., Warmuth M., Finan P., Harris J.L., Meyerson M.L., Golub T.R., Morrissey M.P., Sellers W.R., Schlegel R., Garraway L.A.
The Cancer Cell Line Encyclopedia enables predictive modelling of anticancer drug sensitivity.
Nature 483:603-607(2012)
DOI=10.5897/IJBMBR2013.0154
Iloki Assanga S.B., Gil-Salido A.A., Lewis Lujan L.M., de Jesus Rosas-Durazo A., Acosta-Silva A.L., Rivera-Castaneda E.G., Rubio-Pino J.L.
Cell growth curves for different cell lines and their relationship with biological activities.
Int. J. Biotechnol. Mol. Biol. Res. 4:60-70(2013)
PubMed=23117885; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-12-3630; PMCID=PMC3549016
Li Y.-M., Chan S.-C., Brand L.J., Hwang T.H., Silverstein K.A.T., Dehm S.M.
Androgen receptor splice variants mediate enzalutamide resistance in castration-resistant prostate cancer cell lines.
Cancer Res. 73:483-489(2013)
PubMed=23671654; DOI=10.1371/journal.pone.0063056; PMCID=PMC3646030
Lu Y.-H., Soong T.D., Elemento O.
A novel approach for characterizing microsatellite instability in cancer cells.
PLoS ONE 8:E63056-E63056(2013)
PubMed=25984343; DOI=10.1038/sdata.2014.35; PMCID=PMC4432652
Cowley G.S., Weir B.A., Vazquez F., Tamayo P., Scott J.A., Rusin S., East-Seletsky A., Ali L.D., Gerath W.F.J., Pantel S.E., Lizotte P.H., Jiang G.-Z., Hsiao J., Tsherniak A., Dwinell E., Aoyama S., Okamoto M., Harrington W., Gelfand E.T., Green T.M., Tomko M.J., Gopal S., Wong T.C., Li H.-B., Howell S., Stransky N., Liefeld T., Jang D., Bistline J., Meyers B.H., Armstrong S.A., Anderson K.C., Stegmaier K., Reich M., Pellman D., Boehm J.S., Mesirov J.P., Golub T.R., Root D.E., Hahn W.C.
Parallel genome-scale loss of function screens in 216 cancer cell lines for the identification of context-specific genetic dependencies.
Sci. Data 1:140035-140035(2014)
PubMed=25877200; DOI=10.1038/nature14397
Yu M., Selvaraj S.K., Liang-Chu M.M.Y., Aghajani S., Busse M., Yuan J., Lee G., Peale F.V., Klijn C., Bourgon R., Kaminker J.S., Neve R.M.
A resource for cell line authentication, annotation and quality control.
Nature 520:307-311(2015)
PubMed=27271795; DOI=10.1002/pros.23190
Shourideh M., DePriest A., Mohler J.L., Wilson E.M., Koochekpour S.
Characterization of fibroblast-free CWR-R1ca castration-recurrent prostate cancer cell line.
Prostate 76:1067-1077(2016)
PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017; PMCID=PMC4967469
Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Miroo T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.
A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.
Cell 166:740-754(2016)
PubMed=28145883; DOI=10.18632/oncotarget.14850; PMCID=PMC5386661
Nouri M., Caradec J., Lubik A.A., Li N., Hollier B.G., Takhar M., Altimirano-Dimas M., Chen M.-Q., Roshan-Moniri M., Butler M., Lehman M., Bishop J.L., Truong S., Huang S.-C., Cochrane D.R., Cox M., Collins C., Gleave M.E., Erho N., Alshalafa M., Davicioni E., Nelson C., Gregory-Evans C.Y., Karnes R.J., Jenkins R.B., Klein E.A., Buttyan R.
Therapy-induced developmental reprogramming of prostate cancer cells and acquired therapy resistance.
Oncotarget 8:18949-18967(2017)
PubMed=28928128; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-17-0320; PMCID=PMC5654612
Van Etten J.L., Nyquist M.D., Li Y.-M., Yang R.-D., Ho Y., Johnson R., Ondigi O., Voytas D.F., Henzler C., Dehm S.M.
Targeting a single alternative polyadenylation site coordinately blocks expression of androgen receptor mRNA splice variants in prostate cancer.
Cancer Res. 77:5228-5235(2017)
PubMed=30629668; DOI=10.1371/journal.pone.0210404; PMCID=PMC6328144
Uphoff C.C., Pommerenke C., Denkmann S.A., Drexler H.G.
Screening human cell lines for viral infections applying RNA-Seq data analysis.
PLoS ONE 14:E0210404-E0210404(2019)
PubMed=30787054; DOI=10.1158/1055-9965.EPI-18-1132; PMCID=PMC6548687
Hooker S.E. Jr., Woods-Burnham L., Bathina M., Lloyd S., Gorjala P., Mitra R., Nonn L., Kimbro K.S., Kittles R.A.
Genetic ancestry analysis reveals misclassification of commonly used cancer cell lines.
Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. 28:1003-1009(2019)
PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675
Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
Cancer Res. 79:1263-1273(2019)
PubMed=30971826; DOI=10.1038/s41586-019-1103-9
Behan F.M., Iorio F., Picco G., Goncalves E., Beaver C.M., Migliardi G., Santos R., Rao Y., Sassi F., Pinnelli M., Ansari R., Harper S., Jackson D.A., McRae R., Pooley R., Wilkinson P., van der Meer D.J., Dow D., Buser-Doepner C.A., Bertotti A., Trusolino L., Stronach E.A., Saez-Rodriguez J., Yusa K., Garnett M.J.
Prioritization of cancer therapeutic targets using CRISPR-Cas9 screens.
Nature 568:511-516(2019)
PubMed=31006810; DOI=10.1093/nar/gkz286; PMCID=PMC6582326
Kounatidou E., Nakjang S., McCracken S.R.C., Dehm S.M., Robson C.N., Jones D., Gaughan L.
A novel CRISPR-engineered prostate cancer cell line defines the AR-V transcriptome and identifies PARP inhibitor sensitivities.
Nucleic Acids Res. 47:5634-5647(2019)
PubMed=31068700; DOI=10.1038/s41586-019-1186-3; PMCID=PMC6697103
Ghandi M., Huang F.W., Jane-Valbuena J., Kryukov G.V., Lo C.C., McDonald E.R. 3rd, Barretina J.G., Gelfand E.T., Bielski C.M., Li H.-X., Hu K., Andreev-Drakhlin A.Y., Kim J., Hess J.M., Haas B.J., Aguet F., Weir B.A., Rothberg M.V., Paolella B.R., Lawrence M.S., Akbani R., Lu Y.-L., Tiv H.L., Gokhale P.C., de Weck A., Mansour A.A., Oh C., Shih J., Hadi K., Rosen Y., Bistline J., Venkatesan K., Reddy A., Sonkin D., Liu M., Lehar J., Korn J.M., Porter D.A., Jones M.D., Golji J., Caponigro G., Taylor J.E., Dunning C.M., Creech A.L., Warren A.C., McFarland J.M., Zamanighomi M., Kauffmann A., Stransky N., Imielinski M., Maruvka Y.E., Cherniack A.D., Tsherniak A., Vazquez F., Jaffe J.D., Lane A.A., Weinstock D.M., Johannessen C.M., Morrissey M.P., Stegmeier F., Schlegel R., Hahn W.C., Getz G., Mills G.B., Boehm J.S., Golub T.R., Garraway L.A., Sellers W.R.
Next-generation characterization of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
Nature 569:503-508(2019)
PubMed=31395879; DOI=10.1038/s41467-019-11415-2; PMCID=PMC6687785
Yu K., Chen B., Aran D., Charalel J., Yau C., Wolf D.M., van 't Veer L.J., Butte A.J., Goldstein T., Sirota M.
Comprehensive transcriptomic analysis of cell lines as models of primary tumors across 22 tumor types.
Nat. Commun. 10:3574.1-3574.11(2019)"
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