超滤管4ml 50kd，替代Millipore【UFC805

干货：外泌体的细胞摄取实验报告

/孔 实验内容： 1. 外泌体荧光标记并去除游离染料 1.1. 用 PBS 将提取的外泌体浓度调整到约 1×1011Particles /mL 1.2. 配制染色孵育体系 1.3. 去除游离染料 染色完成后，于生物安全柜中加入 600μL PBS 在样品里，使用 100 KDa 超滤管，以 3000 ×g 的离心力离心 5 ~10 min， 进行超滤置换，去除溶液中游离的染料，将上室样品浓缩至原体积 重复置换 2 次 收集超滤管上室的样本, 送检 NTA(50μl)、BCA(50μl

蛋白浓缩，超滤离心管选择指南

做蛋白开发、抗体纯化，样本收集的时候，你是否经历过这些“崩溃时刻”：浓缩一管样本，膜堵了三次；好不容易浓缩完，一测浓度，目标蛋白损失大半；换缓冲液，透析过夜第二天忘了收样……样品处理看似简单，却往往是实验中最耗时、最不可控的一环。       赛米科（Cellmilk）PES超滤离心管系列，不堆砌参数，只解决实际问题：通量、回收率、操作便利度。帮你选对管子，做对实验。     1.选对截留分子量：3K、5K、10K、30K、50K、100K，孔径不是越大越好 超滤管的核心是膜孔径（即截留分子

如何获得高质量的细胞上清液外泌体？

的复杂了，更不利于后期的研究了。 第三步初步浓缩（也可省略此步）：是不是在提取干细胞上清外泌体过程中会有看不到沉淀的时候？这时心中就没了谱，下游的检测项目做的更是提心吊胆。因此，在这里给出了通过超滤方法进行浓缩处理的建议。超滤的原理就是利用一定的尺寸大小的滤膜拦住大颗粒物而放过小颗粒物的原理，在离心管中最终呈现上液和下液，我们在根据实验目的各取所需。针对细胞上清液的特点，建议可以使用 10 KD ~ 100 KD 之间的超滤管来进行样品浓缩，外泌体通常是在超滤离心管的上室中，浓缩倍数控制到 5 倍