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- 详细信息
- 技术资料
- 保存条件:
-20℃
- 规格:
50 rxns
同裂酶:SapI, LguI, PciSI;(注: 同裂酶对于不同的甲基化修饰可能具有不同敏感性。)
产品组成
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组分 |
规格 |
|
BspQI (10U/ul) |
50ul |
|
10× HN Buffer |
1ml |
产品简介
BspQI 属于 Type IIS 型限制酶,识别非回文序列,并在识别序列之外进行切割,常用于 Golden Gate 组装。经过优化的反应 Buffer
使 BspQI 最大限度发挥功能,同时反应缓冲液包含重组白蛋白,其可增强多种酶的稳定性。
建议反应条件
1× HN 缓冲液;50℃温育;参照“DNA 酶切流程”配制反应体系。
失活条件
80℃温育 20 min。
活性定义
1 活性单位 (U) 是指在 50 μl 反应体系中,50℃ 1 h 内完全酶切1 µg λDNA 所需的酶量
质量控制
超长时间温育检测
最适反应温度下,将 10 U BspQI 与 1 μg λDNA 共同温育 3 h,未检测到其他核酸酶污染或星号活性引起的底物非特异性降解,延时
酶切可能出现星号活性。
酶切-连接-再酶切检测
最适反应温度下,使用 10 U BspQI 消化底物,回收酶切产物。在 22℃下使用适量 T4 DNA Ligase (Fast) 可以将酶切产物重新连接。
将连接产物再次回收后,使用相同的内切酶可以重新切开连接产物。
DNase 残留检测
将 10 U BspQI 与双链 DNA 底物在 37℃温育 16 h,通过 DNA 电泳检测双链 DNA 底物无变化。
使用方法
1.DNA 快速酶切流程
(1)在冰上按如下建议的加样顺序配制反应体系:
|
ddH2O |
up to 50ul |
|
10× HN Buffer |
5ul |
|
底物 DNA |
1ug |
|
BspQI (10 U/μl) |
1ul |
|
Total |
50ul |
a. DNA 底物中应不含苯酚、氯仿、乙醇、EDTA、洗涤剂或高浓度盐,否则将会影响 BspQI 酶活性;
(2)轻柔吸打或轻弹管壁以混匀(切勿涡旋),然后瞬时离心以收集挂壁液滴;
(3)50℃温育 50min-1h;
(4)80℃温育 20min 即可使酶失活,或者通过吸附柱或苯酚 / 氯仿纯化终止反应。
2.注意事项
① 反应体系中加入的酶体积不应超过总体积的 10%,避免酶中过多的甘油引起星号活性;
② 限制性内切酶存储缓冲液中的添加剂 ( 例如甘油、盐 ) 与底物溶液中的污染物 ( 例如盐、EDTA 或乙醇等 ) 相同,反应体积越小,酶切反应抑制效应越强。
不同 DNA 中的酶切位点数量
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λDNA |
ΦX174 |
pBR322 |
pUC57 |
pUC18/19 |
SV40 |
M13mp18/19 |
Adeno2 |
|
10 |
1 |
1 |
1 |
1 |
0 |
0 |
7 |
甲基化修饰影响
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Dam |
Dcm |
CpG |
EcoKI |
EcoBI |
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无影响 |
无影响 |
无影响 |
无影响 |
无影响 |
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